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        木糖酸氧化途徑在枯草芽孢桿菌的構(gòu)建及轉(zhuǎn)化乙醇酸的研究

        2019-07-26 09:10:22凌翓紀(jì)明華段海燕史吉平孫俊松
        生物技術(shù)通報(bào) 2019年6期
        關(guān)鍵詞:木糖枯草芽孢

        凌翓 紀(jì)明華 段海燕 史吉平,3 孫俊松,3

        (1. 中國科學(xué)院上海高等研究院,上海 201210;2. 中國科學(xué)院大學(xué),北京 100049;3. 上??萍即髮W(xué),上海 201210)

        乙醇酸是一種水溶性α-羥基酸(AHA),通常被添加到乳液聚合物、溶劑、油墨或涂料中改善制劑的流動(dòng)性并增加其光澤度。因此常用于表面處理,是家用清潔液中常用的活性成分,同時(shí)在紡織工業(yè)中作為染色劑和鞣劑被廣泛使用[1]。乙醇酸也是護(hù)膚品工業(yè)中最廣泛使用的α-羥基酸之一,其分子很小,可以輕易地穿透皮膚、刺激膠原蛋白的再生,且相比于其他AHA,乙醇酸對于加速衰老皮膚脫落的功效更加顯著[2-3]。此外,乙醇酸還可在食品加工中作為調(diào)味劑和防腐劑[4]。

        乙醇酸的工業(yè)制備主要是利用甲醛羰基化的合成路徑,使用合成氣進(jìn)行催化,這種方式成本較低[5]。也可以通過氯乙酸與氫氧化鈉反應(yīng)后的再次酸化去氯制備乙醇酸[6]。其他方式包括草酸加氫等也可制備[7],但價(jià)格較高。此外,包括大腸桿菌等在內(nèi)的多種微生物存在著氧化木糖獲得2-酮-3-脫氧-D-木糖酸,再經(jīng)過醛縮酶催化后生成乙醇酸的Dahms Pathway(圖 1)[8]。

        枯草芽孢桿菌是一種獲得了GRAS認(rèn)證地位的、可用于食品工業(yè)的安全生產(chǎn)菌株,具有高分泌胞外蛋白、不含脂多糖等諸多優(yōu)良特性,被大量用于工業(yè)蛋白的生產(chǎn)[9]。此外,這類生產(chǎn)菌株?duì)I養(yǎng)代謝譜廣,代謝產(chǎn)物較豐富,近年來也被用于多種化學(xué)品的生物制造,尤其是用于食品及化妝品市場的有機(jī)物的合成[10]。雖然枯草芽孢桿菌可以利用木糖為碳源,卻缺少將木糖氧化為木糖酸,再合成乙醇酸的天然途徑。為了能夠獲得一株可以生產(chǎn)乙醇酸的食品安全菌,本研究將來自大腸桿菌的Dahms Pathway引入枯草芽孢桿菌,發(fā)現(xiàn)重組菌株可以結(jié)合自身的醛縮酶同工酶,僅在過表達(dá)YjhG后就可以將木糖酸高效地轉(zhuǎn)化為乙醇酸。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        菌株、質(zhì)粒信息以及PCR所用的模板及引物序列等信息如表1所列,其中枯草芽孢桿菌A164S為實(shí)驗(yàn)室改造的實(shí)驗(yàn)菌株[11]。

        表1 菌株,質(zhì)粒和引物

        基因組DNA提取試劑盒、PCR清潔試劑盒、質(zhì)粒小劑量提取試劑盒等,購自杭州愛思進(jìn)生物技術(shù)有限公司;Taq DNA聚合酶,康為世紀(jì)生物科技有限公司;限制性內(nèi)切酶BamH I,賽默飛世爾科技公司;堿性磷酸酶CIAP,寶日醫(yī)生物技術(shù)(北京)有限公司;Phanta高保真DNA聚合酶、一步克隆試劑盒,南京諾唯贊生物科技有限公司。

        S1000TMPCR擴(kuò)增儀,伯樂生命醫(yī)學(xué)產(chǎn)品(上海)有限責(zé)任公司;Tanon EPS30電泳槽及Gel DocTM XR+全自動(dòng)凝膠成像儀,伯樂生命醫(yī)學(xué)產(chǎn)品(上海)有限責(zé)任公司;NANODROP 2000c微量分光光度計(jì),賽默飛世爾科技公司;高效液相色譜儀,日本島津制作所株式會(huì)社;高速冷凍離心機(jī),艾本德生命科學(xué)儀器有限公司;恒溫培養(yǎng)箱及恒溫?fù)u床,上海智城分析儀器制造有限公司。

        1.2 方法

        1.2.1 培養(yǎng)基的配制 大腸桿菌及枯草芽孢桿菌的搖瓶培養(yǎng)均使用LB培養(yǎng)基:10 g/L 氯化鈉,10 g/L胰蛋白胨,5 g/L酵母浸取物;枯草芽孢桿菌A164S誘導(dǎo)轉(zhuǎn)化培養(yǎng)基為含1%(W/V)木糖的LB培養(yǎng)基;發(fā)酵產(chǎn)乙醇酸的培養(yǎng)基為添加了30 g/L木糖酸的LB培養(yǎng)基。在實(shí)驗(yàn)需要時(shí),添加的氨芐青霉素(Amp)濃度為100 μg/mL,芽孢桿菌培養(yǎng)時(shí)所用的氯霉素(Cm)濃度為 7.5 μg/mL。

        1.2.2 質(zhì)粒構(gòu)建 以大腸桿菌E. coliW3110為模板,以引物對YjhGeco-F和YjhGeco-R進(jìn)行高保真PCR得到目標(biāo)yjhG基因產(chǎn)物,以引物對YjhHeco-F和YjhGeco-R進(jìn)行高保真PCR得到目標(biāo)yjhH-yjhG雙基因產(chǎn)物(引物序列見表1),將得到的PCR產(chǎn)物進(jìn)行清潔并測定濃度。用BamH I快切酶將質(zhì)粒pMK4-PxylA-comK 線性化并切除comKDNA 片段[11],在37℃中反應(yīng)3 h后加入1 μL堿性磷酸酶,繼續(xù)反應(yīng)1 h后進(jìn)行清潔并測定濃度。將清潔后的質(zhì)粒和片段通過一步克隆試劑盒進(jìn)行連接,之后立即進(jìn)行轉(zhuǎn)化,轉(zhuǎn)化子經(jīng)colony PCR驗(yàn)證后,提取質(zhì)粒DNA,通過DNA測序驗(yàn)證了質(zhì)粒構(gòu)建的正確性。

        1.2.3 大腸桿菌感受態(tài)的制備及誘導(dǎo)轉(zhuǎn)化 大腸桿菌E. coliDH5α感受態(tài)的制作采用氯化鈣法,置于-80℃冰柜保存。將轉(zhuǎn)化所需的化學(xué)感受態(tài)細(xì)胞置于冰上解凍,取10 μL重組產(chǎn)物加入到100 μL感受態(tài)細(xì)胞中,輕彈管壁混勻,冰上放置30 min。放入42℃水浴中熱激90 s,立即置于冰上冷卻1-2 min。加入700 μL無抗LB液體培養(yǎng)基,37℃搖床200 r/min培養(yǎng)1 h。將Amp抗性的LB固體培養(yǎng)基平板在37℃培養(yǎng)箱中預(yù)熱。取出轉(zhuǎn)化細(xì)胞,500 r/min離心5 min后棄掉400 μL上清,用剩余培養(yǎng)基重懸菌體后用無菌涂布棒在含有正確抗性的平板上輕輕涂勻。37℃培養(yǎng)箱中倒置培養(yǎng)12-16 h。長出單菌落后,挑取菌落進(jìn)行PCR驗(yàn)證并印章,引物為質(zhì)粒上的特有片段。

        1.2.4 枯草芽孢桿菌感受態(tài)的制備及誘導(dǎo)轉(zhuǎn)化 將單克隆菌株B. subtilisA164S轉(zhuǎn)接到3 mL液體LB試管中,過夜培養(yǎng)8-12 h。吸取62 μL的木糖溶液0.5 g/mL加入到一支新鮮的3 mL液體LB試管中,37℃預(yù)熱。加入0.3 mL的過夜培養(yǎng)A164S菌液,在37℃ 200 r/min搖床中培養(yǎng)3 h,即得到枯草芽孢桿菌A164S的轉(zhuǎn)化感受態(tài)。用2.0 mL的無菌EP管進(jìn)行分裝,每管加入菌液0.5 mL。每管感受態(tài)細(xì)胞加入1.0 μg質(zhì)粒,混勻后在37℃ 200 r/min搖床中培養(yǎng)1.5 h。將氯霉素抗性的LB固體培養(yǎng)基平板在37℃培養(yǎng)箱中預(yù)熱。取出轉(zhuǎn)化細(xì)胞,500 r/min離心5 min后棄掉300 μL上清,用剩余培養(yǎng)基重懸菌體后用無菌涂布棒在含有正確抗性的平板上輕輕涂勻。37℃培養(yǎng)箱中倒置培養(yǎng)12-16 h。當(dāng)平板上長出陽性轉(zhuǎn)化子后,挑取單克隆,通過colony PCR驗(yàn)證質(zhì)粒的存在。

        1.2.5 搖瓶發(fā)酵實(shí)驗(yàn) 將轉(zhuǎn)入已構(gòu)建成功質(zhì)粒的A164S菌株轉(zhuǎn)接入搖瓶進(jìn)行發(fā)酵。在平板上挑取經(jīng)過驗(yàn)證的單克隆,轉(zhuǎn)接到3 mL帶有氯霉素抗性的LB液體培養(yǎng)基中,過夜培養(yǎng)8-12 h。將LB培養(yǎng)基分裝到250 mL的三角瓶中,每個(gè)瓶子裝50 mL。將已滅菌的木糖酸加入LB培養(yǎng)基,使終濃度為20 g/L。將過夜培養(yǎng)的菌液全部轉(zhuǎn)接到三角瓶,在37℃ 200 r/min搖床中進(jìn)行培養(yǎng)。當(dāng)OD600約0.4時(shí)加入0.5 g/mL的木糖溶液500 mL。

        1.2.6 高效液相色譜檢測 標(biāo)準(zhǔn)樣品測定及發(fā)酵液組分測定均采用高效液相色譜法,色譜柱為HPX-87H,流動(dòng)相為0.005 mol /L的稀硫酸溶液,流速為 0.8 mL/min,柱溫箱溫度為60℃,進(jìn)樣體積為20 μL,使用視差檢測器和紫外檢測器進(jìn)行檢測。

        精密稱取木糖酸標(biāo)準(zhǔn)品約0.1 g(精確至0.1 mg),用去離子水溶解制成1 mL標(biāo)準(zhǔn)品儲(chǔ)備液,濃度為100 g/L,4℃冰箱內(nèi)保存。取適量木糖酸標(biāo)準(zhǔn)品儲(chǔ)備液,稀釋成(g/L):1、2、3、4、5、6、7、8、9、10系列濃度的標(biāo)準(zhǔn)樣品,按上述色譜條件采集10張色譜圖,以木糖酸標(biāo)準(zhǔn)樣品的峰面積y對標(biāo)準(zhǔn)樣品的質(zhì)量濃度x(g/L)做標(biāo)準(zhǔn)曲線。

        精密稱取乙醇酸標(biāo)準(zhǔn)品約0.1 g(精確至0.1 mg),用去離子水溶解制成1 mL標(biāo)準(zhǔn)品儲(chǔ)備液,濃度為100 g/L,4℃冰箱內(nèi)保存。取適量乙醇酸標(biāo)準(zhǔn)品儲(chǔ)備液,稀釋成(g/L):0.01、0.02、0.03、0.04、0.05、0.06、0.07、0.08、0.09、0.10系列濃度的標(biāo)準(zhǔn)樣品,按上述色譜條件采集10張色譜圖,以乙醇酸標(biāo)準(zhǔn)樣品的峰面積y對標(biāo)準(zhǔn)樣品的質(zhì)量濃度x(g/L)做標(biāo)準(zhǔn)曲線。

        每隔一定時(shí)間將發(fā)酵所用三角瓶從搖床中取出,在超凈工作臺(tái)中吸取1 mL發(fā)酵液到1.5 mL EP管中,12 000 r/min離心10 min后將上清收集到干凈的1.5 mL EP管。將發(fā)酵液稀釋10倍,用1 mL針管吸取約300 μL后,通過0.22 μm親水針式濾器加入襯管中,制成液相樣品,按上述色譜條件進(jìn)行色譜圖采集。

        2 結(jié)果

        2.1 代謝途徑分析及質(zhì)粒構(gòu)建

        枯草芽孢桿菌可以利用木糖作為碳源,經(jīng)磷酸化后由5-磷酸核酮糖進(jìn)入五糖磷酸途徑(Pentose Phosphate Pathway),但沒有直接氧化木糖產(chǎn)生乙醇酸的代謝途徑,如圖1所示。而大腸桿菌中存在這個(gè)代謝途徑,因此,本研究選取來自大腸桿菌Dahms Pathway的兩個(gè)酶,在枯草芽孢桿菌中作過表達(dá)。

        如圖2所示,來自大腸桿菌的yjhH以及yjhG構(gòu)成一個(gè)操縱子,因此可以由一次PCR完成對兩個(gè)基因的同時(shí)克隆。質(zhì)粒pMK4-comK經(jīng)BamH I線性化后,通過一步克隆試劑盒與DNA片段連接,得到質(zhì)粒pMK4-yjhHG。質(zhì)粒pMK4-yjhG則用來只表達(dá)YjhG,兩個(gè)基因的轉(zhuǎn)錄均由可誘導(dǎo)的木糖啟動(dòng)子PxylA完成。質(zhì)粒構(gòu)建完成后,經(jīng)化學(xué)轉(zhuǎn)化,轉(zhuǎn)入高轉(zhuǎn)化效率的枯草芽孢桿菌A164S,分別得到轉(zhuǎn)化子A164S-HG和A164S-G。

        圖1 枯草芽孢桿菌的木糖及引入的木糖酸代謝途徑示意圖

        將重組菌培養(yǎng)后,利用質(zhì)粒提取試劑盒從重組細(xì)胞中提取質(zhì)粒DNA,再利用BamH I進(jìn)行酶切,分別得到一條約7 000 bp的質(zhì)粒條帶以及一條約1 000 bp(yjhG)的條帶和約2 000 bp(yjhH)的DNA條帶,如圖3所示。

        2.2 代謝底物及產(chǎn)物的鑒定及標(biāo)準(zhǔn)品定量

        如圖1所示,yjhG編碼的蛋白是木糖酸脫水酶,它的催化產(chǎn)物是2-酮-3-脫氧-D-木酮酸,該化學(xué)中間體在醛縮酶(YjhH)的作用下,生成乙醇醛及丙酮酸。為了測定導(dǎo)入了Dahms Pathway的重組枯草芽孢桿菌的生物活性,以未轉(zhuǎn)入質(zhì)粒的枯草芽孢桿菌A164S作為對照,在發(fā)酵預(yù)實(shí)驗(yàn)中,發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)化子A164S-HG和A164S-G的發(fā)酵液中檢測到了底物木糖酸的消耗及新產(chǎn)物的產(chǎn)生,通過與乙醇酸及其他可能產(chǎn)物(乙醇醛、乙二醇)標(biāo)準(zhǔn)樣品色譜圖進(jìn)行比對,確定產(chǎn)物成分為乙醇酸,如圖4所示。

        為了檢測新產(chǎn)物的濃度,進(jìn)行了乙醇酸標(biāo)準(zhǔn)濃度的測定(圖5-A),乙醇酸的濃度和形成的紫外吸收峰面積之間的線性相關(guān)系數(shù)(R2)為0.998(圖5-B)。

        2.3 YjhG以及YjhHG在枯草芽孢桿菌的誘導(dǎo)表達(dá)

        3個(gè)不同的轉(zhuǎn)化子A164S、A164S-HG或A164S-G,被平行接入加入5 g/L木糖和30 g/L的木糖酸的LB培養(yǎng)基中進(jìn)行搖瓶發(fā)酵,發(fā)酵過程中每隔一段時(shí)間取樣進(jìn)行OD600測定和發(fā)酵液組分測定。

        OD600測定結(jié)果如圖6-A所示,A164S-G轉(zhuǎn)化子的生長情況略優(yōu)于A164S-HG。通過對色譜圖中相應(yīng)物質(zhì)的峰面積進(jìn)行分析后,比較標(biāo)準(zhǔn)曲線可分別得到這兩種重組菌木糖酸的消耗量和乙醇酸的產(chǎn)生量,如圖6-B所示。重組枯草芽孢桿菌A164S-G的乙醇酸最高可生成約1.5 g/L的乙醇酸,消耗的木糖酸約為5.3 g/L,摩爾轉(zhuǎn)化率達(dá)到42.54%,其乙醇酸的產(chǎn)量反而大大高于同時(shí)表達(dá)YjhG和YjhH的轉(zhuǎn)化子A164S-HG。

        圖2 質(zhì)粒構(gòu)建及轉(zhuǎn)化示意圖

        圖3 質(zhì)粒構(gòu)建及酶切驗(yàn)證電泳圖

        圖4 代謝產(chǎn)物鑒定色譜圖

        圖5 乙醇酸標(biāo)樣濃度的確定

        3 討論

        隨著對微生物代謝途徑的深入了解,利用來自生物質(zhì)原料的廉價(jià)木糖組分進(jìn)行發(fā)酵生產(chǎn)的研究進(jìn)展飛速[12]。木糖可以用于酒精生產(chǎn),或直接被轉(zhuǎn)化為一些重要的化學(xué)原料,如木糖醇或木糖酸[13]。而木糖酸不僅是一種重要的水泥工業(yè)原料,也是一些微生物進(jìn)一步代謝利用的底物,但枯草芽孢桿菌并不能代謝木糖酸,讓這種食品工業(yè)重要微生物獲得利用木糖酸進(jìn)行代謝的能力具有重要意義。通過KEGG代謝網(wǎng)絡(luò)數(shù)據(jù)庫對多種微生物的代謝途徑的分析,發(fā)現(xiàn)大腸桿菌、陰溝腸桿菌等微生物均具有水解木糖酸的能力。因此,本文構(gòu)建了基于木糖酸脫水酶(YjhG)及2-酮3-脫氧-D-木糖酸醛縮酶(YjhH)的代謝支路(圖1),該支路也稱為Dahms Pathway[8]。將大腸桿菌YjhH蛋白的氨基酸序列在NCBI數(shù)據(jù)庫中進(jìn)行比對,發(fā)現(xiàn)枯草芽孢桿菌168存在兩個(gè)同源性較高的蛋白。將這些蛋白進(jìn)行比對分析后,如圖7所示,原來注釋為4-羥基四氫吡啶合酶DapA蛋白與YjhH的同源性為31%;而原來注釋為5-脫氫-4-脫氧葡糖二酸脫水酶的KdgD蛋白與YjhH的同源性為27%。因此,為了確定枯草芽孢桿菌是否具有自身的2-酮3-脫氧-D-木糖酸醛縮酶活性,本研究除了共表達(dá)YjhG/YjhH之外,還單獨(dú)表達(dá)了YjhG。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,與枯草芽孢桿菌168高度同源的菌株A164S在單獨(dú)表達(dá)YjhG后就可以獲得來自于2-酮-3-脫氧-D-木糖酸裂解后的終產(chǎn)物-乙醇酸,這說明A164S含有YjhH的同工酶。

        圖6 重組枯草芽孢桿菌代謝木糖酸的發(fā)酵實(shí)驗(yàn)結(jié)果

        圖7 大腸桿菌YjhH與枯草芽孢桿菌168同源蛋白的比對分析

        此外,2-酮-3-脫氧-D-木糖酸裂解的直接產(chǎn)物為乙醛酸及丙酮酸,丙酮酸將被代謝利用,而乙醛酸為高活性化合物,微生物通常會(huì)利用菌體內(nèi)非特異的氧化酶或還原酶將其轉(zhuǎn)化為乙醇酸或乙二醇。而在本研究中,無論是過表達(dá)了YjhG還是YjhH/YjhG的重組菌的發(fā)酵液中均檢測不到乙二醇(圖1示意圖中的可能產(chǎn)物)。這可能由于枯草芽孢桿菌為好氧型微生物,乙醇醛還原酶的表達(dá)量很低所致[14]。同時(shí),實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)表達(dá)雙基因YjhHG的重組菌的乙醇酸產(chǎn)率低于單獨(dú)表達(dá)YjhG的重組菌,這可能是由于來自大腸桿菌的原始的核糖體識(shí)別位點(diǎn)(RBS)在枯草芽孢桿菌中效率不高所造成的。如圖1中的基因間序列所示,來自大腸桿菌的原始RBS序列(圖1)缺乏枯草芽孢桿菌RBS的典型特征序列(GGAGG)[15]。后續(xù)研究若要提高木糖酸的轉(zhuǎn)化效率,除了可以進(jìn)行RBS的優(yōu)化,還可以對YjhG和YjhH進(jìn)行分別表達(dá)。此外,雙基因表達(dá)(YjhHG)的轉(zhuǎn)化效率低于單獨(dú)表達(dá)YjhG的效率,且重組菌的木糖酸的利用率相當(dāng)?shù)停ǖ陀?0%),說明微生物自身含YjhH的同工酶,同時(shí)也表明YjhG可能是木糖酸氧化過程中的限速酶。因此,未來除了要通過分子生物學(xué)手段進(jìn)一步提高YjhG的表達(dá)量,還需要開展YjhG的酶學(xué)特征及工程改造研究。此外,還有必要引入來自其他微生物,如新月莖桿菌的Weimberg pathway[16-17],進(jìn)一步豐富重組枯草芽孢桿菌的代謝途徑,并獲得直接利用木糖氧化生成木糖酸的能力。綜上所述,本研究證實(shí)了重組枯草芽孢桿菌生產(chǎn)食品安全級(jí)乙醇酸生產(chǎn)的可行性,為進(jìn)一步開發(fā)乙醇酸工業(yè)生產(chǎn)菌株奠定了研究基礎(chǔ)。

        4 結(jié)論

        以枯草芽孢桿菌為研究對象,通過質(zhì)粒過表達(dá)來自大腸桿菌的Dahms Pathway。對獲得的轉(zhuǎn)化子進(jìn)行發(fā)酵研究后表明,在枯草芽孢桿菌中單獨(dú)表達(dá)YjhG就可以讓宿主細(xì)胞獲得利用木糖酸的能力,在搖瓶培養(yǎng)時(shí)發(fā)酵轉(zhuǎn)化生成乙醇酸的產(chǎn)量達(dá)到約1.5 g/L,轉(zhuǎn)化率約為42.54%;發(fā)酵產(chǎn)物中只發(fā)現(xiàn)乙醇酸的生成,沒有乙二醇,表明構(gòu)建的重組枯草芽孢桿菌在好氧培養(yǎng)時(shí)有利于乙醇酸的合成及后續(xù)的產(chǎn)物純化。研究發(fā)現(xiàn),木糖酸的利用率還比較低,因此,后續(xù)有必要開展Dahms Pathway的過表達(dá)優(yōu)化研究,以提高乙醇酸的產(chǎn)量及轉(zhuǎn)化率。

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