孫平 向澤棟 董丹華 高鵬
摘? ? ? 要: 以懸鈴木成熟的球果為原料,通過單因素和正交試驗(yàn)對(duì)超聲波輔助提取懸鈴木總黃酮的工藝進(jìn)行優(yōu)化;并通過考察總黃酮對(duì)DPPH自由基和ABTS自由基的清除率來評(píng)價(jià)其抗氧化活性。結(jié)果表明,懸鈴木總黃酮的最佳提取條件如下:乙醇體積分?jǐn)?shù)為60%,料液比為1∶25(g/mL),超聲時(shí)間30 min,超聲溫度60 ℃,在此優(yōu)化條件下,總黃酮的含量為21.82 mg/g。總黃酮質(zhì)量濃度為20 μg/mL時(shí),具有較強(qiáng)的清除自由基能力,清除DPPH自由基和ABTS自由基為85.38%和98.84%。
關(guān)? 鍵? 詞:懸鈴木;球果;超聲輔助提取;總黃酮;抗氧化活性
中圖分類號(hào):R284.2? ? ? ?文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼: A? ? ? ?文章編號(hào): 1671-0460(2019)10-2214-05
Abstract: Using the mature cones of Platanus as raw material, on the basis of single factor tests, the optimum conditions of ultrasonic-assisted extraction of total flavonoids were optimized by orthogonal tests. Meanwhile, the antioxidant activity of total flavonoids from Platanus was evaluated by DPPH and ABTS+ scavenging capacity. The results showed that the optimal extraction conditions of total flavonoids were as follows: the ethanol volume 60%, the ratio of water to raw material 1:25(g/mL),the ultrasonic temperature 60 ℃, the time 30 min. Under these conditions, the total flavonoids content was 21.82 mg/g. When the total concentration of flavonoids was 20 μg/mL, the scavenging rate of total flavonoids on DPPH and ABTS+ were 85.38% and 98.84%, which indicated that the total flavonoids of Platanus had strong antioxidant activity.
Key words: Platanus; Cones; Ultrasonic-assisted extraction; Total flavonoids; Antioxidant activity
懸鈴木為懸鈴木科(Platanaceae)落葉大喬木,亞洲、歐洲和北美洲為其主要栽種地區(qū)[1]。我國引入栽培主要是一球、二球和三球懸鈴木三種,其中雜交種二球懸鈴木[2]是我國的主要栽培品種。懸鈴木被稱為“行道樹之王”,可以凈化空氣微小顆粒、隔音防噪和降低地面溫度,并且在民間還使用樹皮治療腹瀉、牙痛[3]等疾病。經(jīng)現(xiàn)代研究發(fā)現(xiàn),懸鈴木擁有多種化學(xué)成分,如黃酮、多酚、三萜、糖苷、有機(jī)酸及其衍生物等[4-6],并且分離出新型骨架成分[7]。
此外還從懸鈴木的不同組織器官中提取分離出具有抗氧化、抗炎、細(xì)胞毒性、抑菌活性、抑制小鼠妊娠、抗腫瘤、抗HIV、保護(hù)肝腎、解偶聯(lián)[4,8-13]等生物活性物質(zhì)。但在4-6月份,懸鈴木成熟球果開始脫落,在外力作用下果毛四處飛散,造成過敏和炎癥[14]和環(huán)境污染。目前對(duì)懸鈴木的研究主要集中在樹皮和葉子上,對(duì)球果尤其是成熟的球果研究較少。因此,通過超聲輔助溶劑提取法提取懸鈴木中的總黃酮成分,并應(yīng)用單因素和正交試驗(yàn)優(yōu)化提取工藝,探究懸鈴木總黃酮對(duì)DPPH自由基和ABTS+自由基的清除能力。根據(jù)提取工藝優(yōu)化結(jié)果和抗氧化能力分析,可以為懸鈴木總黃酮的開發(fā)應(yīng)用提供理論依據(jù),還為其活性成分和藥理作用的進(jìn)一步研究奠定基礎(chǔ)。
1? 實(shí)驗(yàn)部分
1.1? 實(shí)驗(yàn)材料
懸鈴木球果 采自山東中醫(yī)藥大學(xué)校內(nèi);蘆丁對(duì)照品(純度≥98%) 購自上海源葉生物;DPPH、ABTS 購自上海麥克林公司;乙醇 購自天津市四通化工廠;維生素C(Vc) 購自國藥集團(tuán);其他試劑 均為國產(chǎn)分析純。
1.2? 實(shí)驗(yàn)儀器
KQ-500E型超聲波清洗機(jī) 昆山市超聲儀器有限公司;DFY-600C高速粉碎機(jī) 無錫久平儀器有限公司;XS105DU電子天平 梅特勒-托利多集團(tuán);752型紫外可見分光光度計(jì) 上海舜宇恒平科學(xué)儀器有限公司。
2? 實(shí)驗(yàn)方法
2.1? 懸鈴木總黃酮提取
懸鈴木球果干燥后粉碎并過24目篩。取約1.0 g樣品,精密稱定,置于具塞錐形瓶中,按照不同的考察因素對(duì)總黃酮進(jìn)行超聲輔助溶劑提取,離心取得上清液,制得總黃酮提取液。
2.2? 蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制
采用硝酸鈉-亞硝酸鋁比色法測(cè)定懸鈴木總黃酮含量,精密稱定20 mg蘆丁對(duì)照品,用60%乙醇配置成0.20 mg/mL的蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品溶液。準(zhǔn)確吸取0.0、2.5、5.0、7.5、10.0、12.5 mL的標(biāo)準(zhǔn)品溶液于25 mL量瓶中,加入1.0 mL 5 %亞硝酸鈉溶液、1.0 mL 10%硝酸鋁溶液,震蕩均勻后放置5 min,再加10.0 mL 4%氫氧化鈉溶液,用60%乙醇加至刻度線,震蕩均勻后放置15 min[15]。以蘆丁試劑空白作為參比液,在505 nm波長(zhǎng)下測(cè)吸光度,根據(jù)蘆丁濃度和吸光度繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
2.3? 單因素試驗(yàn)
采用2.1下法提取懸鈴木總黃酮,提取條件為:料液比1∶20 g/mL、超聲時(shí)間30 min、超聲溫度60 ℃、使用不同乙醇體積分?jǐn)?shù)(40、50、60、70、80%)提取,測(cè)定總黃酮的提取率;乙醇體積分?jǐn)?shù)60%、超聲時(shí)間30 min、超聲溫度60 ℃、根據(jù)總黃酮的提取率考察不同料液比(1∶10、1∶15、1∶20、1∶25、1∶30 g/mL)的影響;乙醇體積分?jǐn)?shù)60%、料液比1∶20 g/mL、超聲溫度60 ℃、使用不同超聲時(shí)間(20、25、30、35、40 min)提取,測(cè)定總黃酮的提取率;乙醇體積分?jǐn)?shù)60%、料液比1∶20 g/mL、超聲時(shí)間30 min、使用不同超聲溫度(40、50、60、70、80 ℃)提取,測(cè)定總黃酮的提取率。
2.4? 正交優(yōu)化試驗(yàn)設(shè)計(jì)
根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,L9(34)正交試驗(yàn)見表1。
2.5? 抗氧化活性測(cè)定
將懸鈴木總黃酮配制成0、2.5、5、7.5、10、12.5、15、17.5、20μg/mL質(zhì)量濃度,以Vc為對(duì)陽性照,分別測(cè)定其對(duì)DPPH自由基和ABTS+自由基的清除率,評(píng)價(jià)其抗氧化活性。
2.5.1? 懸鈴木總黃酮對(duì)DPPH自由基清除能力測(cè)定
參照文獻(xiàn)[16,17]的測(cè)定方法并稍加修改。配制50μg/mL的DPPH乙醇溶液,取1與1 mL不同濃度的樣品溶液或Vc溶液充分混勻,室溫下暗處放置30 min,在517 nm波長(zhǎng)處測(cè)吸光度。計(jì)算公式如下:
DPPH自由基清除率=1-(A1-A2)/A0
式中: A1 —樣品組吸光度;
A2 —樣品本底吸光度(以等體積無水乙醇代替DPPH溶液);
A0 —空白對(duì)照組吸光度(以等體積蒸餾水代替樣品溶液)。
2.5.2? 懸鈴木總黃酮對(duì)ABTS+自由基清除能力測(cè)定
參照文獻(xiàn)[18,19]的測(cè)定方法并稍加修改。配制7 mmol/mL的ABTS+溶液,室溫下與等體積的4.9 mmol/mL過硫酸鉀溶液混合后暗處放置12 h,制成ABTS+儲(chǔ)備液,用pH=7.4的磷酸緩沖液稀釋儲(chǔ)備液20倍制成ABTS+工作液。取不同濃度的樣品溶液和Vc溶液1 mL,加入2.0 mL的ABTS+工作液,震搖均勻后常溫暗處放置10 min,在734 nm波長(zhǎng)處測(cè)吸光度。計(jì)算公式如下:
ABTS+自由基清除率=1-(A1-A2)/A0
式中: A1 —樣品組吸光度;
A2 —樣品本底吸光度(以等體積蒸餾水代替ABTS+溶液);
A0 —空白對(duì)照組吸光度(以等體積蒸餾水代替樣品溶液)。
2.6? 數(shù)據(jù)處理
所有試驗(yàn)均重復(fù)進(jìn)行3次,采用GraphPad Prism 8.0.2對(duì)結(jié)果進(jìn)行分析,結(jié)果表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差(mean±SD)。
3? 結(jié)果分析
3.1? 蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線
以蘆丁為對(duì)照品,根據(jù)蘆丁濃度和吸光度的測(cè)定結(jié)果繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線如圖1。線性回歸方程為Y=11.95X+0.005 7,R2=0.999 4,其中Y為吸光度,X為蘆丁濃度。
3.2? 單因素試驗(yàn)結(jié)果
3.2.1? 乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)總黃酮提取率的影響
由圖2可知,在乙醇體積分?jǐn)?shù)較小時(shí),乙醇體積分?jǐn)?shù)增加會(huì)導(dǎo)致總黃酮提取率增加,在60%時(shí)黃酮提取率最大,之后呈現(xiàn)急劇下降趨勢(shì)。推測(cè)這是由于懸鈴木總黃酮極性較大,當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)過高時(shí),不利于溶解黃酮物質(zhì)。當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)較低時(shí),會(huì)有部分多糖等水溶性雜質(zhì)溶出[20]。因此選擇乙醇體積分?jǐn)?shù)為60%。
3.2.2? 料液比對(duì)總黃酮提取率的影響
由圖3可知,料液比的變化導(dǎo)致總黃酮提取率呈現(xiàn)出先增大后降低的趨勢(shì),在1∶20 g/mL時(shí)黃酮提取率最大,之后呈現(xiàn)緩慢下降趨勢(shì)。推測(cè)由于總黃酮在料液比1∶20 g/mL時(shí)基本溶出,繼續(xù)增加溶劑用量會(huì)使其他雜質(zhì)增加溶出,使黃酮提取率下降[21]因此選擇料液比為1∶20 g/mL。
3.2.3? 超聲時(shí)間對(duì)總黃酮提取率的影響
由圖4可知,總黃酮提取率隨著超聲時(shí)間的增大呈現(xiàn)出先增大后降低的趨勢(shì),在30 min時(shí)黃酮提取率最大,之后呈現(xiàn)緩慢下降趨勢(shì)??赡芤?yàn)檫^長(zhǎng)的超聲時(shí)間會(huì)破壞黃酮類化合物結(jié)構(gòu),使其容易于分解, 而且超聲時(shí)間過長(zhǎng)溫度不好控制, 導(dǎo)致乙醇的揮發(fā), 引起提取率的下降[22]。因此選擇超聲時(shí)間為30 min。
3.2.4? 超聲溫度對(duì)總黃酮提取率的影響
由圖5可知,總黃酮提取率隨著超聲溫度的增大呈現(xiàn)出先增大后降低的趨勢(shì),在30 min時(shí)黃酮提取率最大,之后呈現(xiàn)緩慢下降趨勢(shì)??赡苡捎跍囟仍黾訒?huì)使黃酮成分被破壞,而且也會(huì)增加雜質(zhì)溶出。因此選擇超聲溫度為60 ℃。
3.3? 正交優(yōu)化試驗(yàn)設(shè)計(jì)結(jié)果
由表2正交試驗(yàn)結(jié)果分析可知,各提取工藝條件對(duì)總黃酮提取率影響程度不同,根據(jù)極差分析結(jié)果可知,對(duì)總黃酮提取率的影響主次順序?yàn)锳>B>C>D,即乙醇體積分?jǐn)?shù)的影響最大,其次是料液比,超聲溫度對(duì)提取率的影響最小。懸鈴木總黃酮最佳提取工藝為A2B3C2D2,即乙醇體積分?jǐn)?shù)60%,料液比1∶25 g/mL,超聲時(shí)間30 min,超聲溫度60 ℃。對(duì)最優(yōu)組合進(jìn)行驗(yàn)證試驗(yàn),結(jié)果顯示為21.82 mg/g,大于正交試驗(yàn)結(jié)果中的最大含量21.39 mg/g,表明此提取方法重復(fù)性良好,提取率高,適用于提取懸鈴木總黃酮。
3.4? 對(duì)DPPH自由基清除能力的測(cè)定結(jié)果
由圖6可知,總黃酮質(zhì)量濃度在0~20μg/mL范圍內(nèi),隨著總黃酮質(zhì)量濃度的增加,DPPH自由基清除率隨之增加。當(dāng)總黃酮質(zhì)量濃度為20μg/mL時(shí),對(duì)DPPH自由基清除率達(dá)到85.38%,陽性對(duì)照Vc為77.23%。以上結(jié)果表明懸鈴木總黃酮對(duì)DPPH自由基有良好的清除的能力。
3.5? 對(duì)ABTS+自由基清除能力的測(cè)定結(jié)果
由圖7可知,總黃酮質(zhì)量濃度在0~20μg/mL范圍內(nèi),隨著總黃酮質(zhì)量濃度的增加,ABTS+自由基清除率隨之增加。當(dāng)總黃酮質(zhì)量濃度為10μg/mL時(shí),對(duì)ABTS+自由基清除率達(dá)到98.38%,之后在總黃酮質(zhì)量濃度在10~20μg/mL之間,ABTS+自由基清除率保持相對(duì)穩(wěn)定。總黃酮質(zhì)量濃度在20μg/mL時(shí),對(duì)ABTS+自由基清除率達(dá)到98.38%,高于同濃度陽性對(duì)照Vc對(duì)ABTS+自由基清除率66.33%。以上結(jié)果說明懸鈴木總黃酮具有很高的清除ABTS+自由基的能力。
4? 結(jié) 論
通過單因素和正交試驗(yàn),對(duì)懸鈴木總黃酮的超聲輔助提取工藝進(jìn)行優(yōu)化確定:乙醇體積分?jǐn)?shù)60%、料液比1∶25 g/mL、超聲時(shí)間30 min、超聲溫度60 ℃,懸鈴木總黃酮提取率為21.82 g/mg。
通過抗氧化試驗(yàn),結(jié)果表明在0~20μg/mL范圍內(nèi),懸鈴木總黃酮對(duì)DPPH自由基和ABTS+自由基清除率逐漸增加,總黃酮濃度在20μg/mL時(shí),對(duì)DPPH自由基和ABTS+自由基清除率分別達(dá)到85.38%和98.84%,說明懸鈴木總黃酮具有較強(qiáng)的抗氧化能力。
參考文獻(xiàn):
[1]Carpenter RJ, Hill RS, Jordan GJ. Leaf cuticular morphology links Platanaceae and Proteaceae[J].International Journal of Plant Sciences, 2005, 166 (5): 843-855.
[2]Yang CH,Yang Y,Liu JH.Platachromone A-D:Cytotoxic 2-styrylchromones from the bark of Platanus x acerifolia (Aiton) Willd[J].Phytochemistry Letters,2013,6(3):387-391.
[3] Nishanbaev SZ,Kuliev ZA,Khidyrova NK,et al.New oligomeric proanthocyanidins from bark of Platanus orientalis[J].Khim Prir Soedin,2005,41(4):404-409.
[4] Kaouadji M.Further prenylated flavonols from Platanus acerifolia's unripe buds[J].Tetrahedron Letters,2014,55(7):1285-1288.
[5]Ei-Alfy TS,Ei-Gohary HMA,Sokkar NM,et al.Phenolic constituents of Platanus orientalis L.leaves[J].Natural Product Communications,2008,3(2):199-203.
[6]Khan I,Sangwan PL,Dar AA,et al.A validated high-performance thin-layer chromatography method for the identification and simultaneous quantification of six markers from Platanus orientalis and their cytotoxic profiles against skin cancer cell lines[J].Journal of Separation Science,2013,36(16):2602-2610.
[7]Yang CH,Liu JH,Yang Y.Preparation and application of new styrylchromones: CN,101525323A[P].2009-09-09[2013-01-16].
[8] Chatzigeorgiou S,Thai QD,Tchoumtchoua J,et al.Isolation of natural products with anti-ageing activity from the fruits of Platanus orientalis[J].Phytomedicine,2017,33:53-61.
[9] Haider S,Nazreen S,Alam MM,et al.Anti-inflammatory and anti-nociceptive activities of Platanus orientalis Linn.and its ulcerogenic risk evaluation[J].Journal of Ethnopharmacology,2012, 143(1):236-240.
[10] Mitrokotsa D,Mitaku S,Demetzos C,et al.Bioactive Compounds From the Buds of Platanus Orientalis and Isolation of a New Kaempferol Glycoside[J].Planta Med,1993,59(6):517-520.
[11] Thai QD,Tchoumtchoua J,Makropoulou M,et al.Phytochemical study and biological evaluation of chemical constituents of Platanus orientalis and Platanus × acerifolia buds [J].Phytochemistry,2016,130:170-181.
[12] Bastos DZ,Pimentel IC,de Jesus DA.Biotransformation of betulinic and betulonic acids by fungi[J]. Phytochemistry,2007,68(6):834-839.
[13] Ravanel P,Tissut M,Douce R.Platanetin:A potent natural uncoupler and inhibitor of the exogenous NADH dehydrogenase in intact plant mitochondria[J].Plant Physiology February,1986,80(2):500-504.
[14]Wang J,Wu Y,Li J, et al.Eight Aeroallergen Skin Extracts May Be the Optimal Panel for Allergic Rhinitis Patients in Central China.Int Arch Allergy Immunol,2017,173(4):193-198.
[15] 崔鵬,高元棟,李玉文,袁岐山.響應(yīng)面法優(yōu)化超聲輔助提取花椒葉黃酮工藝研究[J].食品研究與開發(fā),2018,39(08):53-60.
[16] 姚新鼎,姜飛燕,王玉偉,等.微波輔助提取山竹殼中的總黃酮及其體外抗氧化活性研究[J].食品研究與開發(fā),2019,40(04):114-118.
[17] 夏娜,趙麗鳳.黑果枸杞功能性成分抗氧化活性及對(duì)線粒體的保護(hù)作用研究[J].食品工業(yè)科技,2014,35(22):162-166+175.
[18] 黃琴,沈楊霞,張成靜,等.鐵皮石斛多酚和黃酮含量及與抗氧化活性的相關(guān)性[J].應(yīng)用與環(huán)境生物學(xué)報(bào),2014,20(03):438-442.
[19] 范艷麗,韓麗娜,付麗霞,等.枸杞葉黃酮類化合物體外清除自由基作用研究[J].中國調(diào)味品,2017,42(12):32-37.
[20] 張國濤.超聲波法提取蕎麥粉中黃酮類化合物的工藝研究[J].當(dāng)代化工,2017,46(08):1524-1526.
[21] 王振吉,楊申明,張光勇.首烏藤總黃酮提取工藝優(yōu)化及抗氧化性研究[J].中國釀造,2019,38(03):177-180.
[22] 朱婉晴,卞杰松,周志遠(yuǎn),等. 超聲波輔助提取無患子果皮中總黃酮的研究[J]. 廣州化工, 2018, 46 (01): 102-104+158.