閆禎昕,尹 非,李雪晨,姜 楠,田金英,葉 菲
(中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院藥物研究所,新藥作用機(jī)制研究與藥效評(píng)價(jià)北京市重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 100050)
高尿酸血癥(hyperuricemia,HUA)是一種嘌呤代謝紊亂。當(dāng)男、女血尿酸水平分別超過(guò)7 mg·dL-1及6 mg·dL-1時(shí),可以臨床診斷為高尿酸血癥。中國(guó)高尿酸血癥的發(fā)病率逐年上升,患者人數(shù)多,易發(fā)展為痛風(fēng)[1-2]?,F(xiàn)有的流行病學(xué)和實(shí)驗(yàn)分析表明,高尿酸血癥不僅僅是痛風(fēng)的直接致病因素,而且還與代謝綜合征、高血壓、腎損傷、脂質(zhì)代謝紊亂、心血管疾病等有著密切聯(lián)系,作為風(fēng)險(xiǎn)因素,高尿酸血癥對(duì)這些疾病的病程發(fā)展產(chǎn)生重要作用[3-4]。人和禽類體內(nèi)無(wú)尿酸酶,體內(nèi)嘌呤代謝的終產(chǎn)物為尿酸,而嚙齒類體內(nèi)因有尿酸酶的存在,尿酸最終會(huì)被氧化成尿囊素排出體外[5]。治療高尿酸血癥藥物的主要作用靶點(diǎn)是黃嘌呤氧化酶(xanthine oxidase , XOD),可以催化次黃嘌呤或黃嘌呤,生成尿酸的一種黃素鉬蛋白,廣泛分布于小鼠的各個(gè)臟器中[6]。抑制XOD的活性,可以直接降低體內(nèi)尿酸生成量,減低體內(nèi)的血尿酸水平。臨床選擇性XOD抑制劑包括別嘌呤醇(一種嘌呤類抑制劑)及非布索坦(一種非嘌呤類抑制劑)[7-8]。
目前,高尿酸血癥模型動(dòng)物主要為嚙齒類和禽類[5]。根據(jù)尿酸的生成及排泄路徑,造模方式主要包括增加尿酸前體物質(zhì)的攝入、抑制嚙齒類動(dòng)物的尿酸酶、減少尿酸排泄??刹扇我灰蛩卣T導(dǎo),或多種因素聯(lián)合誘導(dǎo)形成高尿酸血癥動(dòng)物模型。本研究根據(jù)XOD性質(zhì),完善了體外XOD抑制劑篩選方法,建立了急性及慢性高尿酸血癥模型等體內(nèi)實(shí)驗(yàn)方法,為基于高尿酸血癥的分子靶點(diǎn)XOD藥物研發(fā)奠定了實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。
1.1 材料
1.1.1藥物與試劑 牛奶來(lái)源XOD1(CAS 9002-17-9)、微生物來(lái)源XOD2(CAS 9002-17-9)、黃嘌呤(xanthine, XA,CAS 69-89-6)、次黃嘌呤(hypoxanthine,CAS 68-94-0),均購(gòu)自Sigma公司;氧嗪酸鉀(oteracil potassium,CAS 2207-75-2),購(gòu)自美侖生物;非布索坦(febuxostat, FBX,CAS 144060-53-7),購(gòu)自TCI公司;別嘌呤醇(allopurinol, ALP,CAS 315-30-0),購(gòu)自Alfa Aesar公司;谷草轉(zhuǎn)氨酶(aspartate aminotransferase, AST)、血尿酸(uric acid, UA)、谷丙轉(zhuǎn)氨酶(alanine aminotransferase, ALT)、肌酐(creatinine, Cre)、尿素(Urea)測(cè)定試劑盒,均購(gòu)自北京中生北控生物技術(shù)有限公司;XOD活性測(cè)定試劑盒,購(gòu)自南京建成生物科技有限公司。
1.1.2儀器 酶標(biāo)儀(美國(guó)BioTek公司);THZ-C型恒溫振蕩器(江蘇太倉(cāng)科教儀器廠);高速低溫離心機(jī)(德國(guó)Heraeus公司);pH計(jì)(美國(guó)Fisher Scientific公司)。
1.1.3實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 ICR小鼠,♂,購(gòu)于北京維通利華生物科技股份有限公司,許可證編號(hào)為SCXK(京)2016-0006。飼養(yǎng)于中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院藥物研究所實(shí)驗(yàn)動(dòng)物管理中心,飼養(yǎng)溫度為(22~25) ℃,濕度為40%~60%,每天光照時(shí)間和黑暗時(shí)間各為12 h,進(jìn)食及飲水自由。小鼠經(jīng)過(guò)動(dòng)物倫理委員會(huì)批準(zhǔn),動(dòng)物使用許可證編號(hào):SYXK(京)2014-0023。
1.2 方法
1.2.1血清生化測(cè)定 3 500 r·min-1離心小鼠全血4 min,取出上層血清,按照試劑盒說(shuō)明書(shū)對(duì)UA、AST、ALT、Cre、Urea、XOD進(jìn)行測(cè)定。
1.2.2組織XOD活性測(cè)定 取出組織,加入適量預(yù)冷的生理鹽水,冰水浴條件下,機(jī)械勻漿,按試劑盒說(shuō)明書(shū)測(cè)定組織XOD活性。
1.2.3黃嘌呤氧化酶抑制劑體外篩選模型 分別選用牛奶和微生物為酶來(lái)源的兩種XOD作為篩選模型研究對(duì)象,分別探究反應(yīng)體系中酶濃度、底物濃度、反應(yīng)溫度、反應(yīng)pH值和反應(yīng)時(shí)間的影響,根據(jù)終產(chǎn)物尿酸在293 nm處的吸光度,選出最適宜的反應(yīng)條件,并分別測(cè)定陽(yáng)性藥非布索坦和別嘌呤醇的IC50值,選定最適宜的酶來(lái)源。
1.2.4急性高尿酸血癥小鼠模型 單次灌胃次黃嘌呤500 mg·kg-1聯(lián)合皮下注射氧嗪酸鉀300 mg·kg-1。設(shè)正常小鼠為正常對(duì)照組(Control),灌胃給予純水及皮下注射溶劑0.5% CMC-Na混懸液。將誘導(dǎo)小鼠隨機(jī)分成模型對(duì)照組(Mod-A)和非布索坦組(Mod-A-FBX),分別灌胃給予純水和非布索坦2 mg·kg-1。同時(shí),造模前取血,測(cè)定全部小鼠血尿酸水平作為0 h點(diǎn),之后分別于給藥后1、2、4 h時(shí)取血,測(cè)定小鼠血尿酸水平。并于4 h取血之后脫頸處死小鼠,取血清測(cè)定AST、ALT、Cre、Urea和XOD活性,并迅速取出小鼠肝臟放置于液氮中速凍,然后置于-80 ℃冰箱保存,用于測(cè)定肝XOD活性。
1.2.5慢性高尿酸血癥小鼠模型 多次皮下注射氧嗪酸鉀300 mg·kg-1。誘導(dǎo)期間,分別于d 7、9、11、13、14,通過(guò)內(nèi)眥取血測(cè)定血尿酸水平。設(shè)正常ICR小鼠為對(duì)照組(Control),取血尿酸值穩(wěn)定且高于180 μmol·L-1的動(dòng)物作為慢性高尿酸血癥小鼠模型(Mod-C),內(nèi)眥取血之后脫頸處死小鼠,測(cè)定血清AST、ALT、Cre、Urea;取小鼠腎臟和肝臟左外側(cè)葉進(jìn)行病理分析,蘇木精-伊紅(hematoxylin-eosin, HE)染色;并快速取肝中葉、心臟、脾、肺、腎和小腸等重要組織,置于液氮中速凍,然后置于-80 ℃冰箱保存,用于檢測(cè)各組織中XOD的活性。將誘導(dǎo)小鼠隨機(jī)分為模型對(duì)照組(Mod-C)和非布索坦組(Mod-C-FBX),分別灌胃給予純水和非布索坦2 mg·kg-1,每天給藥及造模1次,連續(xù)5 d,觀測(cè)血尿酸水平、血清XOD活性、肝組織XOD活性的變化情況。
2.1 XOD抑制劑體外篩選模型的建立常見(jiàn)的XOD分別為牛奶(XOD1)和微生物(XOD2)來(lái)源。室溫下分別選擇1、3、5 U·L-1的XOD1或XOD2,固定底物XA 100 μmol·L-1、反應(yīng)時(shí)間30 min、pH 7.4的反應(yīng)體系,觀察不同濃度XOD的反應(yīng)情況。Fig 1A結(jié)果顯示,相同濃度的XOD1、XOD2反應(yīng)效果相似;XOD1濃度為3、5 U·L-1的反應(yīng)體系的OD值無(wú)明顯差異,均明顯高于其濃度為1 U·L-1的反應(yīng)體系;XOD2的3種反應(yīng)體系結(jié)果亦然。因此,選取3 U·L-1為XOD1或XOD2為最適反應(yīng)濃度。
室溫下,分別選擇25、50、100 μmol·L-1的底物XA濃度,固定XOD1或XOD2 3 U·L-1、反應(yīng)時(shí)間30 min、pH 7.4的反應(yīng)體系,觀察不同濃度底物XA的反應(yīng)狀態(tài)。Fig 1B結(jié)果顯示,XOD1和XOD2反應(yīng)體系基本一致,隨著底物濃度的增加,其光吸收度逐漸增加。選擇OD值范圍較適宜的底物XA 50 μmol·L-1為最適的反應(yīng)濃度。
室溫下,固定XOD1或XOD2濃度為3 U·L-1、底物XA 50 μmol·L-1、pH 7.4的反應(yīng)體系,觀察不同作用時(shí)間對(duì)反應(yīng)體系的影響。Fig 1C結(jié)果顯示,XOD1和XOD2反應(yīng)體系基本一致,選取進(jìn)入反應(yīng)平臺(tái)期的20 min作為最適作用時(shí)間。
固定XOD1或XOD2 3U·L-1、底物XA 50 μmol·L-1、反應(yīng)時(shí)間20 min、pH 7.4的反應(yīng)體系,觀察不同溫度對(duì)反應(yīng)體系的影響。Fig 1D結(jié)果顯示,選取XOD酶活性最高點(diǎn),則對(duì)于XOD1和XOD2反應(yīng)體系的最適作用溫度均為37 ℃。
37 ℃下分別選擇pH為4.4、5.4、6.4、7.4、8.4、9.4的緩沖液,固定XOD1或XOD2 3 U·L-1、底物XA 50 μmol·L-1、反應(yīng)時(shí)間20 min的反應(yīng)體系,觀察不同的緩沖液pH對(duì)反應(yīng)體系的影響。Fig 1E結(jié)果顯示,對(duì)于XOD1和XOD2酶活性最高點(diǎn)的反應(yīng)體系均為pH 7.4。
目前已上市的選擇性XOD抑制劑主要有ALP和FBX。分別應(yīng)用XOD1或XOD2的反應(yīng)體系,測(cè)定ALP、FBX抑制XOD的活性。Fig 2結(jié)果顯示,ALP對(duì)XOD1和XOD2均具有明顯的抑制作用,其IC50均可達(dá)到10-6mol·L-1數(shù)量級(jí);FBX對(duì)XOD1的抑制活性較強(qiáng),其IC50可達(dá)到10-9mol·L-1,但對(duì)XOD2則沒(méi)有明顯的抑制作用。
上述結(jié)果提示,選擇牛奶來(lái)源的XOD1 3 U·L-1、底物XA 50 μmol·L-1、反應(yīng)時(shí)間為20 min、反應(yīng)溫度為37 ℃、pH為7.4的反應(yīng)體系,F(xiàn)BX為陽(yáng)性對(duì)照藥,從而建立了XOD抑制劑的體外篩選模型。
2.2 急性高尿酸血癥小鼠模型的建立應(yīng)用體質(zhì)量為(24±2)g的♂ICR小鼠,單次灌胃給予次黃嘌呤500 mg·kg-1聯(lián)合皮下注射氧嗪酸鉀300 mg·kg-1,分別于給予陽(yáng)性藥FBX 2 mg·kg-1后0、1、2、4 h時(shí),內(nèi)眥取血測(cè)定小鼠血尿酸水平。以誘導(dǎo)劑溶劑代替誘導(dǎo)劑的動(dòng)物作為正常對(duì)照Control組。Fig 3A結(jié)果顯示,Mod-A組動(dòng)物的血尿酸值與對(duì)照組相比明顯上升,于給藥后1 h時(shí)達(dá)到峰值,平均增長(zhǎng)幅度達(dá)到348.2%;而后血尿酸值逐漸下降,于給藥后4 h血尿酸值還原到基線程度;該血尿酸-時(shí)間曲線下面積(area under curve, AUC)上升了204.8%(Fig 3B)。灌胃給予陽(yáng)性藥FBX 2 mg·kg-1治療后,Mod-A-FBX組動(dòng)物的血尿酸值與Mod-A組相比明顯降低,其血尿酸峰值及AUC值各下降了60.2%及59.6%,顯示FBX具有明顯改良小鼠急性高尿酸血癥的功能。
在FBX給藥后4 h內(nèi)眥取血后,脫頸處死小鼠,迅速分離肝。分別測(cè)定血清XOD活性及肝組織XOD活性,結(jié)果顯示(Fig 3C、3D),對(duì)照組、Mod-A組的血清XOD活性及肝組織XOD活性均未呈現(xiàn)明顯差異;Mod-A-FBX組血清XOD活性與Mod-A組相比明顯下降,肝組織XOD活性未見(jiàn)明顯改變。
測(cè)定對(duì)照組和Mod-A組的肝腎功能血液指標(biāo),如AST、ALT、Cre和Urea。結(jié)果顯示(Tab 1),對(duì)照組和Mod-A組均未見(jiàn)明顯差異,提示急性高尿酸血癥小鼠模型的肝腎功能未見(jiàn)明顯損傷。
2.3 慢性高尿酸血癥小鼠模型的建立應(yīng)用體質(zhì)量(20±2)g的ICR ♂小鼠,采用連續(xù)多次皮下注射氧嗪酸鉀300 mg·kg-1的誘導(dǎo)方式,每天1次。于誘導(dǎo)后d 7、9、11、13、14,內(nèi)眥取血測(cè)定血尿酸水平。以誘導(dǎo)劑的溶劑代替誘導(dǎo)劑刺激的動(dòng)物作為正常對(duì)照(No stimulated)組(n=7)。結(jié)果顯示(Fig 4A),以氧嗪酸鉀誘導(dǎo)的小鼠(Stimulated組,n=60)血尿酸水平逐漸升高,連續(xù)誘導(dǎo)2周后,與No stimulated組比較,Stimulated組的平均血尿酸水平升高了約2倍,約70%的動(dòng)物血尿酸水平超過(guò)180 μmol·L-1。
Fig 1 Regulation of XOD activity (A), XA concentration (B), and reaction time (C), temperature (D), pH (E) on absorbance at wavelength 293 nm n=3)
Tab 1 Liver function and kidney function in acute hyperuricemia mice n=10)
慢性高尿酸血癥模型小鼠(Mod-C)(n=10)與同批正常對(duì)照小鼠(n=10)比較,血液肝功能指標(biāo)AST和ALT未見(jiàn)明顯差異(Tab 2);肝臟HE染色(病理分析)未見(jiàn)明顯差異,肝組織結(jié)構(gòu)及細(xì)胞排列整齊,未見(jiàn)濁腫及壞死等受損現(xiàn)象(Fig 4B);血液腎功能指標(biāo)Cre和Urea未見(jiàn)明顯差異(Tab 2);腎臟HE染色(病理分析)未見(jiàn)明顯差異,腎組織結(jié)構(gòu)清晰,未見(jiàn)水腫及壞死等受損現(xiàn)象(Fig 4C)。說(shuō)明采用此造模方式形成的慢性高尿酸血癥小鼠模型未見(jiàn)明顯肝腎損傷。
檢測(cè)動(dòng)物主要臟器的XOD活性,結(jié)果顯示(Fig 4D),對(duì)照組、Mod-C組各組織的XOD活性無(wú)明顯差異;其各主要臟器XOD活性強(qiáng)弱順序依次為小腸、心臟、肝臟、肺、腎及脾。
Tab 2 Liver function and kidney function in chronic hyperuricemia mice n=10)
Fig 2 Different activities of XOD1 and XOD2 in vitro n=3)
Fig 3 Changes of serum uric acid and XOD activity in acute hyperuricemia mice n=10)
Fig 4 Characters of oteracil potassium-induced hyperuricemia mice
設(shè)正常小鼠作為對(duì)照組(Control,n=10)。把慢性高尿酸血癥模型小鼠隨機(jī)分為Mod-C組(n=10)和Mod-C-FBX組(n=10),分別持續(xù)灌胃水及陽(yáng)性藥FBX 2 mg·kg-1,持續(xù)治療5 d,每天監(jiān)測(cè)小鼠血尿酸水平變化情況。結(jié)果顯示(Fig 5A),Mod-C組的平均血尿酸水平與對(duì)照組相比,上升了2.5倍。Mod-C-FBX組動(dòng)物的血尿酸值與Mod-C組相比,降低大約60%,并保持穩(wěn)定,連續(xù)給藥5 d期間,Mod-C-FBX組動(dòng)物的血尿酸值均保持與對(duì)照組相近的較低水平,顯示FBX具有明顯改善小鼠慢性高尿酸血癥的作用。
在給藥d 5,測(cè)定血清XOD活性(Fig 5B)和肝組織XOD活性(Fig 5C),Mod-C組的血清XOD活性及肝組織XOD活性與對(duì)照組相比,各上升了31.3%及10.7%。Mod-C-FBX組的血清XOD活性及肝組織XOD活性與Mod-C組相比,分別下降了39.6%及49.0%。
Fig 5 Effects of febuxostat on serum uric acid and XOD activity in chronic hyperuricemia mice n=7)
人類體內(nèi)嘌呤代謝的終產(chǎn)物為尿酸。體內(nèi)尿酸超過(guò)一定限度則稱為高尿酸血癥。隨著現(xiàn)代人嘌呤類食物攝入增加,高尿酸血癥及其相關(guān)疾病的發(fā)病率逐年升高[1]。XOD能催化黃嘌呤及次黃嘌呤產(chǎn)生尿酸,是體內(nèi)合成尿酸的限速酶,為抗高尿酸血癥藥物的重要靶點(diǎn)[9-10]。
體外測(cè)定XOD活性的方法有多種,包括HPLC法[11-12],具有靈敏度高、樣品易回收等優(yōu)點(diǎn),但單次分析樣品數(shù)量少,不適用于同時(shí)分析大量樣品;酶動(dòng)力學(xué)法[13]具有反應(yīng)時(shí)間較短的優(yōu)點(diǎn),但測(cè)定結(jié)果易受環(huán)境影響,不穩(wěn)定;酶終點(diǎn)法可同時(shí)測(cè)定多種樣品的抑制情況,受環(huán)境因素影響較小,結(jié)果重復(fù)性好,適用于測(cè)定樣品對(duì)XOD活性的抑制情況。本研究中,根據(jù)適宜的反應(yīng)終點(diǎn)OD值,選取最適XOD酶濃度和底物黃嘌呤濃度;動(dòng)態(tài)觀察反應(yīng)狀態(tài),選取達(dá)到平臺(tái)期的時(shí)間作為最適反應(yīng)時(shí)間,反應(yīng)效率最高的溫度和pH作為最適反應(yīng)體系,建立了體外XOD活性測(cè)定方法。分別應(yīng)用已上市的XOD抑制劑別嘌呤醇和非布索坦,使用牛奶來(lái)源的XOD1測(cè)定其抑制XOD活性的IC50值分別為1.194 μmol·L-1和2.925 nmol·L-1。使用微生物來(lái)源的XOD2活性測(cè)定方法,嘌呤類經(jīng)典藥物別嘌呤醇抑制XOD活性的IC50值為1.150 μmol·L-1;非嘌呤類新型XOD特異性抑制劑非布索坦沒(méi)有表現(xiàn)出明顯的抑制作用,出現(xiàn)假陰性。因此,選用牛奶來(lái)源XOD1 3 U·L-1、底物XA 50 μmol·L-1、反應(yīng)時(shí)間為20 min、反應(yīng)溫度為37 ℃、pH為7.4的反應(yīng)體系,F(xiàn)BX為陽(yáng)性對(duì)照藥,建立了XOD抑制劑的體外篩選模型。
在全人類進(jìn)化過(guò)程中,尿酸氧化酶基因序列發(fā)生突變,失去活性[14],尿酸為體內(nèi)嘌呤代謝的終產(chǎn)物,致使體內(nèi)血尿酸上升,使得人類較容易患高尿酸血癥。小鼠的嘌呤代謝過(guò)程中,尿酸氧化酶可氧化尿酸生成尿囊素,后者是一種高度水溶性化合物,可高效排出,減少體內(nèi)尿酸的積累。通過(guò)增加尿酸前體物質(zhì)的攝入而增加尿酸的合成,抑制尿酸轉(zhuǎn)運(yùn)體減少尿酸的排泄和抑制尿酸氧化酶作用,均可導(dǎo)致小鼠的血尿酸升高,形成高尿酸血癥模型。
本研究采取單次同時(shí)給予大劑量尿酸前體物質(zhì)——次黃嘌呤及競(jìng)爭(zhēng)性尿酸酶抑制劑——氧嗪酸鉀[15]的方式,誘導(dǎo)ICR小鼠的血尿酸水平一過(guò)性上升,形成小鼠急性高尿酸血癥模型。該小鼠模型在給予造模劑后血尿酸迅速上升,通常在誘導(dǎo)2 h后達(dá)到峰值;隨后血尿酸水平逐漸下降,于造模劑誘導(dǎo)5 h后恢復(fù)到基線水平。與同批正常對(duì)照組比較,該模型小鼠Mod-A組的肝腎功能未見(jiàn)明顯變化,表明此造模方法并不會(huì)對(duì)小鼠的肝腎功能造成明顯損傷。此外,Mod-A組的血清XOD活性和肝組織XOD活性均未見(jiàn)明顯變化。該模型類似于人類因飲食不節(jié)制,大量攝入嘌呤類食物后,血尿酸出現(xiàn)一過(guò)性升高,可通過(guò)動(dòng)態(tài)監(jiān)測(cè)血尿酸值變化情況和尿酸-時(shí)間曲線下面積AUC,評(píng)價(jià)受試藥對(duì)急性高尿酸血癥的治療作用。
采取連續(xù)多次給予氧嗪酸鉀的方法,使得小鼠血尿酸值逐漸升高,形成慢性高尿酸血癥小鼠模型。該模型使用ICR小鼠,給予氧嗪酸鉀連續(xù)刺激約2周后,與同批正常對(duì)照組比較,動(dòng)物的血尿酸水平逐漸升高,發(fā)生高尿酸血癥的動(dòng)物數(shù)逐漸增多,血尿酸均值約為正常對(duì)照2倍。慢性高尿酸血癥模型小鼠(Mod-C)血尿酸平穩(wěn)升高。Mod-C組血清及肝組織XOD活性和正常對(duì)照組相比,均未見(jiàn)明顯變化,肝、腎功能也無(wú)明顯變化,肝組織和腎組織的病理檢查(HE染色)亦未見(jiàn)明顯損傷,說(shuō)明此造模方法對(duì)小鼠的肝腎未見(jiàn)明顯損傷。口服給予XOD抑制劑非布索坦治療后,模型動(dòng)物的血尿酸水平下降到與正常對(duì)照組相近的水平,并保持穩(wěn)定。此慢性高尿酸血癥小鼠模型類似于臨床上高尿酸血癥的情況,可以用于高尿酸血癥藥物的藥效學(xué)評(píng)價(jià)及其作用機(jī)制的探究。
小鼠XOD組織分布相關(guān)報(bào)道較少。本研究結(jié)果顯示,ICR小鼠主要臟器均存在XOD的表達(dá),其XOD活性從高到低依次為小腸、心臟、肝臟、肺、腎、脾臟等組織。至于小腸、心臟高活性的XOD的生理功能,有待進(jìn)一步探討。此外,雖然由氧嗪酸鉀誘導(dǎo)的慢性高尿酸血癥模型小鼠各組織的XOD活性均未見(jiàn)明顯變化,但是XOD抑制劑非布索坦可明顯抑制該模型動(dòng)物的血清和肝臟的XOD活性。
總之,本研究建立了包括檢測(cè)樣品對(duì)體外XOD抑制活性、對(duì)急性高尿酸血癥小鼠一過(guò)性血尿酸水平上升的影響、對(duì)慢性高尿酸血癥小鼠血尿酸水平“長(zhǎng)”期平穩(wěn)上升作用的XOD抑制劑篩選體系。該體系的3種體外、體內(nèi)實(shí)驗(yàn)方法,各自獨(dú)立又互相補(bǔ)充、相互驗(yàn)證受試樣品的降血尿酸能力,為基于分子靶點(diǎn)XOD的抗高尿酸血癥藥物的研發(fā)和作用機(jī)制研究奠定了實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。
中國(guó)藥理學(xué)通報(bào)2019年10期