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        羧基化多壁碳納米管凈化-氣相色譜/質(zhì)譜聯(lián)用技術(shù)測定土壤中18種多氯聯(lián)苯

        2019-08-30 08:35:36劉騰飛楊代鳳孫靈湘董明輝
        分析科學(xué)學(xué)報 2019年4期
        關(guān)鍵詞:正己烷提取液吸附劑

        "劉騰飛,楊代鳳,范 君,毛 健,孫靈湘,董明輝

        (江蘇太湖地區(qū)農(nóng)業(yè)科學(xué)研究所,江蘇蘇州215155)

        多氯聯(lián)苯(Polychlorinated Biphenyls,PCBs)是環(huán)境中存在的一類典型的持久性有機(jī)污染物,其具有高毒、難降解、易遷移和生物累積等特性,雖然在全球范圍內(nèi)禁用多年,但在多種環(huán)境介質(zhì)[1-3]中仍廣泛檢出。土壤是環(huán)境中PCBs最重要的賦存介質(zhì),土壤中的PCBs可通過食物鏈傳遞和富集,經(jīng)飲食攝入等途徑進(jìn)入生物體內(nèi)產(chǎn)生毒害作用。因此,建立快速、準(zhǔn)確地檢測土壤中PCBs的方法,對于保護(hù)環(huán)境和農(nóng)產(chǎn)品安全具有重要意義。

        氣相色譜/質(zhì)譜法(GC/MS)[1,4-6]是目前測定土壤中PCBs最常用的方法。但土壤基體復(fù)雜,當(dāng)待測物PCBs含量較低時,提取液中的雜質(zhì)對待測物的測定干擾極大,因此必須對土壤提取液進(jìn)行凈化處理?,F(xiàn)有凈化技術(shù)[5-9]大多操作繁瑣、速度慢、效率低,影響樣品檢測的時效性。多壁碳納米管(MWCNTs)是一種具有大比表面積和較強(qiáng)吸附性能的納米碳材料,近年來作為一種理想的凈化材料而被廣泛應(yīng)用[10],尤其是經(jīng)過羧基化改性后,其比表面積和分散性增加,吸附能力增大,目前在農(nóng)藥[11]、獸藥[12]、抗生素[13]等有害物質(zhì)的殘留檢測中得到良好應(yīng)用。本文作者[14-15]前期將羧基化多壁碳納米管(MWCNTs-COOH)與N-丙基乙二胺(PSA)聯(lián)用,成功用于茶葉及茶青樣品中PCBs檢測的凈化過程,獲得了優(yōu)異的凈化效果,但對于土壤中PCBs檢測的研究尚未見報道。因此,本文利用MWCNTs-COOH作為吸附材料,基于分散固相萃?。―SPE)技術(shù),建立了一種快速、準(zhǔn)確地同時測定土壤中18種PCBs的GC/MS方法,該方法前處理簡單,凈化效果好,為土壤中PCBs污染物的監(jiān)測提供了一種新方法。

        1 實驗部分

        1.1 儀器、試劑與材料

        7890B-5977A氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀(美國,Agilent);KQ-500DE超聲波清洗器(昆山超聲儀器公司);TG16-WS臺式高速離心機(jī)(湖南湘儀實驗儀器公司);K600粉碎機(jī)(德國,博朗);HSC-24B氮吹儀(天津恒奧科技公司);Direct-Q 5UV型超純水機(jī)(美國,Millipore)。

        18種PCBs混合標(biāo)準(zhǔn)貯備溶液:PCB28、PCB52、PCB101、PCB118、PCB153、PCB138、PCB180、PCB81、PCB77、PCB123、PCB114、PCB105、PCB126、PCB167、PCB156、PCB157、PCB169、PCB189(質(zhì)量濃度均為10mg/L,美國o2si)。標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制:準(zhǔn)確吸取10mg/L的18種PCBs混合標(biāo)準(zhǔn)溶液1mL,置于10mL容量瓶中,用正己烷定容,配成1mg/L的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,于4℃冰箱冷藏保存;使用前,取出放至室溫后,用正己烷逐級稀釋成5、10、50、100和500μg/L的混合標(biāo)準(zhǔn)工作溶液。基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制:稱取空白試樣,按照最優(yōu)化提取凈化條件處理后,上機(jī)樣液用氮氣吹干,加入1.0mL不同濃度的混合標(biāo)準(zhǔn)工作溶液,振蕩混勻,過0.22μm有機(jī)濾膜,得到對應(yīng)濃度的基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)溶液。

        羧基化多壁碳納米管(長度:10~30μm,外徑:10~20nm,內(nèi)徑:5~10nm,純度:>95%,比表面積:>200m2/g),N-丙基乙二胺(PSA,粒度40~60μm),石墨化碳黑(GCB,粒度40~120μm),十八烷基鍵合硅膠(C18,粒度40~60μm)(南京先豐納米材料科技有限公司);正己烷(色譜純,瑞典歐普森);丙酮,甲苯(分析純,上海國藥集團(tuán));無水Na2SO4(分析純),使用前于450℃下灼燒4h;無水MgSO4(分析純),使用前于620℃下灼燒4h。實驗用水為超純水。

        1.2 樣品制備及前處理

        在當(dāng)?shù)啬侈r(nóng)產(chǎn)品(蔬菜、水稻、小麥)生產(chǎn)基地,采集縱向深度為0~15cm的表層土壤樣品。將土樣除去草根、石塊等雜物,在干燥通風(fēng)自然條件下陰干,干燥后的土壤經(jīng)四分法縮分,過2mm篩,取一定量裝入自封袋中密封,于陰涼干燥條件下儲存。稱取2.0g土壤樣品于50mL塑料離心管中,加水0.5mL,渦旋混勻,浸潤,加入1g無水Na2SO4和5mL丙酮-正己烷(1∶1,V/V)提取液,渦旋混勻,在500W功率下超聲提取15min,期間取出振搖2次,8 000r/min離心4min,取2.5mL上清液至試管中,氮吹至近干,加入甲苯5mL,渦旋混勻,待凈化。向待凈化液中加入0.02g MWCNTs-COOH和0.1g無水MgSO4,渦旋2min,以9 000r/min離心5min,取上清液氮吹至近干,加入1.0mL正己烷,渦旋混勻,過0.22μm有機(jī)膜,待測。

        1.3 儀器條件

        色譜條件:HP-5MS石英毛細(xì)管柱(30m×0.25mm×0.25μm);進(jìn)樣口溫度250℃;載氣為高純氮氣;恒流模式,流速1.2mL/min;不分流進(jìn)樣;進(jìn)樣量1.0μL。升溫程序:初溫80℃,保持2min;以20℃/min升溫至180℃,保持2min;再以3℃/min升溫至230℃,保持2min;再以10℃/min升溫至280℃,保持2min。

        質(zhì)譜條件:電子轟擊(EI)離子源,電離能量70eV,離子源溫度280℃,四極桿溫度150℃,傳輸線溫度280℃,檢測方式:選擇離子掃描(SIM),溶劑延遲5min。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 儀器條件的優(yōu)化

        實驗根據(jù)18種PCBs的極性,選用弱極性、低流失的HP-5MS毛細(xì)管柱進(jìn)行色譜分離,并根據(jù)靈敏度和分析時間,通過優(yōu)化色譜升溫程序、載氣流速、進(jìn)樣口溫度等參數(shù),最終確定1.3色譜條件。在選定的色譜條件下,利用GC/MS全掃描方式,在m/z50~450范圍內(nèi)對500μg/L的PCBs混合標(biāo)液進(jìn)行分析,得到總離子流(TIC)色譜圖,根據(jù)TIC譜圖通過NIST標(biāo)準(zhǔn)譜庫檢索,確定各目標(biāo)物的保留時間,并在扣除背景后的質(zhì)譜圖中,選擇豐度高、m/z大且基質(zhì)干擾少的特征離子,分時段分別監(jiān)測。18種PCBs的保留時間、特征離子及其豐度比參見文獻(xiàn)[15]。最優(yōu)條件下的GC-MS色譜圖見圖1。

        2.2 提取條件的優(yōu)化

        2.2.1 提取溶劑的選擇 PCBs為弱極性的疏水物質(zhì),根據(jù)相似相溶原理,采用正己烷為提取溶劑比較理想,加入適量丙酮對樣品有一定的滲透作用,有助于提高提取效率。由于土壤樣品含水分少,提取溶劑不易滲透,實驗在10μg/kg加標(biāo)水平下,首先比較了加水與不加水對18種PCBs提取效果的影響。結(jié)果(圖2)顯示,土壤在不加水的情況下,18種待測物的回收率為88.9%~97.3%,加入0.5mL水浸潤后,回收率可提高至93.1%~109.1%,表明土壤加水浸潤后,能在一定程度上改善提取效果,因此實驗中將土壤樣品加水浸潤后再進(jìn)行提取。在此條件下,分別以丙酮-正己烷(0∶1、1∶1、1∶2)作為提取溶劑考察對待測物的提取效率。結(jié)果(圖3)表明,以丙酮-正己烷(0∶1)為提取溶劑時,待測物的提取效率較差,回收率均低于15%;以丙酮-正己烷(1∶1)為提取溶劑時,待測物的提取效率最佳,回收率為94.7%~109.3%,優(yōu)于丙酮-正己烷(1∶2)為提取溶劑時的回收率(88.0%~99.5%)。故選擇丙酮-正己烷(1∶1)作為最佳提取溶劑。

        在此基礎(chǔ)上,考察了不同體積(5、8、10、12、15mL)提取溶劑對待測物提取回收率的影響。結(jié)果顯示,當(dāng)提取溶劑體積為5mL時,所有待測物均可達(dá)到較好的提取效果,回收率為92.5%~108.0%,因此實驗選擇5mL作為最佳提取溶劑體積。

        圖1 18種PCBs標(biāo)準(zhǔn)溶液(10μg/L)的選擇離子色譜圖Fig.1 SIM chromatogram of 18PCBs(10μg/L)standard solution1.PCB28;2.PCB52;3.PCB101;4.PCB81;5.PCB77;6.PCB123;7.PCB118;8.PCB114;9.PCB153;10.PCB105;11.PCB138;12.PCB126;13.PCB167;14.PCB156;15.PCB157;16.PCB180;17.PCB169;18.PCB189.

        圖2 加水與否對土壤中18種PCBs加標(biāo)回收率的影響Fig.2 Effect of water added or not on recoveries of 18 PCBs spiked in soil

        圖3 不同提取溶劑對18種PCBs提取回收率的影響Fig.3 Effect of different extraction solvents on recoveries of 18PCBs

        2.2.2 提取方法的選擇 實驗采用超聲提取方法提取土壤中的18種待測物,并在10μg/kg加標(biāo)水平下,考察了超聲提取時間(5、10、15、20min)對待測物提取效率的影響。結(jié)果顯示,當(dāng)超聲提取時間為5min時,18種待測物的回收率為61.5%~72.3%,回收率隨著超聲提取時間的增加而增大,當(dāng)超聲提取時間為15min和20min時,待測物的回收率分別為94.0%~104.3%和96.9%~106.4%。綜合考慮回收率和分析時間,實驗選擇超聲提取時間為15min。

        2.3 凈化條件的選擇

        2.3.1 吸附劑種類和用量 實驗選擇MWCNTs-COOH、GCB、C18和PSA為DSPE吸附劑,分別對加標(biāo)濃度10μg/kg的土壤提取液進(jìn)行凈化,比較4種吸附劑的凈化效果。從凈化液顏色來看,經(jīng)過超聲提取后,土壤提取液呈淺黃色,經(jīng)MWCNTs-COOH吸附劑凈化后呈無色透明狀態(tài),經(jīng)其余吸附劑凈化后,溶液仍具有一定顏色;從回收率來看,以C18和PSA為吸附劑,18種待測物的回收率分別為80.2%~113.1%和80.9%~105.3%,而以MWCNTs-COOH和GCB為吸附劑,大多數(shù)待測物的回收率較差,低于70%,其中PCB81、PCB77、PCB126、PCB169 4種待測物的回收率均為0,這是由于2種吸附劑對平面結(jié)構(gòu)分子具有極強(qiáng)的親和力[16],而本研究中18種待測物分子因含有平面苯環(huán)而被吸附,從而導(dǎo)致回收率偏低。實驗在提取后濃縮過程中,以甲苯對提取劑丙酮-正己烷(1∶1)進(jìn)行溶劑置換后再凈化,發(fā)現(xiàn)待測物的回收率得到了明顯提高,分別為91.9%~100.2%和88.9%~104.9%,說明加入甲苯通過競爭關(guān)系改善了2種吸附劑對平面結(jié)構(gòu)分子的吸附。進(jìn)一步考察了甲苯用量(2、3、4、5、6mL)對待測物回收率的影響。結(jié)果顯示,隨著甲苯用量的增加,待測物的回收率呈增大趨勢,當(dāng)其用量為5mL時回收率分別為93.0%~105.5%和97.8%~109.2%,繼續(xù)增大甲苯用量至6mL時,回收率變化不大,因此選擇甲苯的最佳用量為5mL。綜合凈化效果和回收率因素,實驗選擇MWCNTs-COOH為最佳吸附劑。

        在10μg/kg加標(biāo)水平下,比較了不同 MWCNTs-COOH 用量(0.01、0.02、0.03、0.04g)對18種待測物回收率的影響。結(jié)果顯示,MWCNTs-COOH對土壤提取液凈化效果顯著,隨著其用量的增大,提取液顏色逐漸變淺,但部分待測物因被吸附劑吸附,造成回收率下降。當(dāng)其用量為0.02g時,提取液趨于澄清透明,且所有待測物回收率均在91.9%~109.3%之間。因此,選擇MWCNTs-COOH的最佳用量為0.02g。

        圖4為土壤提取液未經(jīng)凈化和經(jīng)0.02g MWCNTs-COOH凈化后的GC-MS色譜圖。結(jié)果顯示,MWCNTs-COOH可有效除雜,樣品凈化效果較好。

        2.3.2 凈化時間的選擇 實驗在10μg/kg加標(biāo)水平下,按1.3.3方法,設(shè)置渦旋凈化時間分別為1、2、3、4min,考察凈化劑作用時間對待測物凈化效率的影響。結(jié)果(圖5)顯示,當(dāng)凈化時間為2min時,18種待測物的凈化效率最好,回收率為98.1%~109.3%。繼續(xù)延長凈化時間,部分待測物被吸附劑吸附,導(dǎo)致回收率下降。故選擇最佳吸附凈化時間為2min。

        圖4 土壤提取液未經(jīng)凈化(b)和經(jīng) MWCNTs-COOH凈化(a)后的色譜圖Fig.4 Chromatograms of soil extraction unpurified and purified with MWCNTs-COOH

        圖5 凈化時間對土壤中18種PCBs加標(biāo)回收率的影響Fig.5 Effect of cleanup time on recoveries of 18PCBs spiked in soil

        2.4 基質(zhì)效應(yīng)

        實驗以基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線斜率與純?nèi)軇?biāo)準(zhǔn)曲線斜率比值評判基質(zhì)效應(yīng)的程度[17]:比值>1,表明存在基質(zhì)增強(qiáng)效應(yīng);比值<1,存在基質(zhì)抑制效應(yīng);比值越接近1,則基質(zhì)效應(yīng)越小;當(dāng)比值遠(yuǎn)離1,表明存在明顯的基質(zhì)效應(yīng)。表1結(jié)果顯示,18種待測物的標(biāo)準(zhǔn)曲線斜率比值均>1,表明存在基質(zhì)增強(qiáng)效應(yīng)。為降低基質(zhì)效應(yīng)給結(jié)果帶來的誤差,本方法在實際土壤樣品檢測中采用基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行定量。

        2.5 線性范圍、檢出限和定量限

        配制質(zhì)量濃度為5、10、50、100、500μg/kg的基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)工作溶液分別進(jìn)行測定,以各PCBs定量離子的峰面積(y)對其質(zhì)量濃度(x)繪制基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線,結(jié)果見表1。結(jié)果顯示,18種待測物在5~500μg/kg范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,相關(guān)系數(shù)不低于0.9998。以最低加標(biāo)水平樣品色譜圖的3倍信噪比(S/N)和10倍S/N確定方法的檢出限(LOD)和定量限(LOQ)分別為0.5~1.4μg/kg和1.6~4.4μg/kg,見表1。

        表1 18種PCBs的回歸方程、相關(guān)系數(shù)、線性范圍、基質(zhì)效應(yīng)、檢出限和定量限Table 1 Regression equations,correlation coefficients(r),linear ranges,matrix effects,limits of detection(LOD)and limits of quantitation(LOQ)for 18PCBs

        (續(xù)表1)

        2.6 回收率與精密度

        稱取空白土壤樣品,按5、10、100μg/kg 3個添加水平進(jìn)行加標(biāo)回收實驗,每個水平做6次平行,采用本方法進(jìn)行前處理和測定,計算加標(biāo)回收率和相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)。結(jié)果顯示,在3個加標(biāo)水平下,18種待測物的平均回收率為90.1%~111.7%,RSD為1.2%~15.3%(表2),表明該方法穩(wěn)定、可靠。

        表2 18種PCBs在土壤中的加標(biāo)回收率及相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(n=6)Table 2 Average recoveries and relative standard deviations(RSDs)of 18PCBs in spiked soil samples(n=6)

        2.7 與文獻(xiàn)方法的比較

        將本方法與文獻(xiàn)報道的方法[11-14,31]從樣品處理時間、試劑用量、準(zhǔn)確性、檢出限等方面進(jìn)行比較,結(jié)果見表3。與其他方法相比,本方法具有前處理時間短、溶劑消耗少、操作簡單、快速等優(yōu)點,因此可作為土壤中PCBs快速檢測的有效方法。

        表3 本方法與文獻(xiàn)方法對土壤中PCBs檢測結(jié)果的比較Table 3 Comparison of this method with other methods reported in the literatures for the determination of PCBs in soil

        2.8 實際樣品分析

        采用該方法對當(dāng)?shù)剞r(nóng)產(chǎn)品生產(chǎn)基地182個土壤樣品進(jìn)行分析。在被檢測的土壤樣品中,有9.9%(18個)的土壤樣品檢出PCBs,含量在4.6~22.7μg/kg之間,遠(yuǎn)高于我國背景地區(qū)/農(nóng)村中PCBs的土壤背景值(0.424μg/kg)[18],其中有55.6%(10個)的土壤樣品中PCBs含量在5.8~22.7μg/kg之間,高于全球土壤背景值(5.41μg/kg)[19]。由于PCBs可通過食物鏈威脅人體健康,因此該地區(qū)產(chǎn)地土壤中PCBs污染問題應(yīng)引起重視。

        3 結(jié)論

        本文建立了測定土壤中18種PCBs的分散固相萃取凈化及GC/MS檢測方法。土壤基質(zhì)復(fù)雜,含有較多的干擾雜質(zhì),經(jīng)優(yōu)化試驗,樣品經(jīng)丙酮-正己烷(1∶1)超聲波提取,甲苯溶劑置換后,采用 MWCNTs-COOH DSPE凈化,獲得了較好的提取效率和凈化效果,18種待測物的加標(biāo)回收率在90.1%~111.7%之間,RSD(n=6)低于15.3%,LOD為0.5~1.4μg/kg,LOQ為1.6~4.4μg/kg。該方法操作簡單,凈化效果好,準(zhǔn)確度高,穩(wěn)定性好,為開展土壤中PCBs的檢測分析提供了有效方法。

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