張春蘭
(濰坊學院生物與農(nóng)業(yè)工程學院,山東濰坊 261061)
肌球蛋白輕鏈1(Myosin Light Chain 1,MYL1)作為動物骨骼肌肌球蛋白的一員,其不同異構(gòu)體的表達與動物體不同類型肌纖維的發(fā)育有關(guān)[1]。已有研究發(fā)現(xiàn)MYL1基因在斑馬魚的骨骼肌衛(wèi)星細胞分化為快肌纖維的早期階段表達[2]。MYL1基因?qū)趋兰∩L和發(fā)育也具有重要的調(diào)控作用。早期研究發(fā)現(xiàn)小鼠背最長肌細胞在體外培養(yǎng)時MYL1基因的表達量較低[3],近年來研究發(fā)現(xiàn)該基因在豬[4]和鵪鶉[5]的骨骼肌肌管發(fā)育過程中高度表達,還發(fā)現(xiàn)隨著脊尾白蝦生長其肌肉組織中MYL1基因表達量逐漸增加[6]。
目前,關(guān)于MYL1基因表達調(diào)控的研究較少,尤其在羊上鮮少有報道。Ling 等[7]利用5'RACE 法克隆了豬背最長肌中MYL1啟動子區(qū),經(jīng)生物信息學分析發(fā)現(xiàn)生肌調(diào)節(jié)因子3(MEF3)可能結(jié)合于MYL1基因的+384~+481 區(qū)從而促進其轉(zhuǎn)錄。前期研究[8-9]發(fā)現(xiàn)MYL1基因轉(zhuǎn)錄后在綿羊骨骼肌中有2 種可變剪接體,即MYL1a和MYL1b,且發(fā)現(xiàn)MYL1a和MYL1b在綿羊骨骼肌中的表達量均顯著高于其他組織,且在生長速度較快的杜泊羊骨骼肌中的表達量顯著高于小尾寒羊。本研究在前期工作的基礎(chǔ)上對MYL1基因調(diào)控區(qū)進行了克隆和生物信息學分析,并對該基因編碼蛋白在小尾寒羊各組織間的表達進行分析,為進一步研究其功能和調(diào)控機理奠定基礎(chǔ)。
1.1 實驗動物及樣品采集 實驗用小尾寒羊來自山東魯良優(yōu)質(zhì)肉羊科技示范有限公司。從純種群中任意選取3只,均為雌性,11 月齡。宰殺后迅速取肝、胃、心、肺、背最長肌、脾、卵巢等組織各2~5 g,立即投入液氮保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2MYL1基因啟動子區(qū)的克隆及特征分析
1.2.1 引物設(shè)計 將綿羊MYL1基因的2 種可變剪接體MYL1a和MYL1b的cDNA 序列(Genbank 登錄號分別為KJ700419 和KJ710701)與NCBI 中的預(yù)測序列進行比對,找到序列中的起始密碼子。以起始密碼子上游序列為參考,經(jīng)Primer Premier 5 和DNAClub 軟件設(shè)計引物(F:5'-GCTCAGAGCCCATAAAGT-3';R:5'-GGTGGACCCAGAGTGTTA-3'),并由上海生工生物工程有限公司合成。
1.2.2 PCR 擴增及測序分析 參照PCR MasterMix 試劑盒(TIANGEN,KT201)說明書,以綿羊基因組DNA為模板對MYL1基因的啟動子區(qū)序列進行PCR 擴增,擴增產(chǎn)物以AxyPrep DNA 凝膠回收試劑盒(AXYGEN,#0691)進行純化回收?;厥债a(chǎn)物經(jīng)上海生工生物工程有限公司進行測序。
1.2.3 生物信息學分析 將所得序列用Promoter 2.0 Prediction Server(http://www.cbs.dtu.dk/services/Promoter/)和CpGislands(http://www.bioinformatics.org/sms2/cpg_islands.html)分析CpG 島;用Neural Network Promoter Prediction(http://www.fruitfly.org/seq_tools/promoter.html)預(yù)測啟動子;并以Proscan:Version 1.7(http://www-bimas.cit.nih.gov/molbio/proscan/)和PLACE(http://www.dna.affrc.go.jp/PLACE/signalscan.html)對TATA box、轉(zhuǎn)錄起始位點(TSS)和轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點加以分析。
1.3 蛋白表達分析 取綿羊各組織,以RIPA裂解液(Solarbio,R0010)提取總蛋白。測定蛋白濃度后,以SDS-PAGE法進行電泳分離。經(jīng)電轉(zhuǎn)移法轉(zhuǎn)移至PVDF 膜上后以脫脂奶粉加以封閉,并以兔MYL1 多克隆一抗(RabMAB,EPR9935)孵育過夜。加入HRP 標記的山羊抗兔二抗(上海雅酶生物科技有限公司,LF102)室溫孵育1 h 后加入ELC Plus 超敏發(fā)光液(Solarbio,PE0010)進行顯影和拍照,并以GAPDH 蛋白的表達水平為參考對結(jié)果進行掃描和分析。
2.1 啟動子區(qū)序列 瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果顯示,MYL1基因啟動子區(qū)的擴增條帶單一,經(jīng)克隆測序獲得長為2 454 bp 的啟動子區(qū)序列(圖1)。
2.2 啟動子和CpG 島的預(yù)測 CpGislands 軟件預(yù)測結(jié)果中評分越高,表示其為啟動子的可能性越大。如表1所示,MYL1基因有5 個啟動子,其最佳啟動子位于2 102~2 152 bp 處。該序列存在2 個TATA box,分別位于2 117 bp 和898 bp 處;有2 個轉(zhuǎn)錄起始位點(TSS),分別位于2 085 bp 和866 bp 處。該序列無CpG 島。
表1 MYL1 基因的啟動子序列
2.3 轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點 如表2 所示,該啟動子區(qū)序列中轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點集中于890~1 010 bp 和2 113~2 296 bp 區(qū)域,并且這2 個區(qū)域中有多個AP 和TFIID轉(zhuǎn)錄因子的結(jié)合位點。
表2 MYL1 基因啟動子區(qū)結(jié)合的轉(zhuǎn)錄因子
2.4 小尾寒羊不同組織間MYL1 蛋白表達差異 如圖2所示,MYL1 蛋白只有一種亞型,其分子量約為21 ku;MYL1 蛋白僅在小尾寒羊骨骼肌中表達,其他組織中均不表達。
3.1MYL1基因啟動子區(qū)的序列 本研究小尾寒羊MYL1基因有2 個轉(zhuǎn)錄起始位點,這同在豬上以RACE 法鑒定得到MYL1基因具有2 個轉(zhuǎn)錄起始位點的研究結(jié)果一致[7]。前期發(fā)現(xiàn)MYL1基因的cDNA 存在2 種可變剪接體(MYL1a和MYL1b),且不同可變剪接體在5'端存在差異[8],與豬上發(fā)現(xiàn)的MYL1基因外顯子5 發(fā)生可變剪接從而產(chǎn)生多種可變剪接體結(jié)果相一致[7],說明哺乳動物中MYL1基因的轉(zhuǎn)錄方式較為多樣化。本實驗所得序列經(jīng)分析無CpG 島,這與在豬上發(fā)現(xiàn)的MYL1基因有多個CpG 島的結(jié)果不一致[7],可能與所用分析軟件不同或不同物種間該基因的啟動子區(qū)序列不同有關(guān)。
一般認為,組織特異性表達基因均具有TATA box[10]。本研究中MYL1基因有2 個TATA box,所以推測其為組織特異性表達基因。
軟件分析發(fā)現(xiàn),MYL1基因存在有AP 和TFIID 轉(zhuǎn)錄因子的多個結(jié)合位點,這與前人發(fā)現(xiàn)的這些轉(zhuǎn)錄因子對動物生長調(diào)控起著重要作用相一致[11],MYL1基因調(diào)控位點集中于890~1 010 bp 和2 113~2 296 bp 兩個區(qū)域,結(jié)合啟動子分析中發(fā)現(xiàn)的最佳啟動子位于2 102~2 152 bp 處的分析結(jié)果,為進一步分析AP 和TFIID 轉(zhuǎn)錄因子對2 102~2 296 bp 區(qū)域啟動子區(qū)序列的調(diào)控研究奠定了基礎(chǔ)。研究發(fā)現(xiàn)小鼠[12]和豬[7]MYL1基因的啟動子區(qū)受到肌肉組織特異增強子元件,如MEF2、MEF3 等的調(diào)控,但本研究中未發(fā)現(xiàn)此類調(diào)控元件的結(jié)合位點,可能與物種有關(guān),有待于進一步研究證明。
3.2 小尾寒羊不同組織間MYL1 蛋白的表達 前期研究發(fā)現(xiàn)MYL1基因在綿羊骨骼肌中的轉(zhuǎn)錄水平顯著高于其他組織[8-9]。本實驗表明MYL1 蛋白只在小尾寒羊骨骼肌中表達,在其他組織中均不表達,該結(jié)果與豬[13]、脊尾白蝦[6]和斑馬魚[2]的研究結(jié)果相一致,并且與序列分析時得出的“該基因是組織特異性表達基因”的推測相一致。本實驗檢測到MYL1 蛋白只有1 種亞型,而前期研究發(fā)現(xiàn)其轉(zhuǎn)錄后有多種可變剪接體[8-9],說明該基因雖然轉(zhuǎn)錄水平多樣化,但其翻譯水平是一樣的。
本研究推測MYL1基因有多個啟動子,可結(jié)合多種轉(zhuǎn)錄因子;該基因為綿羊骨骼肌組織特異性表達的基因;雖然其轉(zhuǎn)錄水平多樣化,但翻譯蛋白只有1 種。