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        脫氫表雄酮抑制血管內(nèi)膜增生的體內(nèi)研究

        2019-09-02 09:28:56張曼莉張曼娜陳慧趙昆劉芳劉志寬佟飛
        中國循環(huán)雜志 2019年8期
        關(guān)鍵詞:頸動脈內(nèi)膜小鼠

        張曼莉,張曼娜,陳慧,趙昆,劉芳,劉志寬,佟飛

        動脈粥樣硬化(atherosclerosis,AS)時,在炎癥、氧化應(yīng)激等因素作用下,引起內(nèi)皮損傷、單核細胞黏附、脂質(zhì)顆粒聚集、泡沫細胞形成和血管平滑肌細胞(vascular smooth muscle cell,VSMC)增殖、遷移,最終導致血管內(nèi)膜增生和粥樣斑塊的形成[1]。血管內(nèi)膜增生、炎癥與AS、支架術(shù)后再狹窄等血管重構(gòu)性疾病密切相關(guān)。有研究報道,Krüppel樣因子5(Krüppel-like factors 5,KLF5)在血管重構(gòu)性疾病尤其AS中與細胞增殖和炎癥密切相關(guān)[2-3]。脫氫表雄酮(dehydroepiandrosterone,DHEA)是人體血液循環(huán)中最豐富的一種類固醇激素。有研究顯示,DHEA可抑制VSMC增殖,在AS過程中發(fā)揮保護作用[4]。那么,在小鼠內(nèi)皮層完整的血管損傷模型中(如頸動脈結(jié)扎或不完全結(jié)扎),DHEA是否具有抑制內(nèi)膜增生和炎癥的作用目前鮮有報道。本文應(yīng)用小鼠頸動脈結(jié)扎法誘導內(nèi)膜增生模型,觀察DHEA在結(jié)扎誘導的內(nèi)膜增生和局部炎癥應(yīng)答中的抑制作用。

        1 材料與方法

        材料及儀器:DHEA(Abcam公司,英國);鼠抗增殖細胞核抗原(PCNA)單克隆抗體(Abcam公司,英國);鼠抗腫瘤壞死因子-α(TNF-α)單克隆抗體(Abcam公司,英國);鼠抗白細胞介素(IL)-6單克隆抗體(Abcam公司,英國);兔抗KLF5多克隆抗體(GeneTex公司,美國);鼠抗β肌動蛋白(β-actin)多克隆抗體(Santa Cruz公司,美國);總RNA提取試劑盒(OMEGA公司,美國);M-MLV逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(Invitrogen公司,美國);SYBR Green定量PCR(qPCR)kit(Invitrogen公司,美國);核酸定量儀(Eppendorf公司,德國);PCR擴增儀(Eppendorf公司,德國);ABI 7500 Fast實時熒光定量PCR(qRT-PCR)擴增儀(ABI公司,美國);電泳儀(Bio-rad公司,美國);ECL化學發(fā)光儀(Vilber Lourmat 公司,法國)。

        動物分組:30只健康雄性18~20周齡C57BL/6小鼠購買于北京維通利華實驗動物技術(shù)有限公司(合格證編號11400700128532)。所有實驗動物均受到人道對待,實驗方案獲得實驗動物倫理委員會批準。30只小鼠隨機分為對照組、結(jié)扎組和DHEA治療組,每組10只。

        動物模型的建立:按照Kumar等[5]報道的方法建立小鼠頸動脈結(jié)扎模型: C57BL/6小鼠用2 %異氟烷進行吸入性麻醉;固定小鼠于無菌手術(shù)臺上,頸部伸直呈仰臥位,手術(shù)部位皮膚去毛,碘伏局部消毒;用無菌剪沿頸正中線剪開皮膚約0.5 cm,顯微彎鑷鈍性分離甲狀腺和肌肉,從近心端向遠心端鈍性分離并暴露左側(cè)頸總動脈;結(jié)扎組和DHEA治療組在頸外動脈和頸內(nèi)動脈分叉點用無菌手術(shù)線結(jié)扎左側(cè)頸總動脈;對照組僅把無菌手術(shù)線置于左側(cè)頸總動脈分叉點下而不結(jié)扎。手術(shù)傷口用青霉素處理后縫合;術(shù)后將小鼠單籠喂養(yǎng)。對照組和結(jié)扎組于手術(shù)后給予普通飼料。DHEA治療組于手術(shù)后第3天開始每天給予含有DHEA的飼料[0.4% W/W,相當于100 mg/(kg·d)]。術(shù)后第21天處死小鼠,快速分離小鼠結(jié)扎處頸動脈,冷PBS洗凈血液,去除血管外結(jié)締組織。用于蘇木素-伊紅染色的組織,用4%多聚甲醛固定。用于qRT-PCR、蛋白免疫印跡實驗的組織-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>

        蘇木素-伊紅(HE)染色步驟:石蠟切片常規(guī)脫蠟至水;蘇木素染色;1%鹽酸酒精分化;伊紅染色;梯度乙醇脫水,二甲苯透明,中性樹膠封片;鏡下觀察、照相,Image-Pro Plus Analyzer version 5.1軟件(美國)測量并計算頸動脈內(nèi)膜面積和內(nèi)膜/中膜面積(I/M)比值。

        RNA提取和qRT-PCR:取出凍存的血管組織,用Trizol法提取總RNA,核酸定量儀檢測RNA的純度和濃度。按照美國Invitrogen公司“用于qRT-PCR的M-MLV第一鏈合成系統(tǒng)”操作說明,取1~3 μg總RNA建立20 μg逆轉(zhuǎn)錄體系合成互補DNA(cDNA)。然后用美國Invitrogen公司的“Platinum SYBR Green qPCR Super Mix-UDG with ROX”試劑盒和ABI 7500 Fast qRT-PCR擴增儀進行熒光擴增。相對定量的方法采用比較Ct法,以甘油醛-3-磷酸脫氫酶(GAPDH)為內(nèi)參,采用△Ct(Ct目的-Ct內(nèi)參)法進行相對定量分析,以2-△Ct作為目的RNA的相對表達量。引物序列見表1。

        蛋白免疫印跡實驗分析:提取各組小鼠組織總蛋白,用改良的Lowry法進行蛋白定量。取等量蛋白樣品進行十二烷基硫酸鈉(SDS)-聚丙烯酰胺凝膠電泳,之后進行半干轉(zhuǎn)膜。轉(zhuǎn)膜完畢,取出聚偏二氟乙烯(PVDF)膜,放置在含5 %脫脂奶粉的Tween 20/TBS(TBST)封閉液中,于室溫封閉2 h后,將封閉后的PVDF膜用TBST適當漂洗,然后放入用一抗稀釋液稀釋的一抗中,4℃放置過夜。次日,取出PVDF膜用TBST適當漂洗,將PVDF膜置入用適當TBST稀釋的化學發(fā)光二抗中,室溫反應(yīng)2 h,取出PVDF膜用TBST適當漂洗。最后用化學發(fā)光儀檢測抗體特異結(jié)合條帶。信號強度用Image J軟件進行相對定量分析。用Graph Pad Prism 5軟件作圖。

        統(tǒng)計學方法:采用SPSS 13.0軟件進行統(tǒng)計學處理分析,計量資料均經(jīng)正態(tài)性及方差齊性檢驗,數(shù)據(jù)以均數(shù)±標準差(±s)表示,兩組之間均數(shù)的統(tǒng)計學差異采用Student's t檢驗分析。P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

        2 結(jié)果

        三組小鼠頸動脈的形態(tài)學分析結(jié)果(圖1、表2):結(jié)扎組與對照組相比,頸動脈內(nèi)膜面積[(4.05±0.26)×104μm2vs (0.47±0.05)×104μm2]顯 著 增 大,I/M比 值(2.85±0.19 vs 0.14±0.02)顯著升高;DHEA治療組與結(jié)扎組相 比,內(nèi) 膜 面 積[(1.16±0.17)×104μm2vs(4.05±0.26)×104μm2]減小,I/M比值(0.78±0.15 vs 2.85±0.19)明顯降低;上述組間差異均有統(tǒng)計學意義(P均<0.05)。

        三組小鼠頸動脈組織中PCNA的mRNA和蛋白表達情況(表3、圖2):結(jié)扎組與對照組相比,頸動脈組織中PCNA的mRNA(2.96±0.07 vs 1.00±0.01)和蛋白(3.21±0.22 vs 1.00±0.01)表達水平明顯升高;DHEA治療組與結(jié)扎組相比,頸動脈組織中PCNA的mRNA(1.42±0.09 vs 2.96±0.07)和蛋白(1.39±0.19 vs 3.21±0.22)表達水平顯著降低;上述組間差異均有統(tǒng)計學意義(P均<0.05)。

        圖1 三組小鼠頸動脈的蘇木素-伊紅染色結(jié)果(×10)

        表2 三組小鼠頸動脈內(nèi)膜面積和內(nèi)膜/中膜面積比值(n=10,

        表2 三組小鼠頸動脈內(nèi)膜面積和內(nèi)膜/中膜面積比值(n=10,

        注:與對照組比較*P<0.05;與結(jié)扎組比較△P<0.05

        項目 對照組 結(jié)扎組 DHEA治療組內(nèi)膜面積(×104 μm2) 0.47±0.05 4.05±0.26* 1.16±0.17△內(nèi)膜/中膜面積比值 0.14±0.02 2.85±0.19* 0.78±0.15△

        表3 三組小鼠頸動脈組織中PCNA的mRNA表達水平(n=10,

        表3 三組小鼠頸動脈組織中PCNA的mRNA表達水平(n=10,

        注:PCNA:增殖細胞核抗原;mRNA:信使RNA;DHEA:脫氫表雄酮。與對照組比較*P<0.05;與結(jié)扎組比較△P<0.05

        PCNA mRNA表達水平 1.00±0.01 2.96±0.07* 1.42±0.09△

        圖2 三組小鼠頸動脈組織中PCNA蛋白電泳結(jié)果(2A) 和表達水平(2B)

        三組小鼠頸動脈組織中TNF-α和IL-6的mRNA和蛋白表達情況(表4、圖3):結(jié)扎組與對照組相比,頸動脈組織中TNF-α的mRNA(3.05±0.09 vs 1.00±0.01)和蛋白(3.75±0.30 vs 1.00±0.01)表達水平顯著升高,IL-6的mRNA(2.79±0.07 vs 1.00±0.01)和蛋白(3.01±0.28 vs 1.00±0.01)表達水平也顯著升高,差異均有統(tǒng)計學意義(P均<0.05)。DHEA治療組與結(jié)扎組相比,頸動脈組織中TNF-α的mRNA(1.28±0.08 vs 3.05±0.09)和蛋白(1.49±0.26 vs 3.75±0.30)表達水平明顯降低,IL-6的mRNA(1.31±0.09 vs 2.79±0.07)和蛋白(1.24±0.19 vs 3.01±0.28)表達水平也明顯降低,差異均有統(tǒng)計學意義(P均<0.05)。

        表4 三組小鼠頸動脈組織中TNF-α和IL-6的mRNA表達水平(n=10,

        表4 三組小鼠頸動脈組織中TNF-α和IL-6的mRNA表達水平(n=10,

        注:TNF-α:腫瘤壞死因子-α;IL-6:白細胞介素-6;mRNA:信使RNA;DHEA:脫氫表雄酮。與對照組比較*P<0.05;與結(jié)扎組比較△P<0.05

        TNF-α mRNA表達水平 1.00±0.01 3.05±0.09* 1.28±0.08△IL-6 mRNA表達水平 1.00±0.01 2.79±0.07* 1.31±0.09△

        圖3 三組小鼠頸動脈組織中TNF-α和IL-6蛋白電泳結(jié)果(3A) 和表達水平(3B)

        三組小鼠頸動脈組織中KLF5的mRNA和蛋白表達情況(表5、圖4):結(jié)扎組與對照組相比,頸動脈組織中KLF5的mRNA(2.64±0.07 vs 1.00±0.01)和蛋白(3.89±0.34 vs 1.00±0.01)表達水平顯著升高,分別升高約2.6倍和3.9倍,差異均有統(tǒng)計學意義(P均<0.05);DHEA治療組與結(jié)扎組相比,頸動脈組織中KLF5的mRNA(1.38±0.06 vs 2.64±0.07)和蛋白(1.67±0.21 vs 3.89±0.34)表達明顯降低,差異均有統(tǒng)計學意義(P均<0.05)。

        表5 三組小鼠頸動脈組織中KLF5的mRNA表達水平(n=10

        表5 三組小鼠頸動脈組織中KLF5的mRNA表達水平(n=10

        注:KLF5:Krüppel樣因子5;mRNA:信使RNA;DHEA:脫氫表雄酮。與對照組比較*P<0.05;與結(jié)扎組比較△P<0.05

        KLF5 mRNA表達水平 1.00±0.01 2.64±0.07* 1.38±0.06△

        注:DHEA:脫氫表雄酮;KLF5:Krüppel樣因子5;β-actin:β肌動蛋白。與對照組比較*P<0.05;與結(jié)扎組比較△P<0.05

        3 討論

        心腦血管疾病是當今社會威脅人類健康的主要疾病之一,其發(fā)病率和死亡率呈逐年升高趨勢[6]。病理性血管重構(gòu)可導致多種血管疾?。òˋS、高血壓、動脈瘤等)發(fā)生、發(fā)展,其中AS是心腦血管疾病的主要病理基礎(chǔ)。在AS的發(fā)生、發(fā)展和并發(fā)癥發(fā)生中,局部和全身的炎癥以及細胞增殖起著重要作用。AS形成的最早期表現(xiàn)為脂質(zhì)條紋形成:內(nèi)皮細胞導致的特異性黏附分子表達引起白細胞趨化,趨化的單核細胞或巨噬細胞觸發(fā)產(chǎn)生IL-1、TNF-α和IL-6等炎癥因子。炎癥細胞遷移到內(nèi)皮下引起上述細胞因子釋放,刺激VSMC增殖,引起斑塊進展,導致管腔狹窄、斑塊破裂、血栓形成[7-8]。研究表明,抑制反映細胞增殖狀態(tài)的增殖相關(guān)基因(PCNA)和炎癥相關(guān)基因(IL-1β、IL-6)的表達可阻止AS的發(fā)生、發(fā)展[8-9]。盡管有諸多關(guān)于AS的研究,但迄今為止,AS的發(fā)病機制仍不完全清楚。由于內(nèi)膜增生和炎癥在AS發(fā)生和發(fā)展中起重要作用,因此研究具有抑制血管內(nèi)膜增生和炎癥雙重作用的藥物就更加讓人期待。

        KLF家族中的KLF5在不同組織中廣泛表達,是一種促細胞增殖的轉(zhuǎn)錄因子,在血管重構(gòu)中發(fā)揮重要作用。研究發(fā)現(xiàn),在腫瘤發(fā)育和AS形成過程中,KLF5可以促進細胞增殖[10-11]。此外,KLF5與炎癥也密不可分。前期體內(nèi)和體外研究發(fā)現(xiàn),在血管重構(gòu)過程中,高糖通過上調(diào)KLF5的表達,進而促進TNF-α等炎癥基因表達[12]。Chen等[13]的研究也證明了KLF5可促進炎癥因子的表達。由此可見,無論在腫瘤還是AS的發(fā)生、發(fā)展過程中,KLF5與細胞增殖和炎癥都密切相關(guān)。因此,研發(fā)一種可以抑制KLF5表達、同時抑制細胞增殖和炎癥的藥物,將為AS的預防和治療提供新的思路。

        DHEA是成年人體內(nèi)循環(huán)中最豐富的甾體激素,主要以脫氫表雄酮硫酸酯(DHEA-S)的形式進入血液循環(huán)中,在外周組織中轉(zhuǎn)化為雄激素或雌激素發(fā)揮間接生物學效應(yīng)。流行病學研究表明,血漿DHEA-S水平與AS發(fā)病率、心血管疾病全因死亡風險以及致死性、非致死性心血管事件的發(fā)生率呈負相關(guān),在男性中尤為突出[14-15]。有研究發(fā)現(xiàn),DHEA通過抗細胞增殖來治療肺動脈高壓[16]。那么,DHEA在AS形成過程中能否抑制血管重構(gòu)以及如何發(fā)揮抑制作用?DHEA是否具有抑制增殖相關(guān)基因(PCNA)和炎癥相關(guān)基因(TNF-α和IL-6)的表達而發(fā)揮抑制血管內(nèi)膜增生和炎癥雙重作用?結(jié)合本課題組前期研究結(jié)果,DHEA能否影響有促細胞增殖、促炎作用的KLF5的表達?為了研究這些問題,本研究采用了雄性小鼠頸動脈結(jié)扎的血管內(nèi)膜增生模型,觀察DHEA對增殖相關(guān)基因(PCNA)、炎癥相關(guān)基因(TNF-α和IL-6)和KLF5表達的影響,探討DHEA對血管內(nèi)膜增生、血管炎癥和KLF5的作用。結(jié)果顯示,形態(tài)學觀察到DHEA可明顯抑制血管內(nèi)膜增生,在mRNA和蛋白質(zhì)水平,DHEA顯著抑制增殖相關(guān)基因(PCNA)、炎癥相關(guān)基因(TNF-α和IL-6)和KLF5的表達,證明了DHEA具有抑制血管增生和炎癥的雙重作用。由此推測,DHEA發(fā)揮抑制血管內(nèi)膜增生和炎癥因子的表達可能一定程度上是通過抑制KLF5的表達來實現(xiàn)的,但DHEA是直接還是間接發(fā)揮此作用,以及其中具體的分子機制,尚需進一步的研究來證實。

        綜上所述,我們通過小鼠體內(nèi)研究發(fā)現(xiàn),DHEA能夠抑制血管內(nèi)膜增生和炎癥因子的表達,DHEA還可以抑制轉(zhuǎn)錄因子KLF5的表達。因此推測,DHEA發(fā)揮抑制AS的作用一定程度上是通過抑制有促細胞增殖和促炎作用的KLF5來實現(xiàn)的。本研究為揭示DHEA抑制AS的發(fā)生機制,為防治AS提供了新的思路。

        利益沖突:所有作者均聲明不存在利益沖突

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