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        除膻菌株分離鑒定及其對(duì)膻味脂肪酸降解能力的研究

        2019-08-30 02:21:34李秋桐母應(yīng)春
        中國釀造 2019年8期
        關(guān)鍵詞:辛酸氏菌乙基

        李秋桐,母應(yīng)春,蘇 偉*

        (1.貴州大學(xué) 釀酒與食品工程學(xué)院,貴州 貴陽 550025;2.貴州省農(nóng)畜產(chǎn)品貯藏與加工重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,貴州 貴陽 550025)

        羊肉是一種藥食兼用的肉類食品,自古以來我國乃至世界人民就有食用羊肉的習(xí)慣。羊肉含豐富的動(dòng)物蛋白,其消化率亦高,一些國家把羊肉列為上等食品[1]。羊肉不僅營養(yǎng)豐富,而且具有特殊的風(fēng)味。羊肉的風(fēng)味是由美拉德(Maillard)反應(yīng)、脂質(zhì)降解、硫胺素降解及其交互的一系列復(fù)雜反應(yīng)形成[2],但羊肉膻味在一定程度上影響了羊肉的品質(zhì),降低了人們對(duì)羊肉的可接受程度。WONGE等[3]研究發(fā)現(xiàn),羊肉的這種特征風(fēng)味物質(zhì)主要來源于脂肪組織中由8~10個(gè)碳原子組成的不飽和脂肪酸。尤其是4-甲基辛酸和4-乙基辛酸,是引起膻味的主要支鏈脂肪酸。BERUNAND CP等[4]研究證明了4-乙基辛酸是形成山羊膻味的主要化合物。

        目前,國內(nèi)的除膻方法有民間中草藥脫膻和高溫加熱法等,同時(shí)開發(fā)了β-環(huán)狀糊精包埋法及自來水漂洗法[5]。目前微生物除膻技術(shù)得到很多學(xué)者的關(guān)注,其主要是利用有針對(duì)性的發(fā)酵制劑對(duì)羊肉進(jìn)行發(fā)酵處理,以達(dá)到除膻的目的。近幾年國內(nèi)許多學(xué)者運(yùn)用發(fā)酵菌株制成發(fā)酵混合制劑,發(fā)酵過程中,微生物釋放的脂肪酶及蛋白酶類對(duì)羊肉的低級(jí)揮發(fā)性脂肪酸產(chǎn)生作用,降低了羊肉制品的膻味[6],為發(fā)酵制品提供了特殊風(fēng)味和色澤,且不會(huì)破壞羊肉制品的品質(zhì)。穆莎茉莉[7]選用乳酸菌和酵母菌作為發(fā)酵劑,對(duì)羊肉進(jìn)行發(fā)酵處理,羊肉的感官品質(zhì)較好,且膻味較小。趙麗華[8]以內(nèi)蒙古羊肉和羊尾脂肪作為原料,接種由產(chǎn)香肉葡萄球菌(Staphylococcuscarnosus)、戊糖乳桿菌(Lactobacillus pentosus)和戊糖片球菌(Pediococcus pentosaceus)復(fù)合而成的發(fā)酵劑制成干香腸,發(fā)酵后的香腸在組織狀態(tài)、多汁性、滋味和整體可接受性上的感官評(píng)分明顯增加,其膻味下降也較明顯。

        目前微生物除膻是國內(nèi)除膻技術(shù)中相對(duì)較好的一種方法,但是要選擇合適的菌株一直是一個(gè)難題。實(shí)驗(yàn)將培養(yǎng)基中的橄欖油替換成羊油,將乳化后的羊油和熒光指示劑加入到篩選平板中,篩選出作用于羊油脂的菌株,通過形態(tài)學(xué)、生化實(shí)驗(yàn)及16S rRNA基因序列和轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)(internal transcribed spacer,ITS)基因序列鑒定,然后將鑒定出的菌株作為發(fā)酵劑,通過液態(tài)發(fā)酵實(shí)驗(yàn)分析其對(duì)4-甲基辛酸和4-乙基辛酸的降解作用,為微生物除膻技術(shù)提供一定的理論指導(dǎo)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        1.1.1 材料

        火腿:貴州盤縣某企業(yè);土壤:貴州某羊養(yǎng)殖場(chǎng)?;鹜群屯寥啦苫睾笥脽o菌袋密封,于4℃條件下保存。

        1.1.2 試劑

        4-甲基辛酸標(biāo)準(zhǔn)液(純度≥98.0%)、4-乙基辛酸標(biāo)準(zhǔn)液(純度≥98.0%):美國Sigma公司;甲醇、正己烷(均為色譜純):美國天地有限公司;氫氧化鉀(分析純):成都金山化學(xué)試劑有限公司;濃硫酸(分析純):重慶川東化工有限公司。

        1.1.3 培養(yǎng)基

        富集培養(yǎng)基和初篩培養(yǎng)基:參照參考文獻(xiàn)[9]并稍作修改。用2 g/100m L的聚乙烯醇乳化羊油,羊油∶聚乙烯醇=1∶4(g∶g)。

        細(xì)菌保藏培養(yǎng)基:參照參考文獻(xiàn)[10];真菌保藏培養(yǎng)基:馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potato dextroseagar,PDA)培養(yǎng)基。

        種子培養(yǎng)基和發(fā)酵培養(yǎng)基:參照參考文獻(xiàn)[11]并稍作修改。用2 g/100mL的聚乙烯醇乳化羊油,羊油∶聚乙烯醇=1∶4(g∶g)。

        1.2 儀器與設(shè)備

        Trace DSQ氣質(zhì)聯(lián)用(gas chromatography-mass spectrometer,GC-MS)儀:美國Finnigan公司;HP-FFAP色譜柱(50m×0.20mm,0.25μm):美國安捷倫科技有限公司;CX21BIM-SET5奧林巴斯生物顯微鏡:日本奧林巴斯株式會(huì)社;VITEK2Compact梅里埃全自動(dòng)微生物生化鑒定儀:法國生物梅里埃公司;BILON88-II超聲波細(xì)胞粉碎機(jī):上海比郎儀器制造有限公司。

        1.3 方法

        1.3.1 樣品預(yù)處理

        稱取火腿表皮肉100 g,切碎置于滅菌三角瓶中備用;稱取土壤100 g,置于滅菌三角瓶中,60℃條件下烘干至泥土松散,備用。

        1.3.2 富集培養(yǎng)

        取上述處理的樣品各10g,置于90m L無菌生理鹽水中,180 r/m in振蕩30m in。靜置分層后取5m L上清液于50m L富集培養(yǎng)基中,30℃、180 r/min培養(yǎng)48h,再取5m L裝入50m L新鮮富集培養(yǎng)基中,進(jìn)行第2、3次富集。

        1.3.3 產(chǎn)脂肪酶菌株的分離和保存

        吸取富集培養(yǎng)的菌液1m L置于9m L無菌生理鹽水中,隨后以10倍為稀釋單位進(jìn)行稀釋,逐步稀釋至10-5、10-6、10-7。從這3個(gè)稀釋度的菌液中各取1m L注入平板中,并趁熱倒入初篩培養(yǎng)基,每個(gè)濃度做3個(gè)平行,待其冷卻凝固于30℃恒溫培養(yǎng)箱中倒置培養(yǎng)72 h。培養(yǎng)好的平板置于波長365 nm的紫外光下觀察,若平板上的菌落產(chǎn)生熒光圈則說明該菌落產(chǎn)生脂肪酶。挑選熒光圈較大的細(xì)菌菌落和真菌菌落于新的初篩平板上劃線分離,以獲得單菌落并再次驗(yàn)證該菌株水解羊油脂的能力。將分離得到的單菌落編號(hào)并接種于斜面培養(yǎng)基上,培養(yǎng)48 h于4℃條件下保存。

        1.3.4 菌株形態(tài)觀察

        將分離出的細(xì)菌和霉菌分別接種于細(xì)菌保藏培養(yǎng)基和真菌保藏培養(yǎng)基上,30℃條件下恒溫培養(yǎng)72 h,觀察菌落形態(tài)。分別挑取細(xì)菌的單個(gè)菌落和霉菌的菌絲置于載玻片上進(jìn)行染色制片,顯微鏡下觀察其染色情況、菌體形態(tài)并記錄結(jié)果。并根據(jù)《伯杰氏系統(tǒng)細(xì)菌學(xué)手冊(cè)》[12]和《真菌鑒定手冊(cè)》[13]進(jìn)行菌株形態(tài)學(xué)鑒定。

        1.3.5 細(xì)菌生理生化鑒定

        采用梅里埃VITEK2Compact全自動(dòng)細(xì)菌鑒定及藥敏分析系統(tǒng)對(duì)分離純化出的細(xì)菌菌株進(jìn)行分析。

        1.3.6 菌株分子生物學(xué)鑒定

        細(xì)菌基因組脫氧核糖核酸(deoxyribonucleicacid,DNA)提?。豪眉?xì)菌基因組DNA提取試劑盒提取目標(biāo)菌株基因組DNA。采用通用引物27F(5'-AGTTTGATCMTGGCTCAG-3')和1492R(5'-GGTTACCTTGTTACGACTT-3')聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)擴(kuò)增菌株的16S rRNA基因。PCR擴(kuò)增體系:基因組 DNA(20~50 ng/μL)0.5 μL,10×Buffer(含Mg2+)2.5 μL,脫氧核糖核苷三磷酸(deoxyribonucleoside triphosphate,dNTP)(各2.5mmol/L)1 μL,酶0.2μL,27F(10μmol/L)0.5 μL,1429R(10μmol/L)0.5μL,加雙蒸水(ddH2O)至25μL。PCR擴(kuò)增條件:94℃預(yù)變性4min;94℃變性45 s,55℃退火45 s,72℃延伸1min,共30個(gè)循環(huán);最終72℃延伸10m in。純化后的菌株基因組DNA采用1%的瓊脂糖凝膠進(jìn)行檢測(cè);PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的測(cè)序由生工生物工程(上海)股份有限公司完成,采用16S rDNA測(cè)序方法對(duì)菌株進(jìn)行分子生物學(xué)鑒定。

        真菌基因組DNA提?。豪谜婢蚪MDNA提取試劑盒提取目標(biāo)菌株基因組DNA,具體操作步驟參見試劑盒說明書。采用通用引物ITS1(5'-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3')和ITS4(5'-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3')PCR擴(kuò)增菌株的基因。PCR擴(kuò)增體系:基因組DNA(20~50ng/μL)0.5 μL,10×Buffer(含Mg2+)2.5 μL,dNTP(各2.5mmol/L)1 μL,酶0.2 μL,ITS1(10 μmol/L)0.5 μL,ITS4(10 μmol/L)0.5 μL,加ddH2O至25μL。PCR擴(kuò)增條件:94℃預(yù)變性4m in;94℃變性45 s,55 ℃退火45 s,72℃延伸1min,共30個(gè)循環(huán);最終72℃延伸10m in。純化后的菌株基因組DNA采用1%的瓊脂糖凝膠進(jìn)行檢測(cè);PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的測(cè)序由生工生物工程(上海)股份有限公司完成,采用ITS測(cè)序方法對(duì)菌株進(jìn)行分子生物學(xué)鑒定。

        登陸美國國家生物信息中心(nationalcenterofbiotechnology information,NCBI)數(shù)據(jù)庫,將測(cè)序結(jié)果與GenBank數(shù)據(jù)庫已知序列進(jìn)行BLAST對(duì)比,選取相似性99%以上的菌株序列,采用MEGA5.05軟件中的鄰接法(neighbor-joining,NJ)法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。

        1.3.7 菌株降解脂肪酸的測(cè)定

        準(zhǔn)確稱取4-甲基辛酸和4-乙基辛酸各150.0mg,用正己烷定容至500m L,即為脂肪酸標(biāo)準(zhǔn)混合溶液;在150m L三角瓶中加入30m L液體發(fā)酵培養(yǎng)基,20m L脂肪酸標(biāo)準(zhǔn)混合溶液,種子菌液以體積分?jǐn)?shù)5%的接種量接入液體培養(yǎng)基;30℃、180 r/min條件下培養(yǎng)48h,取出加入10m L正己烷充分振蕩,8 000 r/m in離心20m in,取上清液甲酯化[14],采用GC-MS法測(cè)定兩種脂肪酸含量。

        1.3.8 脂肪酸含量的測(cè)定

        GC條件:HP-FFAP色譜柱(50m×0.20mm,0.25μm);升溫程序:初始溫度100℃,保持2m in,以6.0℃/m in升至220℃,保持10min;載氣為氦氣(He),流速1.0m L/min;進(jìn)樣口溫度270 ℃;分流比10∶1;進(jìn)樣量1.0μL;傳輸線溫度230℃。MS條件:離子源溫度220℃;電子電離(electron ionization,EI)離子源;電子能量70eV;選擇離子監(jiān)測(cè)(selected ionmonitor,SIM)掃描模式。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 產(chǎn)脂肪酶菌株的分離篩選結(jié)果

        從火腿和土壤中共分離出6株產(chǎn)脂肪酶的細(xì)菌,編號(hào)分別為QT1-2、QT3-1、QT3-2、ZH1-1、ZH2-1、ZH2-2;5株霉菌,編號(hào)分別為TZH1、TZH3、TZH4、QT6-2、4TQ3。

        2.2 產(chǎn)脂肪酶菌株的鑒定

        2.2.1 形態(tài)特征和生理生化特征

        細(xì)菌及霉菌菌落特征如表1所示,細(xì)菌及霉菌菌體形態(tài)如表2、表3所示。通過梅里埃VITEK2Compact全自動(dòng)細(xì)菌鑒定及藥敏分析系統(tǒng)的分析,細(xì)菌的生理生化鑒定卡如表4所示。結(jié)合《伯杰氏系統(tǒng)細(xì)菌學(xué)手冊(cè)》鑒定分類系統(tǒng)和生理生化鑒定結(jié)果,初步判定菌株QT1-2為普羅維登斯菌屬(Providencia),菌株QT3-1和ZH1-1為克雷伯氏菌屬(Klebsiella),菌株QT3-2為腸桿菌屬(Enterobacter),菌株ZH2-1為假單胞菌屬(Pseudomonas),菌株ZH2-2為檸檬酸桿菌屬(Citrobacter)。根據(jù)《真菌鑒定手冊(cè)》中的鑒定分類系統(tǒng),可初步判定菌株TZH1和TZH3為根霉屬(Rhizopus),菌株THZ4和QT6-2為曲霉屬(Aspergillus),菌株4QT3為橫梗霉屬(Lichtheimia)。

        表1 細(xì)菌和霉菌菌落特征Table 1 Colony characteristics of bacteria and mold

        表2 細(xì)菌菌體形態(tài)Table 2 Mycelialmorphology of bacteria

        表3 霉菌菌體形態(tài)Table 3 Mycelialmorphology ofmold

        表4 細(xì)菌的生理生化特征Table 4 Physiologicaland biochem ical characteristics of bacteria

        2.2.2 產(chǎn)脂肪酶菌株的分子生物學(xué)鑒定

        圖1 6株細(xì)菌的16S rRNA PCR擴(kuò)增產(chǎn)物電泳圖譜Fig.1 Electrophoretogram of 16S rRNA PCR amplification products of 6 strains of bacteria

        圖2 5株霉菌的ITS PCR擴(kuò)增產(chǎn)物電泳圖譜Fig.2 Electrophoretogram of ITS PCR am plification products of 5 strains ofmolds

        由圖1可知,將篩選得到的6株細(xì)菌以總DNA為模板PCR擴(kuò)增后經(jīng)電泳檢測(cè),均得到了1.5 kbp左右的條帶。由圖2可知,將篩選得到的5株霉菌以總DNA為模板PCR擴(kuò)增后經(jīng)電泳檢測(cè),均得到了600 bp左右的條帶。PCR擴(kuò)增產(chǎn)物由上海生工公司進(jìn)行測(cè)序,測(cè)得它們的序列并與GenBank數(shù)據(jù)庫已有的序列比對(duì),選取同源性>99%的菌株序列構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,結(jié)果見圖3和圖4。

        圖3 細(xì)菌基于16S rRNA基因序列的6株細(xì)菌的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.3 Phylogenetic tree of six strains of bacteria based on 16S rRNA gene sequences

        圖4 基于ITS基因序列的5株霉菌的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.4 Phylogenetic tree of five strainsmolds based on ITS gene sequences

        由系統(tǒng)發(fā)育樹結(jié)合菌落、菌體形態(tài)和生理生化特征可以看出,菌株QT1-2與產(chǎn)堿普羅維登斯菌親緣性最高(100%),因此鑒定為產(chǎn)堿普羅維登斯菌(Providencia alcalifaciens);菌株QT3-1與肺炎克雷伯氏菌親緣性最高(100%),因此鑒定為肺炎克雷伯氏菌(Klebsiella pneumoniae);菌株QT3-2與霍式腸桿菌親緣性最高(100%),因此鑒定為霍式腸桿菌(Enterobacterhormaechei);菌株ZH1-1與產(chǎn)酸克雷伯氏菌親緣性最高(100%),因此鑒定為產(chǎn)酸克雷伯氏菌(Klebsiella oxytoca);菌株ZH2-1與銅綠假單胞菌的親緣性最高(100%),因此鑒定為銅綠假單胞菌(Pseudomonasaeruginosa);菌株ZH2-2與弗氏檸檬酸桿菌親緣性最高(97%),因此鑒定為弗氏檸檬酸桿菌(Citrobacterfreundii)。菌株TZH1與微孢根霉親緣性最高(100%),因此鑒定為微孢根霉(Rhizopus microsporus);菌株TZH3與米根霉親緣性最高(99%),因此鑒定為米根霉(Rhizopusoryzae);菌株TZH4與米曲霉親緣性最高(100%),因此鑒定為米曲霉(Aspergillus oryzae);菌株QT6-2與黃曲霉親緣性最高(99%),因此鑒定為黃曲霉(Aspergillus flavus);菌株4QT3與多枝橫梗霉親緣性最高(100%),因此鑒定為多枝橫梗霉(Lichtheim ia ramosa)。

        普羅威登斯菌屬(Providencia)菌為革蘭氏陰性,屬腸桿菌科,是人和動(dòng)物腸道的正常菌群,也是條件致病菌,能引起腹瀉,腸道外感染和尿道感染等疾病[15]。張遷[16]對(duì)一種來源于普羅維登斯菌的酸性脲酶進(jìn)行了研究,這種酶能在發(fā)酵酒苛刻環(huán)境下高效分解尿素,逐漸受到人們的關(guān)注。克雷伯氏菌屬(Klebsiella)普遍存在于土壤、水體、谷物等自然環(huán)境以及生物體的消化、呼吸系統(tǒng)中[17]。LIU Y等[18]從中國西雙版納土壤中篩選獲得一株含漆酶基因(lac)的肺炎克雷伯氏菌,該漆酶具有良好的pH和溫度穩(wěn)定性,可廣泛應(yīng)用于紡織業(yè)、造紙工業(yè)、食品行業(yè)中等。產(chǎn)酸克雷伯氏菌(K lebsiella oxytoca)則能產(chǎn)生賴氨酸脫羧酶,被GALEEF等[19]用于定量分析賴氨酸的含量等?;羰夏c桿菌(Enterobacterhormaechei)屬于腸桿菌屬(Enterobacter),存在于人和動(dòng)物腸道,為正常菌群之一。岳喜慶等[20]從一株霍氏腸桿菌中提取了一種青霉素酶,這種酶主要用于對(duì)牛奶中青霉素殘留量的快速定量測(cè)定,并對(duì)其發(fā)酵產(chǎn)酶條件進(jìn)行了初步的研究。弗氏檸檬酸桿菌(Citrobacterfreundii)是一種生長能力強(qiáng)的典型人-畜-魚共患條件致病菌,感染致病性弗氏檸檬酸桿菌后可引起動(dòng)物和人腹瀉、肺炎、敗血癥及食物中毒等癥狀[21]。羅會(huì)穎等[22]從弗氏檸檬酸桿菌中分離出一種新植酸酶并對(duì)其酶學(xué)性質(zhì)研究,植酸酶可作為單胃動(dòng)物的飼料添加劑,提高植物性飼料磷的利用率等。以上細(xì)菌能產(chǎn)生不同的酶并應(yīng)用于不同領(lǐng)域,但對(duì)其脂肪酶的應(yīng)用卻鮮有報(bào)道,具有一定的研究前景。

        微孢根霉可產(chǎn)生纖維素酶[23]和脂肪酶[24]等,用于處理油脂含量高達(dá)1 300mg/L的乳制品廢水,35℃條件下發(fā)酵72 h后,油脂含量降低至300mg/L以下。米根霉(Rhizopus oryzae)和米曲霉(Aspergillusoryzae)是發(fā)酵工業(yè)中的重要霉菌,通常應(yīng)用于腐乳[25]和醬油[26]等發(fā)酵食品中。朱東奇等[27]發(fā)現(xiàn),一株米根霉所產(chǎn)脂肪酶具有水解鳀魚油富集二十二碳六烯酸(docosahexaenoic acid,DHA)的應(yīng)用潛能。廖焰焰等[28]從豆豉中分離篩選出一株高產(chǎn)脂肪酶菌株,在豆豉發(fā)酵過程對(duì)其外觀及風(fēng)味的變化具有重要影響,以期為豆豉工業(yè)化生產(chǎn)提供理論依據(jù)。譚婷婷等[29]從北方黃酒麥曲中篩選出多枝橫梗霉,其產(chǎn)脂肪酶的研究卻未見報(bào)道。2.3菌株對(duì)4-甲基辛酸和4-乙基辛酸的降解

        各菌株發(fā)酵后,所測(cè)得脂肪酸含量如表5所示,各菌株發(fā)酵后4-甲基辛酸和4-乙基辛酸的含量都明顯減少。由于這兩種辛酸本身具有一定的揮發(fā)性,在不接種菌液的空白對(duì)照組中,4-甲基辛酸的減少量達(dá)到31.03%,4-乙基辛酸的減少量達(dá)到30.36%,所示實(shí)驗(yàn)組中4-甲基辛酸的實(shí)際減少量為30%~70%之間,而4-乙基辛酸的實(shí)際減少量為10%~70%之間。

        表5 菌株發(fā)酵后脂肪酸含量Table 5 Fatty acid contents after strains fermentation

        3 結(jié)論

        本研究以篩選產(chǎn)脂肪酶菌株的經(jīng)典方法為基礎(chǔ)進(jìn)行改良,用乳化羊油代替其中的橄欖油,能準(zhǔn)確分離篩選出作用于羊油脂的產(chǎn)脂肪酶菌株。成功分離出6株細(xì)菌,分別為QT1-2、QT3-1、QT3-2、ZH1-1、ZH2-1、ZH2-2;5株霉菌,分別為TZH1、TZH3、TZH4、QT6-2、4TQ3。這12株菌均能產(chǎn)生脂肪酶,菌落在波長365 nm的紫外光下均能觀察到熒光圈。通過形態(tài)觀察、生理生化鑒定和分子生物學(xué)鑒定,最終確定菌株QT1-2為產(chǎn)堿普羅維登斯菌(Providenciaalcalifaciens),菌株QT3-1為肺炎克雷伯氏菌(Klebsiellapneumoniae),菌株QT3-2為霍式腸桿菌(Enterobacterhormaechei),菌株ZH1-1為產(chǎn)酸克雷伯氏菌(Klebsiella oxytoca),菌株ZH2-1為銅綠假單胞菌(Pseudomonas aeruginosa),菌株ZH2-2為弗氏檸檬酸桿菌(Citrobacterfreundii);菌株TZH1為微孢根霉(Rhizopusmicrosporus),菌株TZH3為米根霉(Rhizopusoryzae),菌株TZH4為米曲霉(Aspergillusoryzae),菌株QT6-2為黃曲霉(Aspergillusflavus),菌株4QT3為多枝橫梗霉(Lichtheimiaramosa)。

        用分離得到的11株菌對(duì)4-甲基辛酸和4-乙基辛酸的混合溶液進(jìn)行發(fā)酵,結(jié)果表明,這11株均對(duì)這兩種脂肪酸具有降解作用,其中4-甲基辛酸的減少量為10%~70%之間,而4-乙基辛酸的減少量為10%~70%。其中菌株TZH1、TZH3、TZH4和4QT3能應(yīng)用于食品工業(yè),而其余7株菌為條件致病菌,不能直接應(yīng)用于食品,但可以通過基因工程等手段,對(duì)其降解膻味脂肪酸的基因片段進(jìn)行研究及應(yīng)用。對(duì)產(chǎn)脂肪酶菌株的分離鑒定及其對(duì)膻味脂肪酸降解能力的研究可以為今后羊肉除膻和發(fā)開新型羊肉制品奠定基礎(chǔ)。

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