馮磊 石元豹 汪貴斌 曹福亮
摘要:以銀杏基因組數(shù)據(jù)為基礎(chǔ),對銀杏bHLH轉(zhuǎn)錄因子進行篩選和分析,從銀杏基因組中鑒定出72條bHLH轉(zhuǎn)錄因子。進一步分析發(fā)現(xiàn),不同bHLH轉(zhuǎn)錄因子序列長度和分子量差異較大,而理論等電點及親水性等比較接近;各家族成員均含有N端堿性氨基酸區(qū)和C端的螺旋環(huán)螺旋區(qū);該家族可分為17個亞家族,相同亞家族成員保守基序的類型十分相似。通過啟動子分析發(fā)現(xiàn),多數(shù)銀杏bHLH基因啟動子均含有光響應(yīng)元件、激素響應(yīng)元件和逆境脅迫響應(yīng)元件等。表達分析結(jié)果顯示,有7條銀杏bHLH基因的表達具有組織特異性,有6條基因在各組織中表達水平都比較高,預(yù)測其在銀杏生物學(xué)過程中具有十分重要的作用。
關(guān)鍵詞:銀杏;bHLH轉(zhuǎn)錄因子;進化分析;表達分析
中圖分類號:S792.95
文獻標識碼:A
文章編號:1000-4440(2019)02-0400-12
bHLH(Basic helix-loop-helix)轉(zhuǎn)錄因子是廣泛存在于動、植物中的轉(zhuǎn)錄因子超家族,因其“堿性螺旋-環(huán)-螺旋”保守結(jié)構(gòu)域而命名[1]。鳥類成髓細胞癌病毒中的c-MYC原癌基因是第1個被發(fā)現(xiàn)的bHLH家族成員基因[2],之后該類型的基因又陸續(xù)在多種動、植物中被發(fā)現(xiàn)[3]。該家族蛋白質(zhì)的bHLH保守結(jié)構(gòu)域大約含有60個氨基酸,其堿性區(qū)域分布在多肽鏈的N端,并負責(zé)與特定DNA的順時作用元件結(jié)合;HLH區(qū)域位于C末端,參與二聚體或者異二聚體的形成,從而行使其功能。
動物中bHLH家族數(shù)量較多,被分為A~F等6個組,共計45個家族[4]。與動物相比,植物中bHLH家族轉(zhuǎn)錄因子相對較少,而且大多數(shù)植物的bHLH蛋白在動物的該家族分類中屬于B組[5],根據(jù)植物中bHLH蛋白的序列同源性,又可將其分為不同的亞家族[5-6]。到目前為止,擬南芥中已鑒定的bHLH家族轉(zhuǎn)錄因子有162種,并且與水稻中的bHLH轉(zhuǎn)錄因子一起被分成了25個亞家族[7-9]。有學(xué)者對擬南芥、毛果楊、水稻、小立碗蘚以及5種藻類的bHLH轉(zhuǎn)錄因子進行綜合分析,并將其分成32個亞家族[10]。隨著二代和三代測序技術(shù)的發(fā)展,蘋果梨、櫻桃、西瓜、甘薯、大白菜等越來越多植物的bHLH家族轉(zhuǎn)錄因子被鑒定出來[11-17]。
植物中bHLH家族不但數(shù)量較多,還參與植物生長發(fā)育、形態(tài)建成、逆境脅迫和次生代謝調(diào)控等多種生物學(xué)過程[18-19]。近年來,植物bHLH家族蛋白質(zhì)的功能研究已經(jīng)成為熱點并且得到了快速發(fā)展。擬南芥作為模式植物,其bHLH轉(zhuǎn)錄因子功能研究相對較多。有研究者發(fā)現(xiàn)AtbHLH112對抗鹽、抗旱和抗?jié)B透脅迫有正調(diào)控作用,但是對擬南芥根系的發(fā)育有抑制作用[2021]。FIT轉(zhuǎn)錄因子可與At-bHLH38和AtbHLH39 共同調(diào)控擬南芥的鐵代謝[2]。光敏色素作用因子PIF4,也是一個bHLH家族成員,對光敏色素B的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)有抑制作用[23]。另外,研究者在西瓜基因組中共計鑒定出96個bHLH轉(zhuǎn)錄因子,并預(yù)測其中多個bHLH轉(zhuǎn)錄因子可能在低溫、ABA和鹽脅迫中發(fā)揮重要作用[13]。還有研究者發(fā)現(xiàn)水稻中OsbHLHl基因可能與其抗低溫脅迫相關(guān)[24]。
銀杏是原產(chǎn)中國的特色經(jīng)濟樹種,栽培歷史悠久,用途廣泛,經(jīng)濟價值高,擁有中華樹木“國寶”之稱[25]。植物中的bHLH家族研究在近年來得到了快速發(fā)展,但是到目前為止,在銀杏中被篩選出的bHLH轉(zhuǎn)錄因子并不多,僅有1條被命名為bHLH91的轉(zhuǎn)錄因子被克隆并進行了表達分析[26-27]。本研究通過生物信息學(xué)方法,在全基因組范圍內(nèi)對銀杏bHLH轉(zhuǎn)錄因子家族成員進行分離鑒定,并對鑒定出的銀杏bHLH轉(zhuǎn)錄因子進行理化性質(zhì)、系統(tǒng)進化、啟動子結(jié)構(gòu)和基因表達等方面進行分析,為bHLH轉(zhuǎn)錄因子功能的解析提供理論基礎(chǔ)。
1 材料與方法
1.1 銀杏bHLH家族的篩選
以Pfam數(shù)據(jù)庫中bHLH家族的保守域PF00010為參考序列,用HMMER 3.0軟件在測試銀杏基因組庫(GigaDB,http://gigadb.org/dataset/100209)中進行檢索。檢索得到的序列用NCBI-CDD(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/cdd/)和SMART(http://smart.embl-heidelberg.de/)在線程序進行保守域預(yù)測,去除假陽性序列[28]。將預(yù)測的具有bHLH保守域的序列作為銀杏bHLH家族候選轉(zhuǎn)錄因子,用于后續(xù)分析。
1.2 銀杏bHLH家族的理化性質(zhì)及保守域和保守基序分析
bHLH家族候選蛋白質(zhì)的氨基酸數(shù)、分子量、理論等電點等理化性質(zhì)用在線軟件ExPASy中的Prot-Param模塊(https://web.expasy.org/protparam/)進行分析。用DNAMAN(Lynnon Corporation,USA)對銀杏bHLH家族候選基因編碼的保守氨基酸序列進行多序列比對,并用MEME在線程序(http://meme-suite.org/tols/meme)進行氨基酸的保守基序分析[29]。
1.3 銀杏bHLH轉(zhuǎn)錄因子家族的進化分析
從PlantTFDB數(shù)據(jù)庫(http://planttfdb.cbi.pku.edu.cn/)中下載擬南芥bHLH轉(zhuǎn)錄因子序列作為參考,每個亞家族分別下載1~4條,共下載了49條At-bHLH家族轉(zhuǎn)錄因子[30]。將銀杏候選bHLH蛋白序列與24個AtbHLH參考序列用MUSCLE法進行多序列比對,截取bHLH保守域序列并用軟件MEGA5.0的Neighbo-Joining鄰接法構(gòu)建進化樹,校驗參數(shù)Bootstrap重復(fù)1000次[31]。
1.4 銀杏bHLH轉(zhuǎn)錄因子家族基因結(jié)構(gòu)分析
從銀杏基因組數(shù)據(jù)庫中提取篩選出bHLH基因CDS序列對應(yīng)的基因組序列,用GSDS 2.0在線程序繪制基因外顯子-內(nèi)含子模式圖。
1.5 銀杏bHLH家族基因的啟動子分析
從銀杏基因組數(shù)據(jù)庫中截取銀杏bHLH家族基因成員起始密碼子上游2000 bp序列作為啟動子區(qū),利用植物順式作用元件數(shù)據(jù)庫SOGO(https://sogo.dna.affre.go.jp/cgi-bin/sogo.cgi?sid=&lang=en&pj=640&action=page&page=newplace#opennewwindow)分析基因的順式作用元件。
1.6 銀杏bHLH家族基因表達分析
銀杏基因表達數(shù)據(jù)下載于GigaDB,通過Heat-map 2.0作圖,對采集于浙江省天目山的銀杏胚(雌樹)、雄蕊(雄樹)和幼苗(莖和葉混合樣)的bHLH基因表達進行分析。
2 結(jié)果與分析
2.1 銀杏bHLH轉(zhuǎn)錄因子篩選與理化性質(zhì)分析i
根據(jù)Pfam數(shù)據(jù)庫bHLH家族的保守域PF00010特征文件,在銀杏基因組數(shù)據(jù)庫中共檢索到133條可能的bHLH轉(zhuǎn)錄因子序列。候選序列用NCBI-CDD和SMART在線程序?qū)ΡJ亟Y(jié)構(gòu)域進行檢測,剔除結(jié)構(gòu)域不完整的序列,最后得到72個銀杏bHLH轉(zhuǎn)錄因子家族成員。這些成員在GigaDB數(shù)據(jù)庫中的登錄號見表1。
利用ExPASy在線程序?qū)︺y杏bHLH蛋白質(zhì)的理化特性進行分析。由表1可見,銀杏bHLH轉(zhuǎn)錄因子家族成員蛋白質(zhì)氨基酸序列含有氨基酸數(shù)目為181~1471,平均值為498;預(yù)測其分子量為2.0220x104~1.6141x105,平均值為5.5240x104;理論等電點在4.75至9.38范圍內(nèi)。從整體看,有64%的銀杏bHLH家族蛋白質(zhì)等電點小于7,等電點在酸性范圍內(nèi),蛋白質(zhì)分子中富含酸性氨基酸。蛋白質(zhì)疏水性分析結(jié)果表明,72條序列的疏水性均小于0,說明銀杏bHLH蛋白質(zhì)均為親水蛋白質(zhì),但是不同蛋白質(zhì)之間親水性存在差異。另外,銀杏bHLH蛋白質(zhì)含有大量脂肪族氨基酸,其中脂肪族氨基酸指數(shù)最大的是Gb_15579。
2.2 銀杏bHLH轉(zhuǎn)錄因子保守域分析
利用DNAMAN9.0對銀杏bHLH家族蛋白質(zhì)保守域進行多序列比對,發(fā)現(xiàn)銀杏bHLH家族保守域長度多數(shù)在60個氨基酸左右,其中最長的有69個氨基酸,最短的有51個氨基酸(圖1)。在結(jié)構(gòu)域序列保守性方面,除了Loop區(qū)沒有保守位點,其他區(qū)域都有不同數(shù)量的保守位點。在銀杏bHLH蛋白質(zhì)的保守域中共有24個位點上保守氨基酸的出現(xiàn)頻率高于50%,與其他植物類似,其中谷氨酸Glu-12、精氨酸Arg-13、精氨酸Arg-15、精氨酸Arg-16亮氨酸Leu-26、脯氨酸Pro-32、酪氨酸Tyr-65、亮氨酸Leu-69保守性均高于86%,其中精氨酸Arg-15、精氨酸Arg-16保守性為100%。
2.3 銀杏bHLH轉(zhuǎn)錄因子系統(tǒng)發(fā)生樹分析
根據(jù)預(yù)測到的銀杏bHLH蛋白質(zhì)和隨機選擇的擬南芥bHLH各亞家族蛋白質(zhì)保守結(jié)構(gòu)域氨基酸序列的相似性,利用MEGA5.1構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。參考擬南芥和水稻的bHLH家族轉(zhuǎn)錄因子的亞家族分類結(jié)果[9],預(yù)測得到的銀杏72個bHLH轉(zhuǎn)錄因子和隨機選擇的擬南芥bHLH轉(zhuǎn)錄因子被分成了21個亞家族,其中第II、Va、VI和第X亞家族只含有擬南芥bHLH轉(zhuǎn)錄因子。也就是說,銀杏的72個bHLH轉(zhuǎn)錄因子被分成了17個亞家族(圖2)。在所有含有銀杏bHLH蛋白質(zhì)的17個亞家族中,第Ib亞家族中的銀杏bHLH成員數(shù)量最多,共16個;第IVb、VIlc、IVc、Vb、XI和IX亞家族中的成員數(shù)量相對較少,數(shù)量僅為1~2個。根據(jù)進化樹分類結(jié)果以及各亞家族某些成員在模式植物擬南芥和水稻中的作用,初步判斷銀杏bHLH蛋白質(zhì)的功能。比如la亞家族蛋白質(zhì)可能與細胞分裂和器官分化相關(guān),Ib亞家族蛋白質(zhì)可能與鐵代謝調(diào)控相關(guān),Ib亞家族可能在植物的抗低溫脅迫中起重要作用等[32]。銀杏bHLH轉(zhuǎn)錄因子在其各種生理過程中的具體功能,還需要進一步研究。
2.4 銀杏bHLH轉(zhuǎn)錄因子保守基序分析
為了進一步研究銀杏中bHLH蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)的多樣性,通過MEME在線程序?qū)︺y杏72個bHLH蛋白質(zhì)進行保守基序(Motif)分析,識別獲得20個保守基序(圖3)。由圖3可見,屬于同一個亞家族的bHLH基因家族成員有著十分相似的Mo-tif類型和數(shù)量,但同時同一個亞家族成員的Motif模式也存在差異。在所有保守基序中,Motif 1、Motif2和Motif12是bHLH蛋白質(zhì)保守結(jié)構(gòu)域的特征保守基序。在所有銀杏bHLH蛋白質(zhì)中,序列Gb_31407的Motif 類型最為簡單,僅有2個成員,最復(fù)雜的是Illd+e亞家族成員,其Motif數(shù)量為9~10個,且該亞家族成員除Gb_31407 沒有Motif13以外,各成員含有的Motif類型完全相同。有一些Motif具有亞家族特異性,比如Motif15、Motif16和Motif18僅在亞家族lb中含有;Motif 17是IVd亞家族特有的保守基序;而Motif8和Motif 11只在亞家族IId+e被發(fā)現(xiàn);XII亞家族中特有的Motif有4個,分別是Motif 7、Motif 9、Motif 19和Motif 20。
2.5 銀杏bHLH家族基因的基因結(jié)構(gòu)分析
運用GSDS 2.0軟件繪制銀杏基因內(nèi)含子-外顯子結(jié)構(gòu)圖并對其結(jié)構(gòu)進行分析和整理。由圖4可知,銀杏bHLH基因家族分為內(nèi)含子富集和內(nèi)含子缺失2類,其中Gb_06182、Gb_11960、Gb_12264、Gb_17737、Gb_27302、Gb_27869、Gb_28786、Gb_36294無內(nèi)含子,Gb_39491、Gb_37668、Gb_37667、Gb_31785、Gb_20754、Gb_12744、Gb_10001、Gb_05276僅1個內(nèi)含子,以上成員均屬于內(nèi)含子缺失組;Gb_30839含9個內(nèi)含子(占比1%),Gb_15442、Gb_39758含8個內(nèi)含子(占比3%),Gb_40829、Gb_36369、Gb_33185、Gb_32265、Gb_30387、Gb_29750、Gb_24992、Gb_13867、Gb_13550、Gb_12493、Gb_07223含7個內(nèi)含子(占比15%),Gb_65320、Gb_07156、Gb_20300、Gb_21415、Gb_22201含6個內(nèi)含子(占比7%),Gb_37017、Gb_28850含5個內(nèi)含子(占比3%),以上成員均屬內(nèi)含子富集組。其中含有2個內(nèi)含子的bHLH基因17個,所占成員總數(shù)比例最多,達24%。此外,基因結(jié)構(gòu)分析結(jié)果表明,銀杏bHLH基因家族各成員基因長度具有明顯的差異。其中最短的Gb_05276 只有859 bp;而Gb_01625序列最長,達到了257612 bp。
2.6 銀杏bHLH家族基因啟動子分析
銀杏bHLH基因啟動子序列分析結(jié)果(表2)顯示,72個bHLH基因的啟動子調(diào)控區(qū)域均含有與光調(diào)控、脫落酸、葉肉特異性表達、花粉特異性表達、莖特異性表達有關(guān)的轉(zhuǎn)錄因子作用元件,例如GT1CONSENSUS、EBOX BNNAPA、CACTFTPPCA1、POLLEN1LELAT52和NODCON2GM。統(tǒng)計結(jié)果表明,有63%和79%的銀杏bHLH基因成員含有植物生長激素響應(yīng)元件(ARFAT和NTBBF1ARROLB),65%的bHLH基因含脫落酸響應(yīng)元件(ABRELAT-ERD1),71%和68%的bHLH基因含有赤霉素響應(yīng)元件(GAREAT和CAREOSREP1),57%的bHLH基因含有乙烯響應(yīng)元件(ERELEE4),92%的bHLH基因含有與根瘤菌有關(guān)的特異性保守序列響應(yīng)元件(NODCON1GM),96%的bHLH基因含有脅迫響應(yīng)元件(CCAATBOX1),99%的bHLH基因含有疾病防御響應(yīng)元件(BIHD1OS),97%的bHLH基因含有糖響應(yīng)元件(WBOXHVISO1),57%的bHLH基因含有種子特異性表達元件(SEF1MOTIF)。說明各bHLH基因的表達與銀杏抗逆境以及生長發(fā)育有重要聯(lián)系。
2.7 銀杏bHLH家族基因表達分析
從銀杏基因組數(shù)據(jù)庫中下載基因表達數(shù)據(jù),將其中bHLH基因的表達數(shù)據(jù)用heatmap2.0作圖(圖5)。由圖5可知,在銀杏所有bHLH家族基因中有8個在胚、雄蕊和幼苗3個器官中都沒有檢測到表達,另外有7個基因的表達具有組織特異性。由圖5可以看出,在胚中表達水平較高的有Gb_20471(36.86)、Gb_41424(81.93)和Gb_15579(40.27),另外Gb_05307、Gb_28786和Gb_01625表達量(RP_KM值)也達到10以上;雄蕊中表達量超過10的基因有19個,需要特別指出的是Gb_41424和Gb_15579基因的表達量分別高達79.48和297.03,而且Gb_15579在3個樣品中表達量都比較高,在雄蕊中表達量是所有測試基因中表達最高的;在銀杏幼苗中表達量超過10的基因有17個,其中Gb_20471、Gb_41424、Gb_21105和Gb_15579的表達量分別高達36.61、57.86、64.26和70.70??傮w來看Gb_20471、Gb_41424、Gb_28786和Gb_15579在3個樣品中表達水平都比較高。其中Gb_28786和Gb_15579分別屬于ld+e和Ia+c亞家族,可能參與銀杏中茉莉酸代謝的調(diào)控;Gb_20471和Gb_41424屬于IVe亞家族,可能參與植物金屬穩(wěn)態(tài)的調(diào)節(jié)。
3 討論
本研究通過對銀杏全基因組進行搜索,最終篩選出了72個bHLH基因,并且對它們的理化性質(zhì)、保守結(jié)構(gòu)域、基因結(jié)構(gòu)、系統(tǒng)進化和基因表達等情況進行了詳細的分析。銀杏bHLH轉(zhuǎn)錄因子的保守區(qū)域中有His、Glu、Arg和Leu等高度保守的氨基酸殘基[33]。通過系統(tǒng)發(fā)育分析可將銀杏和擬南芥的bHLH成員分為21個亞家族11.34-35]。本研究對篩選的銀杏bHLH的表達模式進行了分析,發(fā)現(xiàn)有些基因在胚(雌樹)、雄蕊(雄樹)和幼苗(莖和葉混合樣)3種樣品中都未被檢測到表達,可能這些基因在特定時間或某種脅迫條件下才會表達。還有些基因的表達具有組織特異性,也有幾個基因在3種樣品中的表達水平都比較高,說明有些bHLH基因在某些特定組織中才會發(fā)揮作用,也有些基因在所有組織中都發(fā)揮作用。
近年來,bHLH轉(zhuǎn)錄因子在植物次生代謝調(diào)控,中的作用受到許多研究者的關(guān)注,相關(guān)研究取得很大進展。Gonzalez等[36]和Xie等[3]發(fā)現(xiàn)了多個bHLH轉(zhuǎn)錄因子與擬南芥花青苷代謝相關(guān)。Dom-brecht等[38]和Schweizer等[39還發(fā)現(xiàn)多個bHLH轉(zhuǎn)錄因子在黃酮代謝中發(fā)揮重要調(diào)控作用。此外,bHLH家族轉(zhuǎn)錄因子還在吡啶類生物堿代謝、糖苷生物堿代謝、紫杉烷類代謝、異喹啉類生物堿代謝和萜類代謝等多種植物代謝途徑中被發(fā)現(xiàn)[4041]。黃酮和萜類是銀杏中主要的藥用成分,其代謝通路中多數(shù)關(guān)鍵基因已經(jīng)被研究,但是其轉(zhuǎn)錄調(diào)控研究還在摸索階段。bHLH轉(zhuǎn)錄因子在銀杏黃酮和萜類代謝中的調(diào)控作用是將來研究的一個重要方面。
總之,轉(zhuǎn)錄因子是一類重要的基因調(diào)控蛋白質(zhì),生物體的一系列生理生化活動都離不開轉(zhuǎn)錄因子的調(diào)節(jié),它不僅可以調(diào)節(jié)生物體的新陳代謝和生長發(fā)育,而且在響應(yīng)外界脅迫方面也起著重要的作用[42]。本研究利用生物信息學(xué)方法,對銀杏bHLH基因家族進行了系統(tǒng)深入的分析,為未來的基因克隆提供了豐富的資源,可為將來深入研究該家族基因的表達調(diào)控、結(jié)構(gòu)和功能等提供參考。
參考文獻:
[1]BUCK M J,ATCHLEY W R.Phylogenetic analysis of plant basic helix-loop-helix proteins[J].J Mol Evol,2003,56(6):742-750.
[2]MURRE C,MCCAW P,BALTIMORE D.A new DNA binding and dimerizing motif in Immunoglobulin enhancer binding,Daugtherless,MyoD,and Myc proteins[J].Cell,1989,56(5):777-783.
[3]王勇江,陳克平,姚勤.bHLH轉(zhuǎn)錄因子家族研究進展[J].遺傳,2008,30(7):821-830.
[4]王勇,姚勤,陳克平.動物bHLH轉(zhuǎn)錄因子家族成員及其功能[J].遺傳,2010,34(4):307-330.
[5]劉曉月,王文生,傅彬英.植物BHLH轉(zhuǎn)錄因子家族的功能研究進展[J].生物技術(shù)進展,2011,1(6):391-397.
[6]ATCHLEY W A,F(xiàn)TTCH W M.A natural classification of the basic helix-loop-helix class of transcription factors[J].Proceedings ofthe National Academy of Sciences of the United States of America,1997,94(10):5172-5176.
[7]TOLEDOOG,HUQ E,QUAIL P H.The Arabidopsis basic/helix-loop-helix transcription factor family(w)[J].Plant Cell,2003,15(8):1749-1770.
[8]BAILEY P C,MARTIN C,T0LEDO OG,et al.Update on the basic helix-loop-helix transcription factor gene family in Arabidop-sis thaliana[J].The Plant Cell,2003,15(11):2497-2501.
[9LI X,DUAN X,JIANG H,et al.Genome-wide analysis of basic helix-loop-helix transcription factor family in rice and arabidopsis1[J].Physiologia Plantarum,2006,141(4):1167-1184.
[10]CARRETERO P L,GALSTYAN A,ROIG V I,et al.Genome-wide classification and evolutionary analysis of the bHLH family oftranscription factors in arabidopsis,poplar,rice,moss,and algael[J].Physiologia Plantarum,2010,153(3):1398-1412.[11]楊金華.蘋果bHLH轉(zhuǎn)錄因子家族的鑒定及表達分析[D].楊凌:西北農(nóng)林科技大學(xué),2017.
[12]李曉剛,李慧,楊青松,等.杜梨bHLH轉(zhuǎn)錄因子家族兩成員的序列特征及對非生物脅迫的轉(zhuǎn)錄響應(yīng)[J].江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2017,45(22):40-45.
[13]李永強,應(yīng)朱,郭衛(wèi)東,等.櫻桃bHLH轉(zhuǎn)錄因子家族基因鑒定及表達分析[J].分子植物育種,2018(14):1-13.
[14]黃寧,劉朋,霍俊偉,等.藍果忍冬果實花青素含量及合成相關(guān)基因表達分析[J].南方農(nóng)業(yè)學(xué)報,2017,48(7):1139-1147.
[15]何潔,顧秀容,魏春華,等.西瓜bHLH轉(zhuǎn)錄因子家族基因的鑒定及其在非生物脅迫下的表達分析[J].園藝學(xué)報,2016,43(2):281-294.
[16]裴苓荃.甘薯bHLH基因家族的鑒定與初步分析[D].徐州:江蘇師范大學(xué),2017.
[17]SONG X M,HUANG Z N,DUAN W K,et al.Genome-wide analysis of the bHLH transcription factor family in Chinese cabbage(Brassica rapa ssp. pekinensis)[J].Molecular Genetics and Genomies,2014,289(1):77-91.
[18]王翠,蘭海燕.植物bHLH轉(zhuǎn)錄因子在非生物脅迫中的功能研究進展[J].生命科學(xué)研究,2016,20(4):358-364.
[19]劉文文,李文學(xué).植物bHLH轉(zhuǎn)錄因子研究進展[J].生物技術(shù)進展,2013,3(1):7-11.
[20]WANG WS,ZHUJ,LU Y T.Overexpression of AtbHLH112 suppresses lateral root emergence in Arabidopsis[J].FunctionalPlant Biology,2014,41(4):342-352.
[21]LIU Y,JI X,NIE X,et al.Arabidopsis AtbHLH112 regulates the expression of genes involved in abiotic stress tolerance by bindingto their E-box and GCG-box motifs[J].New Phytologist,2015,207(3):692-709.
[22]YUAN Y,WUH,WANG N,et al.FTT interacts with AtbHLH38 and AtbHLH39 in regulating iron uptake gene expression for ironhomeostasis in Arabidopsis[J].Cell Res,2008,18(3):385-397.
[23]HUQ E,QUAIL P H.PIF4,a phytochrome-interacting bHLH fac-
tor,functions as a negative regulator of phytochrome B signaling in Arabidopsis[J].The EMBO Journal,2002,21(10):2441-2450.
[24]WANG Y J,ZHANGZG,HEXJ,et al.A rice transcription factor OsbHLH1 is involved in cold stress response[J].Theoreticaland Applied Genetics,2003,107(8):1402-1409.
[25]曹福亮.中國銀杏[M].南京:江蘇科學(xué)技術(shù)出版社,2002:406.
[26]何昌文,朱麗,沈珊,等.銀杏bHLH91轉(zhuǎn)錄因子基因的克隆及表達分析[J].廣西植物,2018,38(2):202-209.
[27]LIN X,ZHANG J,LI Y,et al.Functional genomics of a living fossil tree,Ginkgo,based on next-generation sequencing technology[J].Physiol Plant,2011,143(3):207-218.
[28]LETUNIC I,DOERKS T,BORK P.SMART:recent updates,new developments and status in 2015[J].Nucleic Acids Res,2015,43(D1):257-260.
[29]BAILEY T L,WILIAMS N,MISLEH C,et al.MEME:discovering and analyzing DNA and protein sequence motifs[J].NucleicAcids Res,2006,34(suppl_2):369-373.
[30]JINJ,TIANF,YANG D C,et al.PlantTFDB 4.0:toward a central hub for transcription factors and regulatory interactions inplants[J].Nucleie Acids Res,2017,45(D1):1040-1045.
[31]TAMURA K,PETERSON D,PETERSON N,et al.MEGA5:molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood,evolutionary distance,and maximum parsimony methods[J].MolBiol Evol,2011,28(10):2731-2739.
[32]NIU X,GUAN Y,CHEN S,et al.Genome-wide analysis of basic helix-loop-helix(bHLH )transcription factors in Brachypodium dis-tachyon[J].BMC Genomics,2017,18(1):619.
[33]陳紅霖,胡亮亮,王麗俠,等.綠豆bHLH轉(zhuǎn)錄因子家族的鑒定與生物信息學(xué)分析[J].植物遺傳資源學(xué)報,2017,18(6):1159-1167.
[34]陳堤穎,劉娟,袁媛,等.黃苓bHLH轉(zhuǎn)錄因子基因家族生物信息學(xué)及表達分析[J].中草藥,2018,49(3):671-677.
[35]張子佳,王迪,傅彬英.水稻轉(zhuǎn)錄因子bHLH家族基因響應(yīng)環(huán)境脅迫表達譜分析[J].分子植物育種,2008,6(3):425-431.
[36]GONZALEZ A,ZHAO M,LEAVITT J M,et al.Regulation of the anthocyanin biosynthetic pathway by the TTG1/bHLH/Myb transcriptional complex in Arabidopsis seedlings[J].Plant J,2008,53(5):814-827.
[37]XIE Y,TAN H,MA Z,et al.DELLA proteins promote anthocyanin biosynthesis via sequestering MYBL2 and JAZ suppressors ofthe MYB/bHLH/WD40 complex in Arabidopsis thaliana[J].MolPlant,2016,9(5):711-721.
[38]DOMBRECHT B,XUE G P,SPRAGUESJ,et al.MYC2 differentially modulates diverse jasmonate-dependent functions in Arabi-dopsis[J].Plant Cell,2007,19(7):2225-2245.
[39]SCHWEIZER F,F(xiàn)ERNANDEZ-CALVO P,ZANDER M,et al. Arabidopsis basic helix-loop-helix transcription factors MYC2,MYC3,and MYC4 regulate glucosinolate biosynthesis,insect performance,and feeding behavior[J].Plant Cell,2013,25(8):3117-3132.
[40]GOOSSENS J,MERTENS J,GOOSSENS A.Role and functioning
of bHLH transcription factors in jasmonate signalling[J].J ExpBot,2017,68(6):1333-1347.
[41]PATRA B,PATTANAIK S,SCHLUTTENHOFER C,et al.A network of jasmonate-responsivebHLH factors modulate monoter-penoid indole alkaloid biosynthesis in Catharanthus roseus[J].New Phytol,2018,217(4):1566-1581.
[42]Arce A L,CabelloJ V,Chan R L.Patents on plant transcription factors[J].Recent Pat Biotechnol,2008,2(3):209-217.