黃燕鳳 翟露 劉玉花 馬翠 韋薇 戴霞
1 廣西醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院護(hù)理部(南寧530021)
2 廣西醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院老年消化內(nèi)科
糖尿病可引起血管內(nèi)皮損傷和功能異常,促進(jìn)動(dòng)脈粥樣硬化的發(fā)生發(fā)展,導(dǎo)致冠心病、缺血性腦卒中及下肢動(dòng)脈閉塞等,是糖尿病患者致死致殘的主要原因[1,2]。而這種血管內(nèi)皮功能障礙的發(fā)生與骨髓內(nèi)皮祖細(xì)胞(endothelial progenitor cells,EPCs)密切相關(guān)[3]。EPCs是血管內(nèi)皮細(xì)胞的前體細(xì)胞,當(dāng)血管內(nèi)皮發(fā)生局部難以修復(fù)的損傷后,EPCs可向血管損傷部位遷移至血管內(nèi)皮,參與血管新生和血管內(nèi)皮修復(fù)[4]。然而,當(dāng)機(jī)體患糖尿病時(shí),EPCs的數(shù)量減少、功能受損,不能有效地發(fā)揮EPCs內(nèi)皮修復(fù)作用[5,6]。因此,尋求改善糖尿病狀態(tài)下EPCs功能的方法及其相關(guān)機(jī)制,對(duì)于治療糖尿病血管病變有重要意義。
目前,不少研究證實(shí)有氧運(yùn)動(dòng)能提高老年人、冠心病以及慢性心衰患者的EPCs遷移功能,促進(jìn)損傷內(nèi)皮的修復(fù)[7-9]。但目前關(guān)于運(yùn)動(dòng)對(duì)糖尿病患者或者動(dòng)物模型的EPCs功能作用研究較少,尚未發(fā)現(xiàn)有研究報(bào)道有氧運(yùn)動(dòng)、抗阻運(yùn)動(dòng)以及聯(lián)合有氧-抗阻運(yùn)動(dòng)(聯(lián)合運(yùn)動(dòng))對(duì)糖尿病EPCs遷移能力的影響,且其相關(guān)機(jī)制尚不十分明確。有研究證實(shí),小凹蛋白-1(caveolin-1,Cav-1)參與血管修復(fù)和生成過(guò)程[10,11],但Cav-1與EPCs關(guān)系的研究較少,而高血糖可改變Cav-1 的表達(dá),同時(shí)使EPCs 功能受損[12,13]。運(yùn)動(dòng)是否能通過(guò)調(diào)節(jié)Cav-1 表達(dá)改善糖尿病小鼠EPCs的遷移能力,以及哪種運(yùn)動(dòng)的效果更好有待進(jìn)一步研究。本研究對(duì)2型糖尿病小鼠實(shí)施為期8周的有氧運(yùn)動(dòng)、抗阻運(yùn)動(dòng)以及聯(lián)合運(yùn)動(dòng)干預(yù),體外分離培養(yǎng)骨髓源EPCs后比較各組EPCs遷移能力以及Cav-1 蛋白表達(dá)情況,探索哪種運(yùn)動(dòng)更能改善EPCs 遷移能力以及Cav-1 蛋白表達(dá),從而促進(jìn)血管內(nèi)皮修復(fù)和血管再生,為運(yùn)動(dòng)治療糖尿病、防治糖尿病血管并發(fā)癥提供新的基礎(chǔ)研究依據(jù)和新的思路。
將40 只8 周齡雄性db/db 小鼠(品系:BKS-DB/Nju;血糖28 mmol/L;體重42.27±1.21 g;公司:南京大學(xué)-南京生物醫(yī)藥研究院)按照電腦產(chǎn)生的隨機(jī)數(shù)字進(jìn)行編號(hào),隨機(jī)分為有氧運(yùn)動(dòng)組、抗阻運(yùn)動(dòng)組、聯(lián)合有氧+抗阻運(yùn)動(dòng)組(聯(lián)合運(yùn)動(dòng)組)以及對(duì)照組,每組10只。
RIPA 裂解液(碧云天)、PMSF溶液(索萊寶)、10X電泳轉(zhuǎn)膜液(索萊寶)、甲醇溶液(成都科龍)、5X Tris-甘氨酸電泳緩沖液(索萊寶)、抗體Cav-1(100 μl)(美國(guó)CST 公司)、Western blot 一抗稀釋液(索萊寶)、Western blot 二抗稀釋液(碧云天)、1×PBS 緩沖液(pH 7.2- 7.4,索萊寶)、蛋白磷酸酶抑制劑混合物(100X,索萊寶)、BCA 蛋白濃度測(cè)定試劑盒(碧云天)、熒光二抗(羊抗兔,美國(guó)LICOR 公司)、熒光二抗(羊抗鼠,美國(guó)LICOR公司)。
各組均以普通飼料喂養(yǎng)??瞻捉M不進(jìn)行任何運(yùn)動(dòng)干預(yù);各運(yùn)動(dòng)組分別采取相應(yīng)的運(yùn)動(dòng),運(yùn)動(dòng)方案參考既往研究并改良[14,15],由專人負(fù)責(zé)運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練干預(yù),每周運(yùn)動(dòng)6 天,共8 周。有氧運(yùn)動(dòng)組db/db 小鼠在坡度均為0度WDW-1型8跑道小鼠跑臺(tái)(北京東西儀器科技有限公司,出廠編號(hào):2016020-022)跑步。在第1周時(shí)有氧運(yùn)動(dòng)速度為10 m/min,逐漸增加至15 m/min,30 min/d,第2~8周速度為15 m/min,60 min/d??棺柽\(yùn)動(dòng)組db/db小鼠的尾部纏繞一定重量的水球進(jìn)行爬梯訓(xùn)練,具體干預(yù)方案見(jiàn)表1。聯(lián)合運(yùn)動(dòng)組每周的運(yùn)動(dòng)量為有氧運(yùn)動(dòng)與抗阻運(yùn)動(dòng)各一半的方式,見(jiàn)表2。
表1 抗阻運(yùn)動(dòng)組運(yùn)動(dòng)方案
表2 聯(lián)合運(yùn)動(dòng)組運(yùn)動(dòng)方案
于運(yùn)動(dòng)干預(yù)第8 周后取材,各組分離培養(yǎng)EPCs 方法均一致。頸椎脫臼法處死小鼠,于75%乙醇內(nèi)浸泡5~10 min,無(wú)菌分離小鼠肱骨、股骨及脛骨并離斷,以含三抗(青霉素-鏈霉素-慶大霉素)的無(wú)菌PBS 充分沖洗骨髓腔,收集骨髓細(xì)胞至無(wú)菌15 ml 離心管中,將骨髓腔沖洗液輕柔吹打均勻后,按1︰1 體積緩慢滴加于淋巴細(xì)胞分離液上,2000 rpm/min 離心 20 min 后用巴氏吸管吸取出中間白色云霧狀細(xì)胞層,加入PBS 清洗細(xì)胞去除殘留的淋巴細(xì)胞分離液,離心獲取細(xì)胞沉淀,加入EGM-2MV 培養(yǎng)基重懸細(xì)胞。將細(xì)胞培養(yǎng)物接種于包被了纖維黏連蛋白(FN 蛋白)的T25 細(xì)胞培養(yǎng)瓶中,于二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。此后,每天觀察細(xì)胞生長(zhǎng)情況,每3天換液一次,去除非貼壁細(xì)胞。細(xì)胞擴(kuò)增至一定數(shù)量后進(jìn)行EPCs的鑒定,待細(xì)胞匯合度達(dá)到80%后開(kāi)始進(jìn)行細(xì)胞傳代培養(yǎng)。
向各組的24孔板中依次加入DiI 標(biāo)記的乙?;兔芏戎鞍祝―iI-ac-LDL,Molecular Probes 公司)和帶FITC 熒光標(biāo)記的豌豆凝集素(FITC-UEA-I,Sigma 公司),共聚焦顯微鏡觀察到Dil-acLDL、FITC-UEA-I雙染色陽(yáng)性的細(xì)胞被認(rèn)為是正在分化的EPCs[16]。流式細(xì)胞檢測(cè)CD133 表型,Anti-mouseIgG-Fc/PE(博奧森)作為同型對(duì)照(陰性對(duì)照),將PE熒光標(biāo)記的造血干細(xì)胞抗原CD133 抗體(博奧森)加入待測(cè)細(xì)胞溶液中孵育30 min。PBS 溶液洗滌后,以300 g/min 轉(zhuǎn)速離心5 min,重懸調(diào)整細(xì)胞密度后,流式細(xì)胞儀檢測(cè)CD133 表型表達(dá)情況。
采用細(xì)胞劃痕實(shí)驗(yàn)反映細(xì)胞遷移功能。1~3×106個(gè)EPCs 接種于6 孔板,置于37℃、5% CO2的細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。用200 μL 移液器配合直尺槍頭垂直于6 孔板,對(duì)照預(yù)先畫(huà)好的線,均勻畫(huà)條痕。用1×PBS緩沖液洗滌6 孔板3 次,去除劃下的細(xì)胞,加入無(wú)血清培養(yǎng)基繼續(xù)置37℃、5% CO2的細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。各組EPCs分別于0 h、48 h在倒置熒光/相差顯微鏡成像分析系統(tǒng)定點(diǎn)拍照并分析,繪制柱狀圖[17,18]。
往25 cm2細(xì)胞培養(yǎng)瓶里加PIRA裂解液、苯甲基磺酰氟溶液(PMSF)、蛋白磷酸酶抑制劑混合液以裂解EPCs,裂解后進(jìn)行4℃、14000 r/min 的條件離心15 min,吸取上清液,5×蛋白上樣緩沖液按照1︰5體積比加入上清液,混勻后槽式加熱器調(diào)節(jié)溫度100℃,加熱10 min 使蛋白變性。使用BCA 法測(cè)定蛋白濃度,將蛋白進(jìn)行10%十二烷基硫酸鈉(SDS)-聚丙烯酰胺凝膠電泳分離并轉(zhuǎn)到聚偏二氟乙烯膜上(PVDF)。制備蛋白凝膠后,電泳、轉(zhuǎn)膜,5%脫脂奶粉封閉至少1 h,之后用TBST 洗滌。一抗孵育2 h 后二抗孵育1 h,TBST 洗滌,最后用Odyssey 雙色紅外激光成像系統(tǒng)掃描,選擇800 通道,調(diào)節(jié)明亮度,記錄各組蛋白灰度值。
采用Image J 軟件分析圖片,SPSS 22.0 統(tǒng)計(jì)軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,組間比較采用單因素方差分析,檢驗(yàn)水準(zhǔn)為α=0.05,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
骨髓分離后獲得的細(xì)胞在FN 蛋白包被的培養(yǎng)瓶中培養(yǎng),24 h 開(kāi)始貼壁,4 d 貼壁基本完全,可見(jiàn)較多貼壁細(xì)胞,呈圓形、短梭形,部分為長(zhǎng)梭形;隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長(zhǎng),圓形細(xì)胞數(shù)量減少,梭形細(xì)胞數(shù)量漸漸增多,可出現(xiàn)細(xì)胞集落,7 d 后EPCs 大量增殖,并有梭形貼壁細(xì)胞在其邊緣不斷生成,可出現(xiàn)“鋪路石”樣改變,見(jiàn)圖1。
圖1 倒置顯微鏡下EPCs的形態(tài)(×100)
在激光共聚焦顯微鏡下,胞漿攝取DiI-ac-LDL,顯示紅色,胞膜結(jié)合FITC-UEA-I,顯示綠色,雙染色陽(yáng)性細(xì)胞為黃色,為正在分化的EPCs。各組EPCs 的DiIac-LDL 及FITC-UEA-I 雙染陽(yáng)性率為73.50%±7.47%(圖2)。流式細(xì)胞儀檢測(cè)表型CD133 檢出率為63.29%(圖3)。
圖2 DiI-ac-LDL及FITC-UEA-I雙染試驗(yàn)結(jié)果(×200)
本研究觀察了運(yùn)動(dòng)8 周后EPCs 的遷移能力,與對(duì)照組相比,運(yùn)動(dòng)可以改善EPCs 的遷移能力。8 周運(yùn)動(dòng)結(jié)果顯示:與對(duì)照組相比,有氧運(yùn)動(dòng)、抗阻運(yùn)動(dòng)以及聯(lián)合運(yùn)動(dòng)均能明顯改善EPCs 的遷移能力(P<0.05),且聯(lián)合運(yùn)動(dòng)較有氧運(yùn)動(dòng)、抗阻運(yùn)動(dòng)效果更佳(P<0.05)。見(jiàn)圖4。
圖3 流式細(xì)胞儀檢測(cè)CD133表型
圖4 各組EPCs在干預(yù)8周后的遷移功能比較
經(jīng)過(guò)8 周的運(yùn)動(dòng)干預(yù),我們采用Western blotting法檢測(cè)糖尿病小鼠EPCs的Cav-1蛋白表達(dá)水平。檢測(cè)結(jié)果顯示,與對(duì)照組、有氧運(yùn)動(dòng)組和抗阻運(yùn)動(dòng)組相比,聯(lián)合運(yùn)動(dòng)組Cav-1 蛋白表達(dá)水平升高(P<0.05)。有氧運(yùn)動(dòng)組、抗阻運(yùn)動(dòng)組與對(duì)照組間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見(jiàn)圖5。
圖5 各組EPCs在運(yùn)動(dòng)干預(yù)8周后Cav-1表達(dá)水平的比較
研究表明,當(dāng)血管內(nèi)皮受損時(shí),EPCs 可以從骨髓動(dòng)員、遷移,整合到血管網(wǎng)絡(luò),通過(guò)分化為成熟的內(nèi)皮細(xì)胞從而修復(fù)損傷血管和生成新的血管[4,5]。而2型糖尿病會(huì)導(dǎo)致EPCs的遷移能力下降,影響其趨化至受損內(nèi)皮進(jìn)行黏附、侵襲,從而使其修復(fù)內(nèi)皮的功能減弱[19]。不少研究報(bào)道稱有氧運(yùn)動(dòng)或耐力訓(xùn)練能改善中老年人EPCs 的遷移能力[7,20],然而在病理狀態(tài)下,不同的運(yùn)動(dòng)方式對(duì)EPCs的影響效果可能不同。目前,不同運(yùn)動(dòng)方式對(duì)2 型糖尿病患者EPCs 功能的作用尚未十分明確,相關(guān)機(jī)制也尚不清楚。本實(shí)驗(yàn)對(duì)糖尿病db/db 小鼠進(jìn)行8周的運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練,有氧、抗阻及聯(lián)合運(yùn)動(dòng)三種運(yùn)動(dòng)方式組均呈現(xiàn)出較對(duì)照組更強(qiáng)的骨髓EPCs 體外遷移能力,提示規(guī)律的運(yùn)動(dòng)可提高EPCs 的遷移能力,促進(jìn)EPCs 的血管內(nèi)皮修復(fù)功能,與夏文豪等[20]的研究結(jié)果一致。本研究還發(fā)現(xiàn),三種運(yùn)動(dòng)呈現(xiàn)出不同的促進(jìn)作用效果,其中以聯(lián)合運(yùn)動(dòng)組的運(yùn)動(dòng)效果最佳,其增強(qiáng)EPCs遷移能力的效果較單純的有氧、抗阻運(yùn)動(dòng)有顯著差異。本研究認(rèn)為需進(jìn)一步探究聯(lián)合運(yùn)動(dòng)對(duì)2型糖尿病患者骨髓EPCs 影響的作用機(jī)制,為2 型糖尿病患者或相關(guān)血管疾病的預(yù)防、診斷與治療以及疾病的延緩提供更好的資料。
為了探索運(yùn)動(dòng)改善EPCs 功能活性的可能分子機(jī)制,我們對(duì)各組糖尿病小鼠EPCs 中與內(nèi)皮修復(fù)相關(guān)的Cav-1 蛋白表達(dá)量進(jìn)行檢測(cè)。Cav-1 是小凹蛋白家族成員之一,在內(nèi)皮細(xì)胞中含量豐富[21]。血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子受體2(vascular endothelial growth factor recep?tor 2,VEGFR-2)定位于Cav-1 中,Cav-1 可通過(guò)正性或負(fù)性調(diào)控VEGFR-2 從而調(diào)節(jié)血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(VEGF)的信號(hào)通路,參與EPCs的內(nèi)皮損傷修復(fù)過(guò)程[22]。有研究報(bào)道,雌激素能促進(jìn)EPCs 的增殖,與雌激素調(diào)控Cav-1的表達(dá)有關(guān)[23]。本研究結(jié)果顯示,經(jīng)過(guò)聯(lián)合運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練后Cav-1 蛋白的表達(dá)明顯提高,并改善了EPCs遷移能力,提示聯(lián)合運(yùn)動(dòng)可能通過(guò)上調(diào)Cav-1 蛋白的表達(dá)改善EPCs 的遷移能力。已有研究報(bào)道,Cav-1 缺失后,EPCs 從骨髓到外周的動(dòng)員減少[24]。Wunderlich等[25]通過(guò)對(duì)Cav-1表達(dá)缺陷小鼠的研究發(fā)現(xiàn),Cav-1基因的表達(dá)缺陷可導(dǎo)致其心血管系統(tǒng)出現(xiàn)明顯的異常。Rodriguez-Feo等[26]研究發(fā)現(xiàn),粥樣斑塊處Cav-1蛋白表達(dá)水平降低,且其低表達(dá)與不穩(wěn)定斑塊的形成密切相關(guān)。以上多個(gè)研究與本研究結(jié)果均表明,血管內(nèi)皮的穩(wěn)定修復(fù)不能缺少Cav-1。然而,也有研究表明,糖尿病狀態(tài)下血管功能失調(diào),可能與高糖所致的Cav-1 表達(dá)增高有關(guān)[27]??梢?jiàn),Cav-1的表達(dá)水平高低影響著血管內(nèi)皮的修復(fù)。而本研究結(jié)果顯示,聯(lián)合運(yùn)動(dòng)組明顯上調(diào)EPCs 的Cav-1 蛋白表達(dá)水平,提示Cav-1 可能參與聯(lián)合運(yùn)動(dòng)相關(guān)EPCs功能活性的改善,且其表達(dá)水平對(duì)EPCs遷移功能有促進(jìn)作用;亦表明聯(lián)合運(yùn)動(dòng)方式較單純有氧或抗阻運(yùn)動(dòng)方式更能提高Cav-1蛋白表達(dá)水平,從而更好地改善EPCs功能,修復(fù)內(nèi)皮損傷。
本研究結(jié)果表明,EPCs 上調(diào)Cav-1 蛋白的表達(dá)對(duì)于其遷移功能的促進(jìn)作用不可或缺,聯(lián)合運(yùn)動(dòng)可通過(guò)提升Cav-1 蛋白的表達(dá)水平達(dá)到改善EPCs 遷移能力。本研究為采用運(yùn)動(dòng)及干細(xì)胞防治糖尿病血管疾病提供了新的證據(jù)。有關(guān)聯(lián)合運(yùn)動(dòng)通過(guò)Cav-1蛋白調(diào)節(jié)EPCs的具體機(jī)制還有待進(jìn)一步研究。