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        人參浸出液對鉛暴露鯉魚卵巢細胞減毒作用研究

        2019-11-11 06:32:44尹玉偉尹玉林馬世宏茆安婷秦亞寧李月紅
        中國獸醫(yī)雜志 2019年6期
        關(guān)鍵詞:人參氧化應激機體

        尹玉偉,尹玉林,馬世宏,茆安婷,秦亞寧,代 靜,李月紅

        (1.吉林農(nóng)業(yè)大學動物科學技術(shù)學院,吉林長春130118;2.內(nèi)蒙古烏蘭察布市獸醫(yī)監(jiān)察所,內(nèi)蒙古烏蘭察布012000;3.河南科技大學動物科學與技術(shù)學院,河南洛陽471003)

        鉛是一種生物機體非必須的重金屬,其能破壞機體正常生理功能、免疫功能、神經(jīng)功能。隨著工業(yè)的發(fā)展,造成鉛廣泛存在于大氣、水體以及土壤。重金屬中,鉛的毒性最強[1],并且鉛對生物的毒性不存在最小毒性劑量,因此鉛只要存在機體便有毒[2]。通過食物鏈對鉛的富集作用,使人較容易攝入高濃度鉛[3]。

        人參作為“東北三寶”之一,是一種藥食兩用植物。它能夠提高機體抗氧化能力、免疫力,此外還具有抗癌作用,起主要調(diào)節(jié)作用的物質(zhì)是人參皂苷和人參多糖[4]。鉛作為一種重金屬,其能夠造成機體氧化應激,刺激金屬轉(zhuǎn)運蛋白的表達[5],而人參對動物重金屬減毒作用研究較少,本試驗通過萃取的方式的保護人參皂苷和人參多糖,將Rs添加入GCO細胞培養(yǎng)基中,來探究其對鉛暴露細胞后的減毒作用,為后續(xù)Rs在生產(chǎn)中的使用打下理論基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 試驗材料和試劑 GCO細胞,購自天津水產(chǎn)研究所;胎牛血清(FBS)和M199培養(yǎng)基,購自美國Gibco公司;人參粉,吉林農(nóng)業(yè)大學中藥材學院饋贈;醋酸鉛,購自北京化工廠;超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)、過氧化氫酶(CAT)試劑盒,均購自南京建成生物工程公司;TRIZol,購自大連TaKaRa;FastStart Universal SYBR Green Master購自,Roche公司;反轉(zhuǎn)錄試劑盒,購自江蘇愚公科技有限公司。

        1.2 試驗方法

        1.2.1 醋酸鉛的配制和人參浸出液的制備 鉛溶液母液:3.7934 g三水合醋酸鉛。溶于10 mL雙蒸水中,配成0.01 mol/L的母液,梯度稀釋后進行試驗。人參浸出液(Rs)的制備:人參粉加水萃取,萃取之后用蒸發(fā)皿蒸發(fā)成晶體,取10~15 g晶體溶于5 mL ddH2O,使之飽和,獲得人參浸出飽和溶液,使用0.22 μm濾膜進行過濾,按試驗濃度加入培養(yǎng)基。

        1.2.2 GCO細胞培養(yǎng) GCO細胞經(jīng)復蘇后,在含有10%FBS的M199完全培養(yǎng)基中培養(yǎng)(含有1×106IU/mL 青霉素和鏈霉素),每天進行觀察并進行換液,在細胞貼壁達到90%以后進行傳代,培養(yǎng)3~4代后進行試驗。

        1.2.3 MTT法檢測細胞活性

        1.2.3.1 Pb對GCO細胞活性的影響 細胞復蘇后,生長至70%~80%時,用1 g/L胰蛋白酶消化制備細胞懸液,以2.6×104個/孔,接于96孔板,置于27 ℃,5% CO2恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。將細胞分為對照組、0.001 mmol/L Pb組、0.005 mmol/L Pb組、0.01 mmol/L Pb組、0.05 mmol/L Pb組,加入不含血清的M199培養(yǎng)基,分別處理1 h和2 h后檢測細胞活性。

        1.2.3.2 Rs對GCO活性影響 細胞處理同1.2.3.1。將細胞分為對照組、2% Rs組、4% Rs組、6% Rs組、8% Rs組,將細胞用PBS洗3次,之后加入不同濃度Rs的M199培養(yǎng)基,處理后的12 h、24 h測定細胞活性。

        1.2.3.3 Pb和Rs對GCO活性影響 細胞處理同上1.2.3.1。將細胞分為對照組(CK)、0.01 mmol/L Pb組(Pb)、0.01 mmol/L Pb加2%Rs組(2%Rs)、0.01 mmol/L Pb加4%Rs組(4%Rs)、0.01 mmol/L Pb加6%Rs組(6%Rs)、0.01 mmol/L Pb加8%Rs組(8%Rs),所有Pb添加組,Pb處理的時間為1 h, Pb處理結(jié)束后添加不同劑量含Rs的M199培養(yǎng)基進行處理,在Rs處理后在12 h、24 h、48 h測定細胞活性。

        1.2.4 細胞抗氧化功能測定 試驗分組與處理同1.2.3.3。在48 h,對細胞的氧化能力進行測定,測定抗氧化SOD、GSH-Px、CAT指標。

        1.2.5 細胞基因表達水平 (1)將細胞接于6孔板后,處理同1.2.3.3。48 h后進行RNA提取,TRIZol法進行提取,總RNA提取之后使用反轉(zhuǎn)錄試劑盒進行反轉(zhuǎn)錄,cDNA于-80 ℃保存。(2)以β-actin為內(nèi)參基因,引物信息(見表1)。反應體系20 μL,包括10 μL 2×FastStart Universal SYBR Green Master,上下游引物0.6 μL,cDNA 2 μL,ddH2O 6.8 μL。反應條件94 ℃10 min、之后40個循環(huán),94 ℃ 15 s、60 ℃ 15 s、72 ℃ 20 s。計算表達量用2-△△Ct。

        表1 引物序列信息

        1.3 實驗儀器 全波長酶標儀(美國伯騰儀器有限公司);熒光定量PCR儀(ABI公司);細胞培養(yǎng)箱(Thermo scientific公司)。

        2 結(jié)果

        2.1 MTT法檢測細胞活性

        2.1.1 Pb對GCO細胞活性的影響 隨著Pb濃度和暴露時間的增加,相對細胞活性逐漸降低。Pb濃度分別為0.001、0.005、0.01、0.05 mmol/L暴露時間為1 h時,細胞活性分別降低到86%,80%、74%和63.5%;以相同的濃度暴露2 h時,細胞活性分別降低到75%,71%、61.2%和51.3%。Pb對GCO細胞活性的影響(見圖1A)。

        2.1.2 Rs對GCO細胞活性影響 隨著Rs濃度和暴露時間的增加,相對細胞活性呈先上升后下降的趨勢。Rs添加量分別為2%、4%、6%和8%暴露時間為12 h時,細胞活性分別提高到107.8%,116.2%、111%和102.8%;以相同的濃度暴露24 h時,細胞活性分別提高到108.6%,120.5%、111.5%和104.3%。Rs對GCO細胞活性的影響(見圖1B)。

        2.1.3 Pb和Rs對GCO活性的影響 在所有處理時間點,4%Rs添加時細胞活性顯著(P< 0.05)高于Pb、2%RS組、6%Rs組和8%Rs組。Pb和Rs對GCO細胞活性的影響(見圖2)。

        圖1 Pb或Rs對GCO細胞活性的影響

        A:不同劑量Pb對GCO活性的影響;B:不同劑量Rs對GCO活性的影響

        圖2 Pb和Rs對GCO細胞活性的影響

        注:圖中標有不同字母者表示差異顯著(P< 0.05),標有相同字母的表示差異不顯著(P> 0.05),下圖同

        2.2 細胞抗氧化測定

        2.2.1 Pb和Rs對GCO細胞SOD活性的影響 對照組顯著高于(P< 0.05)試驗組;4%Rs組SOD顯著高于(P< 0.05)Pb組、2%Rs組、6%Rs組和8%Rs組;2%Rs組和6%Rs組SOD顯著高于(P< 0.05)Pb組和8%Rs組。Pb和Rs對GCO細胞SOD活性的影響(見圖3)。

        圖3 Pb和Rs對GCO細胞SOD活性的影響

        2.2.2 Pb和Rs對GCO細胞CAT活性的影響 對照組顯著(P<0.05)低于實驗組;4%Rs組CAT顯著低于(P<0.05)Pb組、6%Rs組和8%Rs組;2%Rs組和6%Rs組顯著高于(P< 0.05)Pb組和8%Rs組;Pb組顯著高于(P<0.05)2%Rs組、4%Rs組、6%Rs組和8%Rs組。Pb和Rs對GCO細胞CAT活性的影響(見圖4)。

        圖4 Pb和Rs對GCO細胞CAT活性的影響

        2.2.3 Pb和Rs對GCO細胞GSH-Px活性的影響 對照組顯著(P<0.05)高于實驗組;4%Rs組GSH-Px顯著高于(P<0.05)Pb組、2%Rs組、6%Rs組和8%Rs組;2%Rs組顯著高于(P<0.05)Pb組和8%Rs組;Pb組顯著高于(P<0.05)2%Rs組、4%Rs組、 6%Rs組和8%Rs組。Pb和Rs對GCO細胞GSH-Px活性的影響(見圖5)。

        圖5 Pb和Rs對GCO細胞GSH-Px活性的影響

        2.3 MT基因相對表達量 相對于對照組,各組(Pb組、2%Rs組、4%Rs組、6%Rs組、8%Rs組)MT基因表達量分別提高4.2、2.55、1.97、2.58和2.57倍。MT基因的表達量(見圖6)。

        圖6 Pb和Rs對GCO細胞MT基因表達量的影響

        3 討論

        研究表明,重金屬等進入機體后會增加體內(nèi)氧化應激,造成氧化壓力增加[6]。鉛也在很早就被發(fā)現(xiàn),會增加機體的氧化應激[7]。氧化作用是機體必需的生物代謝,其代謝過程中會出現(xiàn)較多的副產(chǎn)物(主要是活性氧;ROS),這些副產(chǎn)物如不能及時清除,就會使機體產(chǎn)生氧化損傷[8]。Zhang等研究發(fā)現(xiàn),三丁基錫暴露斑馬魚后,SOD隨著三丁基錫的暴露濃度增加呈現(xiàn)劑量依賴性降低[9]。Nrf2基因是主要調(diào)節(jié)氧化應激的基因,研究表明重金屬能夠抑制Nrf2表達,使機體不能夠及移除過多的ROS,從而造成機體產(chǎn)生氧化損傷[10]。人參中的多糖,皂苷以及多肽等物質(zhì),都能提高機體的氧化應激能力,記憶力以及非特異性免疫能力,楊迎等通過將人參皂苷Rg1和Rb1飼喂幼鼠后發(fā)現(xiàn),其能夠促進神經(jīng)發(fā)育并且有一定的促進生長的作用,同時這種效果能夠延續(xù)到小鼠成年[11];另一項研究表明,注射Rg1和Rb1能夠加強小鼠水迷宮實驗的空間學習記憶能力[12]。夏菁等研究表明,Rg1能夠誘導人紅白血病TF-1細胞凋亡,其主要的機制是Rg1能夠參與JAK通路中蛋白磷酸化,并下調(diào)其下游相關(guān)的基因,從而誘導細胞的凋亡[13]。本研究中4%Rs組對Pb暴露后氧化應激指標顯著提高,其主要原因可能是因為人參多糖和人參皂苷提高了細胞Nrf2的表達,從而使細胞抗氧化能力升高,而2%Rs、6%Rs、8%Rs添加組細胞抗氧化能力提高不明顯,2%Rs添加組可能是人參皂苷和人參多糖量不足以調(diào)節(jié)細胞基因表達所致,而6%Rs、8%Rs添加組細胞抗氧化能力提高不明顯可能是由于添加過量,從而影響了細胞的基礎(chǔ)代謝所致,但具體的機制還需要進一步的研究。

        金屬硫蛋白(MT)是參與體內(nèi)金屬轉(zhuǎn)運平衡的重要蛋白,同時其在解毒以及氧化應激中也發(fā)揮著重要作用。研究都表明,當水生動物暴露重金屬后,MT基因在不同組織中的表達與重金屬的暴露存在顯著的相關(guān)性,也因而被用來作為生物標記物來檢測水環(huán)境中重金屬的污染。MT基因在參與離子平衡時會移除機體非必須的金屬,并且研究表明,重金屬暴露魚類后會使MT基因的表達上升[14],Kim等(2016)通過利用維生素C和鉛同時暴露許氏平鲇后發(fā)現(xiàn),維生素C能夠減弱鉛對MT基因誘導升高作用[7]。李建平(2011)等研究表明,人參多糖能夠調(diào)節(jié)人白細胞K562基因表達譜的改變[15]。本研究中,MT基因的表達量,相對于對照組,各組(Pb組、2%Rs組、4%Rs組、6%Rs組、8%Rs組)MT基因表達量分別提高4.2、2.55、1.97、2.58倍和2.57倍。4%Rs 添加時MT基因的表達量顯著降低(P< 0.05),這可能是由于人參浸出液的添加提高了MT基因活性,使機體能夠轉(zhuǎn)運足夠的必須金屬,來減弱了Pb誘導的MT的提升作用,2%Rs可能是由于添加量過少不足以誘導MT活性,6%Rs和8%Rs可能由于過量的添加導致影響了細胞正常代謝,抑制了MT基因的活性。

        綜上所述,不同濃度Rs能夠緩解Pb誘導GCO細胞毒性,4%Rs添加時最佳。

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