李 鵬 王雅春
(1.中國農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科技學(xué)院 北京 100193;2.福建順鑫鑫源食品有限公司 福建南平 354004)
Toll樣受體(Toll-like receptors,TLRs)是生物進化過程中較為保守的I型跨膜蛋白,也是目前在哺乳動物中研究最多的模式識別受體,可識別細(xì)菌或病毒 的多種抗原成分,如鞭毛蛋白、脂多糖、病毒RNA等[1-3]。
TLRs作為重要的模式識別受體,一直受到研究者們的重視,隨著對豬TLRs研究的深入,很多病原的致病機制、益生菌保護作用的分子基礎(chǔ)得到了合理的解釋。另外,豬的TLRs基因中普遍存在非同義單核苷酸多態(tài)性(Single nucleotide polymorphism,SNP),并且主要集中在胞外編碼區(qū),這在疫苗設(shè)計上的應(yīng)用也具有重要意義[4]。
目前,在哺乳動物細(xì)胞中發(fā)現(xiàn)了13種TLRs,其中10種在豬細(xì)胞上得到了克?。═LR1-10)。根據(jù)TLRs在豬體內(nèi)細(xì)胞上的分布及其接頭分子的種類,豬TLRs可分為兩大類:第一類表達于細(xì)胞表面,主要識別微生物或其特定成分,包括TLR1、TLR2、TLR4、TLR5、TLR6 和 TLR10[4];第二類分布在細(xì)胞器膜表面,主要識別核酸及其衍生物,包括TLR3、TLR7、TLR8 和 TLR9[5-6]。
在不同組織或細(xì)胞上TLRs的表達水平具有明顯差異[7-8],免疫相關(guān)的組織或細(xì)胞上的表達水平相對較高,如脾臟、腸系膜淋巴結(jié)以及與外界環(huán)境接觸的腸和氣管等粘膜組織[9]。在豬生殖系統(tǒng)中不同器官TLRs的表達水平也明顯不同,如TLR3和TLR5在豬睪丸、附睪、卵巢和輸卵管中表達水平較高,而TLR9的表達水平較低,在胚胎中TLR1表達水平較高[10]。另外,TLRs在細(xì)胞上的表達水平還與豬的品種、生長日齡及飼料種類有關(guān),如大多數(shù)TLRs在藏豬細(xì)胞上的表達量顯著多于約克夏豬,且隨著豬日齡的增長其表達量也隨之增加[11];成年豬腸系膜淋巴結(jié)TLR1和TLR6、胃TLR3的表達量顯著高于新生仔豬;在12周齡的豬體內(nèi),約克夏豬和藏豬脾臟、血液、胸腺的TLR5及其脾臟的TLR6、TLR7,約克夏豬脾臟的TLR3、TLR4,藏豬扁桃體的TLR9均具有較高的表達水平[11];蘆薈多糖可以提高豬肝臟和脾中TLR2和TLR4的表達水平,這有助于提高斷奶仔豬的免疫功能[12]。這些TLRs表達差異可能與豬的抗病能力密切相關(guān)。
通過物種間進化分析發(fā)現(xiàn),哺乳動物TLRs可大致分為6組,且豬與人的TLRs進化關(guān)系比較接近,見圖 1。 TLR1、TLR2 和 TLR6(也包含 TLR10,但其配體尚不明確)為一組,主要識別革蘭氏陽性菌的復(fù)合物,TLR1、TLR6和 TLR10與TLR2來源于同一分支[13],而 TLR1、TLR6(可能包含 TLR10)與 TLR2形成二聚體發(fā)揮作用[14-15]。與其它TLRs相比,TLR3、TLR4、TLR5在進化上比較特殊,分別各為一組,TLR4主要識別革蘭氏陰性菌的脂多糖成分,TLR3、TLR5分別識別不同病毒或細(xì)菌的抗原組分[16]。TLR7、TLR8和TLR9分為一組,主要分布在宿主細(xì)胞的細(xì)胞器膜上,在病毒成分的識別上發(fā)揮主要作用。鼠TLR11、TLR12和TLR13在人和偶蹄獸動物中還沒有發(fā)現(xiàn),其中TLR11主要識別非病原菌,TLR12和TLR13還沒找到相應(yīng)的配體[17]。
圖1 哺乳動物TLRs進化樹
入侵的細(xì)菌、病毒等微生物或其特定成分被TLRs識別后,TLRs下游信號通路將被激活,進而上調(diào)促炎細(xì)胞因子或干擾素的表達[4](見圖2)。髓樣分化因子(myeloid differentiation factor88,MyD88)是TLR信號通路中一個重要的接頭分子,根據(jù)TLR信號通路對MyD88的依賴性,TLRs信號通路分為兩種:MyD88-dependent和 MyD88-independent signaling pathways,在傳遞上游信息和疾病發(fā)生發(fā)展中具有重要的作用[13]。
3.1 TLR1、TLR2和TLR6 它們在進化關(guān)系上比較接近,且TLR2與TLR1或TLR6形成異質(zhì)二聚體發(fā)揮功能,參與識別多種抗原分子,如革蘭氏陽性菌的肽聚糖和脂磷壁酸、分枝桿菌的脂阿拉伯甘露糖、錐形蟲的糖基磷脂酰肌醇以及酵母或其它真菌的酵母多糖[18]。有研究表明受體和配體的相互作用能有效促進抗原遞呈細(xì)胞識別抗原的能力,進而促進細(xì)胞的吞噬及下游信號通路過程,豬TLR2就發(fā)揮這種受體功能,可高效促進豬抗原遞呈細(xì)胞識別并吞噬詹氏乳酸桿菌[19]??贵w封閉豬肺泡巨噬細(xì)胞(Porcine alveolar macrophages,PAMs)TLR2 和 TLR6可顯著降低豬肺炎支原體(Mycoplasma hyopneumoniae)誘導(dǎo)的TNF-α的表達水平,說明豬 TLR2和TLR6在宿主識別和抵御M.hyopneumoniae感染中起重要作用。真菌產(chǎn)生的脫氧雪腐鐮刀菌烯醇(Deoxynivalenol,DON)可破壞腸上皮細(xì)胞的屏障保護功能,可能還與腸道炎癥有關(guān),而豬腸上皮細(xì)胞的TLR2相關(guān)信號通路可抑制DON對腸道粘膜屏障的破壞[20]。鼠李糖乳桿菌(Lactobacillus rhamnosus)CRL1505可以通過TLR2信號通路提高Th1型免疫反應(yīng),上調(diào)豬腸上皮細(xì)胞IL-6和TNF-α的表達[21]。
3.2 TLR4 TLR4在豬各種組織中廣泛存在,主要識別革蘭氏陽性菌的LPS或脂質(zhì)A,可誘導(dǎo)產(chǎn)生多種促炎細(xì)胞因子的分泌,在抵抗革蘭氏陽性菌的感染上發(fā)揮重要作用,然而LSP過度上調(diào)促炎因子的表達可能會導(dǎo)致嚴(yán)重的炎癥反應(yīng)。用LPS刺激豬小腸上皮細(xì)胞可顯著上調(diào)TLR4和炎性因子TNF-α、IL-1β的表達,說明在豬體內(nèi)TLR4及其相關(guān)信號通路參與了LPS引起的炎癥反應(yīng)[22]。嗜酸乳酸桿菌(Lactobacillus acidophilus)是一種非常重要的益生菌,可調(diào)節(jié)腸道菌群平衡,有效抑制腸道不良微生物的繁殖,研究發(fā)現(xiàn)L.acidophilus可通過TLR4/NF-κB信號通路降低豬外周血淋巴細(xì)胞促炎細(xì)胞因子的表達水平緩解LPS引起的炎癥反應(yīng),進而增加豬日進食量和日增重[23]。另外,豬TLR4可能還在抗病毒感染中起作用,如圓環(huán)病毒2型(Porcine circovirus type 2,PCV2)可上調(diào)TLR4的表達水平,進而激活下游信號通路,上調(diào)相關(guān)抗病毒細(xì)胞因子的表達[24]。
3.3 TLR5 TLR5特異地識別細(xì)菌的鞭毛蛋白,被激活后可誘導(dǎo)下游復(fù)雜的級聯(lián)反應(yīng),通過NF-κB信號通路,上調(diào)促炎細(xì)胞因子及趨化因子的表達。通過單核苷酸多態(tài)性分析發(fā)現(xiàn)民豬(Min pig)TLR5含有4個非同義單核苷酸多態(tài)性(Single nucleotide polymorphisms,SNPs)位點,分別為 c.176C>T(p.R59M)、c.902C>T(p.S301F)、c.959T>A(p.F320Y)和 c.1796C>T(p.T599M,reference sequence:GenBank No.AB208697),其中 SNP c.1796C>T(p.T599M)位于TLR5胞外區(qū)的一個N端糖基化位點編碼區(qū)域,豬TLR5 SNPs可能與細(xì)胞識別細(xì)菌鞭毛蛋白的能力密切相關(guān)[25]。
圖2 TLRs誘導(dǎo)的不同信號通路示意圖
3.4 TLR3、TLR7、TLR8 和 TLR9TLR3、TLR7、TLR8和TLR9分布在細(xì)胞器膜表面,主要通過上調(diào)抗病毒細(xì)胞因子I型干擾素(IFN-α/β)的表達發(fā)揮抗病毒作用。TLR3可識別病毒雙鏈RNA,在PAMs中TLR3在識別病毒RNA上起著重要作用;TLR7和TLR8識別單鏈RNA;TLR9識別非甲基化CpG DNA,這種核酸基序一般存在于細(xì)菌的基因組DNA中,也存在于病毒基因組中,如單純皰疹病毒2型[26]。病毒核酸被相應(yīng)的TLRs識別后,下游的轉(zhuǎn)錄因子(包括IRF1、IRF3和IRF7)被激活,從而上調(diào)IFN-α/β的表達水平。如 H3N2豬流感病毒(Swine influenza virus,SIV)可 顯 著 提 高 PAMs 中TLR3、TLR7 的表達,進而上調(diào) IFN-α 的表達[27];高致病性豬繁殖與呼吸綜合征病毒(Highly pathogenic porcine reproductive and respiratory syndrome virus,HP-PRRSV)可顯著上調(diào)TLR3、TLR7和TLR8的表達,進一步誘導(dǎo) IL-1β、IL-6、TNF-α 和 IFN-γ 的分泌[28]。氧化劑和抗氧化劑可有效干預(yù)PRRSV對TLR3/NF-κB信號通路的激活,提示該信號通路的激活可能是通過細(xì)胞的氧化應(yīng)激機制調(diào)節(jié)的[29]。然而目前很多研究表明PRRSV感染可下調(diào)宿主細(xì)胞IFN-α/β的表達,其分子機制也得到初步研究:PRRSV可阻止雙鏈RNA或仙臺病毒誘導(dǎo)的IRF3磷酸化及核轉(zhuǎn)位過程[30],與PCV2聯(lián)合感染可抑制TLR3、 TLR7 和 TLR9 的表達[31],進而抑制 IFN-α/β的表達。在腎臟的冷藏過程中,caspase-3小干擾RNA(Small interfering RNA,siRNA)灌注腎動脈可有效保存腎臟的活性,然而將此方法用于處理豬自體移植腎臟時,腎臟出現(xiàn)嚴(yán)重的炎癥反應(yīng)和細(xì)胞凋亡,不能起到很好的保存效果,通過western blotting和quantitative PCR檢測發(fā)現(xiàn),caspase-3 siRNA可上調(diào)豬自體移植腎臟TLR3、TLR7及其接頭分子TRIF和MyD88的表達水平,進而上調(diào)促炎細(xì)胞因子 IL-1、IL-6、TNF-α 和 IFN-α/β 的表達[32]。
TLRs是宿主識別入侵病原微生物的重要模式識別受體,同時也與自身免疫反應(yīng)的調(diào)節(jié)及自身免疫病密切相關(guān)。因此,需要更加深入地了解TLRs在細(xì)胞內(nèi)發(fā)揮的作用,以TLRs為靶標(biāo)探索解決機體免疫失衡的方法。目前在藥物或病理研究方面,活體動物模型主要以小鼠為主[33],但是鼠和人的TLRs在功能上還存在較大的差異,比如用脂多糖(Lipopolysaccharides,LPS)處理小鼠和人的星狀膠質(zhì)細(xì)胞,其TLR4發(fā)揮著不同的功能[34],這說明小鼠動物模型在人TLRs研究方面不能提供充分的數(shù)據(jù)。然而有證據(jù)顯示豬的TLRs在功能上與人更接近[35],越來越多的研究發(fā)現(xiàn)在人的某些傳染病和自然免疫病方面,豬可以作為較好的動物模型。因此,對豬TLRs深入系統(tǒng)地研究可為養(yǎng)豬業(yè)的健康發(fā)展和人類疾病研究提供重要參考。