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        單增李斯特菌srtA基因缺失株的構(gòu)建及srtA基因?qū)ζ涠玖Φ挠绊懷芯?/h1>
        2019-09-06 01:27:24張奇文吳學(xué)林薄新文
        關(guān)鍵詞:小鼠

        張奇文,凌 晨,吳學(xué)林,馬 勛,薄新文

        (1.石河子大學(xué)動(dòng)物科技學(xué)院,石河子 832003;2.天康生物股份有限公司,烏魯木齊 830010;3.新疆農(nóng)墾科學(xué)院省部共建綿羊遺傳改良與健康養(yǎng)殖國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,石河子832003)

        革蘭氏陽性菌的細(xì)胞壁是由多層肽聚糖構(gòu)成,表面分子磷壁酸及表面蛋白等均呈現(xiàn)在肽聚糖上,表面蛋白的種類不同,錨定機(jī)制也有所不同[1]。表面蛋白錨定到肽聚糖的過程由分選酶催化完成,這類蛋白在致病菌中發(fā)揮重要的毒力作用[2]。1999年Mazmanian等[3]以SPA為模型研究了表面蛋白的錨定過程,表明分選酶A(sortase A,SrtA)與SPA錨定到細(xì)胞壁表面過程密切相關(guān),并且證實(shí)SrtA通過識別LPXTG保守基序,將蛋白共價(jià)結(jié)合到細(xì)胞壁肽聚糖上。Pallen等[4]對已測序的92個(gè)細(xì)菌基因組進(jìn)行分析發(fā)現(xiàn),大多數(shù)革蘭氏陽性菌中都存在分選酶同源基因,只是在不同細(xì)菌基因組中存在的數(shù)量、種類、功能等存在一定差異。

        單核細(xì)胞增生性李斯特菌(Listeria monocytogenes,LM)是革蘭氏陽性、胞內(nèi)寄生菌,一種重要的食源性人獸共患病原菌,可以穿越宿主的腸道屏障,血腦屏障和血胎屏障,臨床上引起腸胃炎、腦膜炎、腦炎、敗血癥、流產(chǎn)等癥狀,LM的致病過程涉及多種毒力因子及其相關(guān)的酶類。LM表面有多種前體分子中含有LPXTG基序的表面蛋白,對于LM致病性發(fā)揮重要作用,如InlA、InlJ、LapB和VIP等[5-10]。在LM中,srtA是由222個(gè)氨基酸組成的分選酶,參與一些含有LPXTG基序的表面蛋白與肽聚糖的結(jié)合過程[11]。目前已報(bào)道,srtA基因缺失以后,可以影響表面毒力蛋白錨定到細(xì)胞壁,從而影響細(xì)菌毒力[3,11-13]。

        血腦屏障是LM引起腦膜炎、腦炎必須穿越的屏障[14],目前對于LM跨越血腦屏障的研究主要通過建立感染小鼠腦炎模型觀察病變特征[15],體外血腦屏障研究則主要是腦微血管碎段模型、腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞模型、腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞和星形膠質(zhì)細(xì)胞共同培養(yǎng)模型[16],而培養(yǎng)腦血管內(nèi)皮細(xì)胞是目前國內(nèi)外常用的血腦屏障模型。本研究以新疆發(fā)病綿羊腦內(nèi)臨床分離株LM90SB2為研究對象[17],利用同源重組的方法構(gòu)建srtA基因缺失株(LM90SB2-ΔsrtA),與LM90SB2株比較在腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞(brain microvascular endothelial cells,BMEC)的粘附、侵襲及胞內(nèi)和小鼠腦內(nèi)增殖的差異,探討srtA基因在LM90SB2穿越血腦屏障中的作用。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 菌株、質(zhì)粒、細(xì)胞 LM分離株LM90SB2是2000年石河子大學(xué)動(dòng)物科技學(xué)院微生物免疫實(shí)驗(yàn)室從新疆發(fā)病綿羊腦內(nèi)分離得到的單核細(xì)胞增生性李斯特菌,由本實(shí)驗(yàn)室鑒定后保存,血清型為4b型;自殺性質(zhì)粒pKSV7由浙江大學(xué)動(dòng)物科學(xué)學(xué)院分子微生物與食品安全實(shí)驗(yàn)室饋贈;大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞和pMD19-T(simple)購自大連寶生物(TaKaRa)公司。原代人腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞(human brain microvascular endothelial cell,HBMEC)購買自美國ScienCell Research Laboratories;鼠腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞(murine brain microvasular endothelial cell,MBMEC)購自廣州吉妮歐生物科技有限公司;豬腸上皮細(xì)胞(swine intestinal epithelial cell,SIEC)和小鼠巨噬細(xì)胞RAW264.7由本實(shí)驗(yàn)室保存。

        1.1.2 主要試劑TaqDNA聚合酶、PfuDNA高保真聚合酶、dNTP、PCR Mix、DNA Marker DL2000均購自廣州東盛生物科技有限公司,限制性核酸內(nèi)切酶(BamHⅠ、PstⅠ)、T4 DNA 連接酶購自寶生物工程(大連)有限公司,瓊脂糖凝膠電泳回收試劑盒購自北京諾維森生物科技有限公司,質(zhì)粒小提試劑盒購自天根生化科技有限公司,氨芐青霉素(Amp)、氯霉素、慶大霉素、青霉素G、溶菌酶、HEPES均購自北京博奧拓達(dá)科技有限公司,腦心浸液(brain heart infusion broth,BHI)培養(yǎng)基購自青島高科技園海博生物技術(shù)有限公司。

        1.1.3 實(shí)驗(yàn)小鼠 6~8周BALB/c小鼠購自石河子大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心。

        1.1.4 相關(guān)引物 擴(kuò)增引物、缺失srtA基因的相關(guān)引物及缺失株的驗(yàn)證引物如表1所示。所有引物由北京華大基因公司合成。

        1.2 方法

        1.2.1srtA基因的克隆與分析 根據(jù)文獻(xiàn)[18]中的煮沸法提取LM分離株LM90SB2的基因組。實(shí)驗(yàn)中所需要的引物見表1。引物srtAF/srtAR 擴(kuò)增包含srtA基因及其上下游同源臂序列,PCR的反應(yīng)體系:TaqDNA聚合酶(5 U/μL)1 μL,dNTP(25 mmol/L)1 μL,10×Buffer 3 μL,上下游引物(10 μmol/L)各1μL,模板1 μL,ddH2O補(bǔ)足30 μL。反應(yīng)條件:95℃預(yù)變性5 min,95℃變性40 s、60℃退火30 s、72℃延伸100 s,30個(gè)循環(huán),72℃延伸10 min,4℃保存。瓊脂糖凝膠電泳檢測目的基因,回收目的片段,連接到pMD19-T(simple)載體,轉(zhuǎn)化到DH5α感受態(tài)細(xì)胞,送北京華大基因公司測序。測序結(jié)果與NCBI上已公布LM標(biāo)準(zhǔn)株的全基因序列進(jìn)行比對分析。

        表1 本研究引物Table 1 Primers used in this study

        1.2.2 LM90SB2-ΔsrtA缺失株的構(gòu)建 利用SOE-PCR(splice overlap extension PCR)的方法構(gòu)建含有srtA基因上下游同源臂的重組質(zhì)粒[18],將重組質(zhì)粒電轉(zhuǎn)化進(jìn)入LM分離株LM90SB2中,與基因組中的同源臂進(jìn)行重組,通過篩選鑒定得到LM90SB2srtA基因缺失株。反應(yīng)條件:含有引物對srtA1/srtA2的體系退火溫度為53.6℃;含有引物對srtA3/srtA4的退火溫度為59.3℃,其他條件同1.2.1。純化回收PCR產(chǎn)物,用SOE-PCR的方法融合形成886 bp的融合片段ΔsrtA,連接到pMD19-T(simple)載體,轉(zhuǎn)化入DH5α,送北京華大基因公司測序,篩選出序列正確的陽性質(zhì)粒pMD19-T-ΔsrtA。質(zhì)粒pMD19-TΔsrtA和pKSV7經(jīng)PstⅠ和BamHⅠ雙酶切后,經(jīng)連接構(gòu)建重組質(zhì)粒pKSV7-ΔsrtA。將獲得的重組質(zhì)粒pKSV7-ΔsrtA電轉(zhuǎn)(2.5 kv, 5 ms)至LM90SB2感受細(xì)胞態(tài)中,并接種于含有10 μg/mL 氯霉素的BHI平板上進(jìn)行陽性克隆的篩選。經(jīng)PCR鑒定陽性的克隆接種到含有5 mL BHI培養(yǎng)基(含10 μg/mL 氯霉素)的試管,在41℃、100 r/min的條件下連續(xù)傳代,以srtA1/srtA4、srtA5/srtA6兩對引物來篩選srtA基因缺失株。將srtA基因缺失株接種于5 mL無抗性BHI培養(yǎng)基的試管中,在30℃、100 r/min的條件下連續(xù)傳代,影印接種于BHI-Cl和BHI平板,篩選出不含抗性的LM90SB2srtA基因缺失陽性克隆,并連續(xù)傳代無變化,送至北京華大基因公司測序。

        1.2.3 細(xì)胞侵染實(shí)驗(yàn)

        1.2.3.1 細(xì)胞和細(xì)菌的培養(yǎng) 采用含有10%胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)和雙抗(100 U/mL青霉素和10 μg/mL硫酸鏈霉素)的DMEM培養(yǎng)所有細(xì)胞。并接種于24孔細(xì)胞培養(yǎng)板,置于含37℃、5%CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱中,培養(yǎng)24 h使細(xì)胞長成單層。挑取單個(gè)菌落接種于含有5 mLBHI的試管中,置于37℃、180 r/min的搖床中培養(yǎng)16 h,取培養(yǎng)物8000×g離心5 min收集菌體,PBS洗滌2遍,稀釋細(xì)菌于DMEM培養(yǎng)液中,平板計(jì)數(shù),使細(xì)菌數(shù)量大約為107CFU/mL,用于感染細(xì)胞。

        1.2.3.2 細(xì)菌對細(xì)胞的粘附與侵襲 參考文獻(xiàn)[19-20]中的方法來分析菌株對于細(xì)胞的粘附侵襲作用。按照一定的比例(細(xì)菌∶內(nèi)皮細(xì)胞=50∶1,細(xì)菌∶巨噬細(xì)胞=5∶1)用細(xì)菌感染24孔細(xì)胞培養(yǎng)板中的細(xì)胞60 min,使得細(xì)菌粘附并侵入細(xì)胞。感染結(jié)束后,37℃預(yù)熱的PBS洗滌細(xì)胞2次,去除未粘附細(xì)胞的細(xì)菌,用0.1 mL 0.25% TritonX-100裂解細(xì)胞10 min,用PBS洗滌混旋均勻后,10倍梯度稀釋,平板計(jì)數(shù),計(jì)算細(xì)菌對細(xì)胞的粘附率。細(xì)菌感染結(jié)束后,37℃預(yù)熱的PBS洗滌2次后,加入含有100 μg/mL的慶大霉素的新鮮DMEM置于37℃、5%CO2的細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)1 h,殺滅細(xì)胞外沒有侵入細(xì)胞的細(xì)菌,棄培養(yǎng)液PBS洗滌1次,按上述方法裂解細(xì)胞、菌落計(jì)數(shù),計(jì)算細(xì)菌對細(xì)胞的侵襲率。

        1.2.3.3 細(xì)菌在細(xì)胞內(nèi)的增殖 細(xì)菌感染細(xì)胞60 min后,PBS洗滌2次,加入含有100 μg/mL慶大霉素的DMEM,培養(yǎng)細(xì)胞40 min后,裂解細(xì)胞,平板計(jì)數(shù),記做t=0。其余加入含有5%FBS和10 μg/mL慶大霉素的DMEM,培養(yǎng)于37℃、5%CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱中,間隔一定的時(shí)間(t=2、4、6、8、10和12 h)按上述方法裂解細(xì)胞,菌落計(jì)數(shù),繪制細(xì)菌在細(xì)胞內(nèi)的生長曲線。

        1.2.4 小鼠毒力實(shí)驗(yàn) 6~8周BALB/c小鼠飼養(yǎng)一周,觀察其無異常變化,隨機(jī)分組。挑取單菌落接種于BHI培養(yǎng)基中,在37℃、180 r/min的搖床中振蕩培養(yǎng)16 h,菌液于5000×g離心5 min,收集菌體,PBS洗滌2次,懸浮菌體于PBS中,調(diào)整各菌株菌量至同一水平,約8×109CFU/mL。將細(xì)菌懸液10倍梯度稀釋至8×105CFU/mL,平板計(jì)數(shù)確定實(shí)際接種量。各梯度的細(xì)菌懸液腹腔接種小鼠0.5 mL,每組接種6只小鼠,同時(shí)接種PBS為陰性對照組,統(tǒng)計(jì)接種后10 d內(nèi)小鼠死亡數(shù),用寇氏法計(jì)算LD50。將含有5×105CFU/mL的細(xì)菌懸液腹腔接種小鼠0.3 mL[21],每個(gè)菌株接種15只小鼠,分別在接種后1、2、3、4 d無菌剖取小鼠肝臟、脾臟和腦,加入1 mL PBS充分研磨制成均勻的組織懸液,用PBS進(jìn)行10倍梯度稀釋,涂布于亞碲酸鉀平板計(jì)數(shù),挑取菌落用引物對hlyF/hlyR進(jìn)行PCR鑒定。

        1.2.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 統(tǒng)計(jì)每組BHI平板計(jì)數(shù)結(jié)果,細(xì)菌粘附率計(jì)算公式:(胞內(nèi)細(xì)菌數(shù)+胞外細(xì)菌數(shù))÷加入孔內(nèi)的細(xì)菌數(shù)×100%。侵襲率計(jì)算公式:胞內(nèi)細(xì)菌數(shù)÷加入孔內(nèi)的細(xì)菌數(shù)×100%,而細(xì)胞內(nèi)增殖則用不同培養(yǎng)時(shí)間段(2、4、6、8 h等)細(xì)胞裂解計(jì)數(shù)結(jié)果取對數(shù)表示。用軟件 SPSS17.0 采用t檢驗(yàn)對數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。

        2 結(jié)果

        2.1 LM分離株LM90SB2 srtA基因的擴(kuò)增與分析擴(kuò)增獲得srtA基因的開放閱讀框大小為669 bp(圖1),編碼222個(gè)氨基酸,LM90SB2的srtA基因與LM F2365 株(serovar 4b,NC_002973)的srtA基因的核苷酸同源性為100%,與LM EGD-e株所編碼(serovar 1/2a,NC_003210)的srtA基因的核苷酸同源性為94.32%,氨基酸同源性為99.55%,只有第176位的氨基酸由天冬酰胺突變?yōu)樘於彼?,不屬于SrtA的活性中心和保守區(qū)域。

        圖1 LM分離株LM90SB srtA基因 PCR 擴(kuò)增結(jié)果Fig.1 PCR products of srtA gene

        2.2 LM90SB2 srtA基因缺失株的構(gòu)建用SOE-PCR的方法擴(kuò)增了1個(gè)886 bp的srtA基因上下游同源臂,連接到載體pKSV7上,構(gòu)建pKSV7-ΔsrtA,并將其電轉(zhuǎn)進(jìn)入分離株LM90SB2中,含有重組質(zhì)粒pKSV7-ΔsrtA的LM90SB2菌隨機(jī)同源重組形成srtA基因缺失株LM90SB2-ΔsrtA,用引物對srtA5/srtA6進(jìn)行PCR鑒定。結(jié)果顯示,分離株目的條帶為1747 bp,見圖2。缺失株目的條帶為1078 bp,測序結(jié)果證實(shí)srtA基因缺失。與分離株LM90SB2相比,LM90SB2-ΔsrtA在BHI培養(yǎng)基中37℃條件下生長無差異,連續(xù)傳代后PCR檢測無變化,表明缺失片段具有遺傳穩(wěn)定性。

        圖2 LM缺失株LM90SB2-ΔsrtA PCR鑒定Fig.2 Identi fication of recombinant LM90SB2-ΔsrtA by PCR

        2.3 LM分離株LM90SB2和缺失株LM90SB2-ΔsrtA對不同種類細(xì)胞的感染能力分析LM對細(xì)胞的粘附和侵襲與細(xì)胞類型有關(guān)。分離株LM90SB2對MBMEC、HBMEC、RAW264.7、SIEC的粘附率和侵襲率均不同,粘附率分別為1.2952、0.9740、7.3470、1.4343;侵襲率分別為0.3264、0.4718、3.3610、0.8267(表2)。分離株LM90SB2在不同細(xì)胞內(nèi)的增殖趨勢不同,在MBMEC、RAW264.7中,細(xì)菌數(shù)目隨時(shí)間呈現(xiàn)一個(gè)先下降后上升的趨勢(圖3A和3C);HBMEC中,不同時(shí)間細(xì)菌數(shù)目保持相對平穩(wěn)(圖3B);在SIEC細(xì)胞中,細(xì)菌數(shù)目隨時(shí)間不斷下降(圖3D)。缺失株LM90SB2-ΔsrtA對細(xì)胞的粘附和侵襲均較分離株LM90SB2下降(表2)。統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,與分離株LM90SB2相比,缺失株LM90SB2-ΔsrtA對HBMEC、RAW264.7、SIEC的粘附和對MBMEC、RAW264.7、SIEC的侵襲差異具有顯著統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(表2)。

        表2 LM分離株LM90SB2和缺失株LM90SB2-ΔsrtA對細(xì)胞的粘附和侵襲效率Table 2 Percent of adhesion and invasion results of LM90SB2 strain and LM90SB2-ΔsrtA strain

        圖3 LM分離株LM90SB2 (◇WT)和LM缺失株LM90SB2-ΔsrtA (■ΔsrtA)在不同時(shí)間點(diǎn)細(xì)胞內(nèi)的細(xì)菌數(shù)Fig.3 Numbers of LM90SB2 (◇WT) and LM90SB2-ΔsrtA(■ΔsrtA) in the cells after infection at various time

        2.4 srtA基因的缺失對小鼠致病能力的影響小鼠腹腔注射不同濃度的菌液,24 h后小鼠出現(xiàn)死亡,統(tǒng)計(jì)小鼠死亡數(shù),用寇氏法計(jì)算LD50,測得LM90SB2-ΔsrtALD50為107.73,分離株LM90SB2的LD50為106.1。結(jié)果表明srtA基因缺失后的LM對小鼠的毒力下降了1.63 個(gè)對數(shù)級。

        與分離株LM90SB2相比,缺失株LM90SB2-ΔsrtA在小鼠肝臟、脾臟中載菌量均顯著減少,具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(圖4A和4B),但腦載菌量在感染后第1~3 d的缺失株LM90SB2-ΔsrtA明顯高于分離株LM90SB2,具有極顯著統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),分離株LM90SB2感染3 d后,腦中細(xì)菌數(shù)量出現(xiàn)快速增長,在第4 d分離株LM90SB2高于缺失株LM90SB2-ΔsrtA,具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(圖4C)。結(jié)果表明,srtA基因缺失后細(xì)菌仍然可以感染小鼠并在靶器官中生長繁殖,但是含菌數(shù)量相對分離株發(fā)生了變化,特別是在腦中呈現(xiàn)先升高后下降的趨勢,說明缺失株仍然能穿越血腦屏障,但是srtA基因缺失后影響LM90SB2在腦中的增殖。

        圖4 分離株LM90SB2 (◇WT)和缺失株LM90SB2-ΔsrtA (■ΔsrtA)在感染小鼠4 d內(nèi)肝臟、脾臟、腦中載菌量的變化Fig. 4 Numbers of LM90SB2 (◇WT)and LM90SB2-ΔsrtA (■ΔsrtA) in mice liver, spleen, brain during 4 days

        3 討論

        LM感染一般經(jīng)胃腸道開始,侵入腸上皮細(xì)胞跨越腸道屏障,被單核巨噬細(xì)胞吞噬,隨淋巴系統(tǒng)和血液循環(huán)系統(tǒng)到達(dá)肝臟和脾臟,并在肝細(xì)胞中繁殖,最后通過血液擴(kuò)散到腦和胎盤,引起全身性感染;LM通過內(nèi)化、逃離吞噬泡、利用在宿主細(xì)胞內(nèi)的極向運(yùn)動(dòng)實(shí)現(xiàn)細(xì)胞間直接傳播等方式逃逸宿主的體液免疫應(yīng)答;這些過程涉及LM的多種毒力因子[22-24]。srtA基因編碼的分選酶,可以識別表面蛋白C端分選信號所含的保守氨基酸基序LPXTG,把蛋白錨定到肽聚糖上,呈現(xiàn)在細(xì)菌表面,發(fā)揮毒力作用。

        自1996年以來,中國新疆維吾爾自治區(qū)某些地區(qū)的羊群陸續(xù)爆發(fā)一種以神經(jīng)癥狀為主要特征的疾病,死亡率高達(dá)70%以上,結(jié)合臨床表現(xiàn),經(jīng)病原分離鑒定,確診為單核細(xì)胞增多性李斯特菌引起的綿羊腦炎[17]。構(gòu)建srtA基因缺失株是研究其基因功能的基礎(chǔ),我們通過構(gòu)建LM90SB2-ΔsrtA缺失株,分別在細(xì)胞水平和小鼠水平探討srtA基因在LM分離株LM90SB2毒力發(fā)揮中的作用。通過對不同類型細(xì)胞的粘附、侵襲及胞內(nèi)增殖試驗(yàn)表明,srtA基因缺失可以降低LM90SB2對MBMEC、HBMEC、RAW264.7、SIEC細(xì)胞的粘附、侵襲和胞內(nèi)增殖能力。

        SIEC是豬源腸道上皮細(xì)胞,缺失株LM90SB2-ΔsrtA對SIEC的粘附和侵襲的能力下降,與Garandeau等[25]報(bào)道LM的srtA基因缺失后,對于Caco-2細(xì)胞和HepG-2細(xì)胞的侵襲力降低相一致,表明LM分離株LM90SB2的srtA基因參與細(xì)胞表面蛋白的錨定,但是在SIEC中細(xì)菌數(shù)隨時(shí)間不斷下降,究其原因:可能是細(xì)菌在胞內(nèi)增殖后,造成SEIC的脫落死亡,裂解計(jì)數(shù)前隨細(xì)胞培養(yǎng)液一起棄掉;細(xì)菌在胞內(nèi)增殖后,從細(xì)胞內(nèi)釋放出來被培養(yǎng)液中的慶大霉素抑制;或者是細(xì)菌還沒有在細(xì)胞內(nèi)增殖和細(xì)胞間傳遞,被侵染的細(xì)胞隨時(shí)間逐漸死亡。

        表3 LM分離株LM90SB2和缺失株LM90SB2-ΔsrtA對小鼠LD50測定Table 3 LD50 measurement results of LM90SB2 and LM90SB2-ΔsrtA

        LM分離株粘附和侵襲RAW264.7的能力均高于粘附和侵襲SIEC、MBMEC和HBMEC,這可能與RAW264.7為免疫細(xì)胞,可以通過其表面的PRR受體和TOLL樣受體等增強(qiáng)對LM90SB2細(xì)菌吞噬。LM分離株和缺失株進(jìn)入RAW264.7后均有一定程度的增殖,表明他們具有一定的抗吞噬細(xì)胞消化能力,但是缺失株LM90SB2-ΔsrtA在胞內(nèi)增殖數(shù)量低于分離株LM90SB2,可能與srtA缺失后,一些抗吞噬細(xì)胞消化的蛋白不能表達(dá)在細(xì)胞表面有關(guān)。

        LM能引起腦膜炎和腦炎,其中一種方式是穿越血腦屏障(blood brain barrier,BBB),LM穿越血腦屏障的機(jī)制目前尚不清楚。BBB主要由內(nèi)皮細(xì)胞間緊密連接、星形膠質(zhì)細(xì)胞、周皮細(xì)胞和血管周圍的小膠質(zhì)細(xì)胞以及基膜等結(jié)構(gòu)構(gòu)成。體外血腦屏障研究主要是腦微血管碎段模型、腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞模型、腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞和星形膠質(zhì)細(xì)胞共同培養(yǎng)模型,而培養(yǎng)腦血管內(nèi)皮細(xì)胞是目前國內(nèi)外常用的血腦屏障模型之一[26-27]。LM90SB2能夠粘附、侵襲腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞(brain microvascular endothellal cell,BMEC),并在其中增殖,可能是LM穿越BBB的方式,srtA基因缺失可以降低LM90SB2對BMEC的粘附、侵襲和胞內(nèi)增殖,可見SrtA分選的蛋白參與了對BMEC細(xì)胞的作用。本次試驗(yàn)也發(fā)現(xiàn)LM90SB2對HBMEC和MBMEC的粘附有差異,表明細(xì)菌對腦細(xì)胞的侵染存在種屬特異性,這可能與不同種屬來源細(xì)胞其表面受體不同有關(guān)[26,28-32]。

        LM90SB2-ΔsrtA對小鼠LD50比LM90SB2降低了21.38倍,說明LM90SB2-ΔsrtA的毒力明顯下降,并且在感染后4 d內(nèi),肝臟、脾臟和腦中的載菌量始終低于LM90SB2,表明srtA基因的缺失會影響LM90SB2在各臟器中的增殖。

        本研究結(jié)果表明,srtA基因缺失并沒有使LM90SB2喪失對小鼠的致病性和毒力,可見SrtA分選的蛋白只部分參與了細(xì)菌的致病力。盡管SrtA參與了眾多C端含有分選信號的表面毒力蛋白錨定到細(xì)胞表面的過程,可能細(xì)菌本身還存在其他類似蛋白分擔(dān)SrtA的作用,或是srtA基因缺失后激活了相似蛋白發(fā)揮補(bǔ)償作用,保證其生長,或者是srtA基因缺失后,使得某些蛋白的分泌特點(diǎn)發(fā)生了變化,一些由SrtA轉(zhuǎn)運(yùn)的蛋白,通過其他方式呈現(xiàn)在細(xì)菌表面發(fā)揮了毒力作用。這方面的研究需要我們進(jìn)一步去探索。

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