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        黑果腺肋花楸花色苷微膠囊化的研究

        2020-03-23 08:49:08唐璐李延輝薛曉麗
        食品研究與開發(fā) 2020年5期
        關(guān)鍵詞:芯壁腺肋花楸

        唐璐,李延輝,薛曉麗

        (1.吉林農(nóng)業(yè)科技學(xué)院食品工程學(xué)院,吉林吉林132101;2.吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,吉林長春130118;3.吉林農(nóng)業(yè)科技學(xué)院實(shí)驗(yàn)中心,吉林吉林132101)

        黑果花楸是黑果腺肋花楸 [Aronia melanocarpa(Michx.)Elliott]的俗稱,系薔薇科多年生落葉灌木[1]。果實(shí)及其提取物對(duì)心臟病和高血壓等心腦血管疾病具有特殊療效,被廣泛應(yīng)用于歐美國家的醫(yī)藥和功能性食品工業(yè)[2-6]。成熟的果實(shí)色深,富含花色苷、多酚、類黃酮等營養(yǎng)成分,其中花色苷含量達(dá)到酚類化合物25%左右[7-8],高于黃酮和酚酸的含量[9]。微膠囊是一種能包埋和保護(hù)某些物質(zhì)的具有聚合物壁殼的半透性或密封的微型“容器”或“包裝物[10-12]。微膠囊技術(shù)可以增加芯材穩(wěn)定性,控制芯材釋放[13]。目前,國內(nèi)外食品工業(yè)中微膠囊應(yīng)用廣泛,對(duì)香精香料進(jìn)行微膠囊化是為了保護(hù)原材料,在食品中已出現(xiàn)粉末油脂,例如方便湯料、冷食品、糕點(diǎn)等已取得較多成果[14-16]。

        本研究采用噴霧干燥法制備黑果腺肋花楸花色苷微膠囊,以花色苷包埋率為指標(biāo),壁材選擇、壁芯質(zhì)量比、入口溫度、進(jìn)料量為影響因素進(jìn)行單因素試驗(yàn)研究,并在單因素基礎(chǔ)上進(jìn)行正交試驗(yàn),得出最佳工藝條件。以期為其花色苷微膠囊表征和穩(wěn)定性的研究提供理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 主要儀器與設(shè)備

        LC-20AD 高效液相色譜儀:日本島津儀器有限公司;R-210 旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀、B-290 瑞士步琪噴霧干燥器:瑞士步琪儀器有限公司;HH-S4 恒溫水浴鍋:山東博科科學(xué)儀器有限;AL204 電子天平:梅特勒-托利多儀器有限公司;SHJ-1AB 磁力攪拌水浴鍋:常州金壇良友儀器有限公司;5430R 離心機(jī):深圳市科力易翔儀器設(shè)備有限;XL-30 掃描電子顯微鏡:荷蘭Philips-FEI儀器有限公司。

        1.2 材料與試劑

        黑果花楸鮮果:遼寧富康源黑果花楸科技開發(fā)有限公司。矢車菊素-3-半乳糖苷、矢車菊素-3-葡萄糖苷、矢車菊素-3-阿拉伯糖苷對(duì)照品:上海回程生物科技有限公司;甲醇(色譜純)、乙腈(色譜純):長沙科寧興業(yè)生物科技有限公司;磷酸、乙醇、檸檬酸三鈉、檸檬酸均為分析純:天津市光復(fù)科技發(fā)展有限公司;麥芽糊精、殼聚糖、β-環(huán)糊精:北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司;海藻酸鈉、阿拉伯樹膠粉:天津市永大化學(xué)試劑有限公司。

        1.3 試驗(yàn)方法

        1.3.1 工藝流程及花色苷制備

        工藝流程:壁材水溶液→加入芯材(按一定比例)→磁力攪拌→噴霧干燥→微膠囊成品→計(jì)算包埋率。

        黑果腺肋花楸花色苷制備:黑果腺肋花楸花色苷由乙醇浸提,并經(jīng)XAD-7 大孔樹脂純化后得到。

        1.3.2 噴霧干燥單因素試驗(yàn)

        以花色苷包埋率為指標(biāo),壁材選擇、芯壁質(zhì)量比、入口溫度、進(jìn)料量為影響因素進(jìn)行單因素試驗(yàn)。

        1.3.2.1 壁材選擇對(duì)黑果腺肋花楸花色苷微膠囊化的影響

        以芯壁質(zhì)量比2 ∶8、入口溫度120 ℃、進(jìn)料量15 mL/min,壁材分別是阿拉伯膠、麥芽糊精、阿拉伯膠/麥芽糊精(2 ∶3,質(zhì)量比)、阿拉伯膠/β-環(huán)糊精(2 ∶3,質(zhì)量比)、阿拉伯膠/殼聚糖(2 ∶3,質(zhì)量比)條件下進(jìn)行噴霧干燥,計(jì)算包埋率。

        1.3.2.2 芯壁質(zhì)量比對(duì)黑果腺肋花楸花色苷微膠囊化的影響

        以阿拉伯膠/麥芽糊精(2 ∶3,質(zhì)量比)為壁材、入口溫度 120 ℃、進(jìn)料量 15 mL/min,芯壁質(zhì)量比 1 ∶9、2 ∶8、3 ∶7、4 ∶6、5 ∶5 條件下進(jìn)行噴霧干燥,計(jì)算包埋率。

        1.3.2.3 入口溫度對(duì)黑果腺肋花楸花色苷微膠囊化的影響

        以阿拉伯膠/麥芽糊精(2 ∶3,質(zhì)量比)為壁材、芯壁質(zhì)量比2 ∶8、進(jìn)料量15 mL/min,入口溫度分別為100、110、120、130、140 ℃條件下進(jìn)行噴霧干燥,計(jì)算包埋率。

        1.3.2.4 進(jìn)料量對(duì)黑果腺肋花楸花色苷微膠囊化的影響

        以阿拉伯膠/麥芽糊精(2 ∶3,質(zhì)量比)為壁材、芯壁質(zhì)量比2 ∶8、入口溫度120 ℃、進(jìn)料量分別為9、12、15、18、21 mL/min 條件下進(jìn)行噴霧干燥,計(jì)算包埋率。

        1.3.3 正交試驗(yàn)優(yōu)化花色苷微膠囊

        以芯壁質(zhì)量比、入口溫度、進(jìn)料量為影響因素,花色苷微膠囊包埋率為指標(biāo),選擇L9(33)正交試驗(yàn)對(duì)工藝參數(shù)進(jìn)行優(yōu)化設(shè)計(jì),因素水平表見表1。

        表1 因素水平表Table 1 Factors and levels table

        1.3.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線

        矢車菊素-3-半乳糖苷、矢車菊素-3-葡萄糖苷、矢車菊素-3-阿拉伯糖苷分別配制成2.475、4.950、9.900、14.850、19.800 μg/mL,過 0.22 μm 濾膜,注入高效液相色譜 (high performance liquid chromatography,HPLC)儀,以濃度為x 軸,峰面積為y 軸繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。所得半乳糖苷線性方程為y=40 827.83x-12 152,R2=0.999 1;葡萄糖苷線性方程y=97 979.62x-185 967.2,R2=0.9990;阿拉伯糖苷線性方程y=44 659.91x+970 54.07,R2=0.998 1。

        1.3.5 花色苷微膠囊包埋率公式

        微膠囊產(chǎn)品表面花色苷含量測(cè)定:稱取1.00 g 微膠囊花色苷,用體積分?jǐn)?shù)95%的乙醇溶解,使微膠囊表面的花色苷完全溶解在溶液中,收集濾液定容至10 mL,用高效液相色譜測(cè)花色苷含量[17-18]。

        微膠囊產(chǎn)品中總花色苷含量的測(cè)定:稱取1.00 g微膠囊,pH 值為3.0 的檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖溶液溶解,收集濾液定容至10 mL,用高效液相色譜測(cè)花色苷含量[17-18]。

        1.3.6 黑果腺肋花楸花色苷微膠囊的的表征

        用電鏡掃面觀察黑果腺肋花楸花色苷微膠囊表面結(jié)構(gòu)。

        1.3.7 微膠囊化前后花色苷穩(wěn)定性研究

        對(duì)光照考察:取適量微膠囊化前后的黑果腺肋花楸花色苷溶液,在室溫25 ℃條件下,每隔1 h 測(cè)其花色苷含量,計(jì)算保存率[19]。對(duì)不同溫度的考察:取適量微膠囊化前后的黑果腺肋花楸花色苷溶液,在25、40、50、60、70、80、90 ℃條件下,2 h 后稱取一定量各樣品溶液測(cè)定其在花色苷含量,計(jì)算保存率。保存率的計(jì)算公式如下:

        2 結(jié)果與分析

        2.1 單因素試驗(yàn)結(jié)果

        2.1.1 壁材選擇對(duì)黑果腺肋花楸花色苷微膠囊化的影響

        壁材選擇對(duì)花色苷微膠囊化的影響結(jié)果見圖1。

        圖1 壁材對(duì)花色苷微膠囊化的影響Fig.1 Effect of wall material on anthocyanin microencapsulation

        由圖 1 可知,以阿拉伯膠/麥芽糊精(2 ∶3,質(zhì)量比)為壁材包埋率最高,阿拉伯膠是一種親水性膠體[20-21],安全性較高、水溶性好和黏度較低,當(dāng)阿拉伯膠與麥芽糊精進(jìn)行復(fù)配時(shí),能改善乳化性,提高膜的通透性[20-21],提高包埋率。

        2.1.2 芯壁質(zhì)量比對(duì)黑果腺肋花楸花色苷微膠囊化的影響

        芯壁質(zhì)量比對(duì)花色苷微膠囊化的影響結(jié)果見圖2。

        由圖2 可知,芯壁質(zhì)量比2 ∶8 包埋率最高,芯壁質(zhì)量比越大超過了壁材的包埋限度,會(huì)使包埋率降低,芯壁質(zhì)量比越小,相應(yīng)花色苷含量也會(huì)變小,壁材過多會(huì)使黏度增加,導(dǎo)致粘壁,不會(huì)全部噴霧干燥,因此芯壁質(zhì)量比2 ∶8 最適宜。

        2.1.3 入口溫度對(duì)黑果腺肋花楸花色苷微膠囊化的影響

        入口溫度對(duì)花色苷微膠囊化的影響結(jié)果見圖3。

        圖2 芯壁質(zhì)量比對(duì)花色苷微膠囊化的影響Fig.2 Effect of core wall mass ratio on anthocyanin microencapsulation

        圖3 入口溫度對(duì)花色苷微膠囊化的影響Fig.3 Effect of inlet temperature on anthocyanin microencapsulation

        由圖3 可知,入口溫度120 ℃時(shí)包埋效果最好,溫度越高,芯材會(huì)分解;溫度過低,微膠囊成膜速率會(huì)降低,不能全部成微膠囊。因此入口溫度120 ℃是包埋率最高。

        2.1.4 進(jìn)料量對(duì)黑果腺肋花楸花色苷微膠囊化的影響

        進(jìn)料量對(duì)花色苷微膠囊化的影響結(jié)果見圖4。

        圖4 進(jìn)料量對(duì)花色苷微膠囊化的影響Fig.4 Effect of feed amount on anthocyanin microencapsulation

        由圖4 可知,進(jìn)料量15 mL/min 時(shí)包埋率最高,進(jìn)料流量較小時(shí),物料受熱時(shí)間長,導(dǎo)致在干燥過程中損失較嚴(yán)重,從而影響微膠囊包埋的效率。當(dāng)進(jìn)料流量增大到一定程度時(shí),在霧化器轉(zhuǎn)速不變的情況下,液滴與熱空氣的能量交換達(dá)到平衡[22-23],此時(shí)花色苷微膠囊的包埋率最高。因此,選擇進(jìn)料流量15 mL/min進(jìn)行試驗(yàn)。

        2.2 正交試驗(yàn)結(jié)果與分析

        2.2.1 優(yōu)化試驗(yàn)結(jié)果極差分析

        花色苷微膠囊包埋正交試驗(yàn)結(jié)果見表2。

        表2 正交試驗(yàn)優(yōu)化結(jié)果及極差分析Table 2 Orthogonal test optimization results and range analysis

        由表2 可知,RA>RB>RC,影響的主次順序?yàn)樾颈谫|(zhì)量比、入口溫度、進(jìn)料量,芯壁質(zhì)量比對(duì)花色苷微膠囊包埋影響最顯著。根據(jù)K 值分析結(jié)果,最優(yōu)組合為A2B2C2,即芯壁質(zhì)量比 2 ∶8、入口溫度 120 ℃、進(jìn)料量15 mL/min。

        2.2.2 優(yōu)化試驗(yàn)結(jié)果方差分析

        正交試驗(yàn)優(yōu)化結(jié)果及方差分析結(jié)果見表3。

        表3 正交試驗(yàn)優(yōu)化結(jié)果及方差分析Table 3 Orthogonal test optimization results and analysis of variance

        續(xù)表3 正交試驗(yàn)優(yōu)化結(jié)果及方差分析Continue table 3 Orthogonal test optimization results and analysis of variance

        表3 是花色苷微膠囊包埋正交試驗(yàn)的方差分析,由Ⅲ型平方和比較可以看出,對(duì)花色苷微膠囊包埋的影響主次順序?yàn)锳>B>C,即芯壁質(zhì)量比>入口溫度>進(jìn)料量,該結(jié)果與表2 極差分析一致。驗(yàn)證試驗(yàn):最優(yōu)試驗(yàn)方案為A2B2C2,不在9 組試驗(yàn)中,故對(duì)其進(jìn)行驗(yàn)證試驗(yàn),A2B2C2與A2B2C3的條件下進(jìn)行3 次獨(dú)立重復(fù)試驗(yàn),得到A2B2C2組合包埋率為91.28 %,A2B2C3組合包埋率為90.56%,高于A2B2C3,故選擇A2B2C2為最佳試驗(yàn)條件。

        2.3 黑果腺肋花楸花色苷微膠囊的的表征

        黑果腺肋花楸花色苷微膠囊用XL-30 電鏡在電壓10 kV 下掃描,結(jié)果如圖5 所示。

        圖5 花色苷微膠囊電鏡圖Fig.5 Electron micrograph of anthocyanin microcapsules

        由圖5 可以看出,黑果腺肋花楸花色苷微膠囊部分呈表面光滑的球形,大多數(shù)呈褶皺或者凹陷的形狀,這是由于噴霧干燥過程中造成的,并沒有出現(xiàn)裂痕,說明微膠囊效果較好。

        2.4 微膠囊化前后花色苷穩(wěn)定性研究

        2.4.1 光照對(duì)花色苷微膠囊穩(wěn)定性的影響

        光照對(duì)花色苷微膠囊穩(wěn)定性的影響結(jié)果見圖6。

        由圖6 可看出,隨著時(shí)間延長保存率逐漸下降,而花色苷微膠囊化后保存率變化趨勢(shì)線相對(duì)較平緩,這是由于囊壁起到保護(hù),阻絕作用,免受其光照。

        2.4.2 溫度對(duì)花色苷微膠囊穩(wěn)定性的影響

        溫度對(duì)花色苷微膠囊穩(wěn)定性的影響結(jié)果見圖7。

        由圖7 可看出,隨著溫度增高,花色苷保存率逐漸降低,這是由于花色苷高溫易分解。但微膠囊化后花色苷穩(wěn)定性明顯較緩慢的下降,這是因?yàn)槭俏⒛z囊化后經(jīng)壁材包裹,微膠囊化可以控制芯材的釋放,免受其外界因素影響,延長產(chǎn)品保存時(shí)間。

        圖6 光照對(duì)花色苷微膠囊穩(wěn)定性的影響Fig.6 Effect of light on the stability of anthocyanin microcapsules

        圖7 溫度對(duì)花色苷微膠囊穩(wěn)定性的影響Fig.7 Effect of temperature on the stability of anthocyanin microcapsules

        3 結(jié)論

        采用單因素試驗(yàn)得到最佳工藝為:以阿拉伯膠/麥芽糊精(2 ∶3,質(zhì)量比)為壁材、芯壁質(zhì)量比 2 ∶8、入口溫度120 ℃、進(jìn)料量15 mL/min,結(jié)合正交試驗(yàn)確定最佳工藝條件為芯壁質(zhì)量比2 ∶8、入口溫度120 ℃、進(jìn)料量15 mL/min,在此條件下花色苷微膠囊包埋率為91.28%。用XL-30 顯微鏡掃描得到表面無裂痕,連續(xù)性較好的花色苷微膠囊。經(jīng)過微膠囊化的花色苷比微膠囊前的花色苷對(duì)其光和熱的穩(wěn)定性增強(qiáng),有利于儲(chǔ)藏并且增加其花色苷利用率,為以后食品開發(fā)提供便利。

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