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        微小亞歷山大藻amtk-4共附生菌群多樣性及其產(chǎn)毒新種Z1-D的sxtA1基因進(jìn)化研究

        2019-07-03 07:31:06張若男田曉清陸亞男樊成奇張曉玲
        海洋漁業(yè) 2019年3期
        關(guān)鍵詞:新種甲藻亞歷山大

        張若男,田曉清,陸亞男,樊成奇,張 靜,楊 橋,張曉玲

        (1.哈爾濱商業(yè)大學(xué)生命科學(xué)與環(huán)境科學(xué)研究中心,哈爾濱 150076;2.浙江海洋大學(xué)海洋科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,浙江舟山 316022;3.中國水產(chǎn)科學(xué)研究院東海水產(chǎn)研究所,上海 200090;4.舟山出入境檢驗(yàn)檢疫局綜合技術(shù)服務(wù)中心,浙江舟山 316021)

        赤潮(harmful algal blooms,HABs)是全球性海洋生態(tài)災(zāi)害及重大環(huán)境問題[1],其可引發(fā)麻痹性貝類毒素(paralytic shellfish poisoning,PSP)等多種生物毒素并通過食物鏈傳遞而嚴(yán)重危害人體生命健康[2]?,F(xiàn)有研究表明,部分海洋甲藻、淡水藍(lán)藻及海洋細(xì)菌均可產(chǎn)生PSP,但其來源問題尚 無 定 論[3]。藻 菌 關(guān) 系 (algae-bacterial interaction)是揭示PSP產(chǎn)生機(jī)制的關(guān)鍵,而藻際(phycosphere)及藻內(nèi)定植著獨(dú)特的細(xì)菌群落并與藻間形成了復(fù)雜的微生態(tài)關(guān)系,藻共附生菌群多樣性信息的揭示及其可培養(yǎng)菌株的獲得是解析藻菌關(guān)系的首要前提[4]。微小亞歷山大藻(Alexandrium minutum)是一種全球廣布性的代表性赤潮原因藻[5],亦是產(chǎn)生石房蛤毒素(saxitoxin,STX)等多種PSP的主要海洋甲藻,但目前對其共附生菌群尚缺乏系統(tǒng)性研究[6-7]。本文通過高通量測序首次解析了產(chǎn)PSP微小亞歷山大藻amtk-4共附生菌群的物種種類及其相對豐度,比較了不同生長時期amtk-4的可培養(yǎng)細(xì)菌種類及數(shù)量差異,對其中獲得的產(chǎn)毒新種Z1-D的PSP合成基因sxtA1進(jìn)行了基因進(jìn)化分析,以期為后續(xù)順利開展藻菌關(guān)系研究、闡析PSP來源奠定基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 藻培養(yǎng)

        微小亞歷山大藻amtk-4由臺灣大學(xué)周宏農(nóng)教授提供,分離自中國臺灣東南海域[8]。使用f/2培養(yǎng)基培養(yǎng),光照強(qiáng)度:4 500~5 000 lx,光照周期:12L/12D,培養(yǎng)溫度25℃。待藻細(xì)胞培養(yǎng)至對數(shù)生長期,取50 mL藻液于6 000 r·min-1離心收集藻細(xì)胞,使用50 mL PBS緩沖液(pH 7.2)洗滌細(xì)胞沉淀3次后備用[9-10]。

        1.2 基因組DNA抽提及PCR擴(kuò)增

        使用 Stool DNA Kit試劑盒(美國OMEGA)提取樣品總基因組DNA,具體操作參照試劑盒說明書進(jìn)行[11]。對提取到的樣品基因組DNA用質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測。PCR擴(kuò)增:針對細(xì)菌16S rRNA基因V3-V4區(qū)設(shè)計含barcode特異性引物338F/806R,引物序列分別為338F:5′ACTCCTACGGGAGGCAGCAG3′,806R:5′GGACTACHVGGGTWTCTAAT3′。PCR擴(kuò)增反應(yīng)參照文獻(xiàn)[9-10]進(jìn)行,將所獲得的PCR產(chǎn)物通過2%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行檢測,使用AxyPrepDNA凝膠回收試劑盒(AXYGEN公司)切膠回收PCR產(chǎn)物。

        1.3 Illumina MiSeq高通量測序

        將回收后的PCR產(chǎn)物送樣至上海美吉生物,進(jìn)行Illumina Miseq文庫構(gòu)建及高通量測序。測序數(shù)據(jù)質(zhì)量控制參照文獻(xiàn)[10]進(jìn)行:根據(jù)PE讀長之間相互重疊關(guān)系進(jìn)行序列拼接,同時對讀長質(zhì)量和拼接效果進(jìn)行質(zhì)控分析。過濾讀長尾端質(zhì)量值小于20的堿基;最小重疊長度10 bp;拼接序列重疊區(qū)允許最大錯配比率0.2;根據(jù)序列兩端DNA條形碼及引物進(jìn)行樣品區(qū)分;軟件:FLASH及Trimmomatic。

        1.4 測序數(shù)據(jù)分析

        對獲得的非重復(fù)序列進(jìn)行操作分類學(xué)單元(operational taxonomic units,OTU)聚類分析以獲得OTU代表序列,從中選取與代表序列相似度大于97%的序列產(chǎn)生OTU數(shù)據(jù)表。通過貝葉斯分類算法(ribosomal database project,RDP)對 OTU數(shù)據(jù)表進(jìn)行分類學(xué)分析,分別在不同分類水平上進(jìn)行樣本群落組成統(tǒng)計分析[9-11]。選取 Silva、RDP、Greengene為細(xì)菌 16S比對數(shù)據(jù)庫,使用Qiime平臺與RDPClassifier分別作為計算軟件及算法,設(shè)定0.7為置信度閾值。群落豐富度指數(shù)(community richness)采用 Chao指數(shù)和 ACE指數(shù);群落多樣性指數(shù)(community diversity)采用Shannon指數(shù)與Simpson指數(shù)。利用不同測序深度時微生物多樣性指數(shù)構(gòu)建測序樣品的稀釋曲線(rarefaction curve)[12]。

        1.5 Amtk-4可培養(yǎng)菌株分離及分子鑒定

        取1 mL各個生長周期amtk-4藻培養(yǎng)液,6 000 r·min-1離心收集藻細(xì)胞,細(xì)胞沉淀用無菌海水重懸,置于冰浴中通過超聲波儀(Fisher Scientific 50,Thermo Fisher)60%功率超聲 30 s,用無菌海水依次進(jìn)行10倍梯度稀釋,取100μL稀釋液均勻涂布于不同選擇性培養(yǎng)基平板上,細(xì)菌選擇性分離培養(yǎng)基包括:2216E、ISP 4號培養(yǎng)基、M2甘油培養(yǎng)基及HV培養(yǎng)基,置于15~28℃培養(yǎng)5~10 d。待生長出細(xì)菌菌落后,挑取單菌落進(jìn)行劃線分離與純化。細(xì)菌形態(tài)的透射電鏡觀察參考文獻(xiàn)[9-11]進(jìn)行。

        將5 mL對數(shù)生長期細(xì)菌培養(yǎng)物按照DNA提取試劑盒說明書步驟[9]進(jìn)行細(xì)菌DNA的提取。使用細(xì)菌通用引物27F及1492R,PCR擴(kuò)增參照文獻(xiàn)[9-11]進(jìn)行。PCR產(chǎn)物進(jìn)行1%瓊脂糖凝膠電泳檢測[10]。PCR產(chǎn)物送樣至上海美吉進(jìn)行測序,將獲得的16S rRNA基因序列通過Ezbiocloud在線數(shù)據(jù)庫進(jìn)行細(xì)菌模式種16SrRNA基因序列同源性比對[9-10]。

        1.6 菌株sxtA1基因進(jìn)化分析

        利用Glimmer 3.02軟件對Z1-D基因組數(shù)據(jù)中的功能基因進(jìn)行預(yù)測[13],獲得預(yù)測基因注釋信息。利用NCBI-Blast程序?qū)δ康幕蛐蛄羞M(jìn)行同源性搜索及比對,利用MEGA7.1軟件構(gòu)建其系統(tǒng)發(fā)育樹[9-11]。

        1.7 PSP毒素提取及LC-MS分析

        參照文獻(xiàn)[9-11],取對數(shù)生長期發(fā)酵液1 L,6 000 r·min-1離心5 min獲得細(xì)胞,獲得的細(xì)胞沉淀放入-80℃冰箱凍融3次,用pH2.0的80%乙醇溶液超聲提取3次,合并提取液,使用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀蒸干后,用30%甲酸銨溶液和70%酸化乙腈溶解,參照文獻(xiàn)[7]進(jìn)行PSP的LC-MS分析。分析條件:色譜分析柱:TSK-Gel Amide-80,2.0 mm×250 mm,5μm粒徑;流動相 A:甲酸銨緩沖溶液,B:酸化乙腈,梯度洗脫;流速:0.25 mL·min-1;柱溫:30℃;進(jìn)樣量:20μL;質(zhì)譜條件:離子源:電噴霧離子源;掃描方式:正離子掃描;檢測方式:多反應(yīng)監(jiān)測;噴霧電壓:4 500 V;離子傳輸毛細(xì)管溫度:300℃;錐孔電壓:-10 V;霧化氣流速:11.7 L·min-1;輔助氣流速:1.7 L·min-1;碰撞氣壓力:1.5 m Torr。PSP標(biāo)準(zhǔn)品石房蛤毒素(STX)購自加拿大海洋生物研究所。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 Amtk-4共附生菌多樣性分析

        微小亞歷山大藻amtk-4共附生菌多樣性高通量測序質(zhì)控結(jié)果如表1所示。由樣品多樣性指數(shù)包括ACE指數(shù)、Chao指數(shù)、Shannon指數(shù)及Simpson指數(shù)數(shù)據(jù)可見,amtk-4測序樣品包含豐富的共附生菌多樣性。由樣品稀釋曲線(圖1-a)及Shannon-Wiener曲線(圖1-b)可見,隨測序數(shù)據(jù)量的增加,曲線斜率逐漸降低并趨向平坦,表明測序數(shù)據(jù)量合理,樣品測序質(zhì)量較好。

        高通量測序結(jié)果表明,微小亞歷山大藻amtk-4共附生菌包括85個OTU,其中包括10個門、20個綱、40個目、59個科及87個屬?;贠TU的系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹見圖2。在門水平包括變形菌 (60.0%)、硬壁菌 (14.4%)、擬桿菌(11.1%)、浮霉?fàn)罹?.4%)、放線菌(4.4%)、綠彎 菌 (2.2%)、芽 單 胞 菌 (1.1%)與Verrucomicrobia SHA-109(1.1%)。綱水平以 α-變形菌(35.6%)、γ-變形菌(22.2%)和芽孢桿菌(13.3%)占優(yōu)勢,而 β-變形菌(4.6%)、纖維粘網(wǎng)菌(4.4%)、放線菌(4.4%)、Flavobacteriia(3.3%)及浮霉?fàn)罹?.2%)所占比例較低。目水平以紅細(xì)菌(11.1%)、根瘤菌(8.7%)、芽孢桿菌(8.7%)、紅螺菌(7.8%)及交替單胞菌(7.8%)占優(yōu)勢??扑揭约t桿菌(10.9%)、紅螺菌(7.6%)及交替單胞菌(7.6%)占優(yōu)勢。

        其中優(yōu)勢屬(>5%)6個,包括Phycisphaeraceae科未鑒定屬(11.8%)、Muricauda屬(10.3%)、腐螺旋菌科未鑒定屬(9.1%)、Hyphomonadaceae科未鑒定屬(8.9%)、Haliea屬(5.7%)及紅桿菌科未鑒定屬(5.1%)(圖3)。amtk-4來源共附生菌群中的未鑒定屬比例高達(dá)53.4%,表明微小亞歷山大藻amtk-4具有發(fā)現(xiàn)藻際生境微生物新種(屬)的巨大潛力,非常值得對其進(jìn)行進(jìn)一步深入發(fā)掘研究。

        表1 測序樣品的多樣性指數(shù)數(shù)據(jù)統(tǒng)計表Tab.1 Alpha-diversity data of high-throughput sequencing samples

        圖1 測序樣品稀釋曲線(a)與Shannon-Wiener曲線(b)圖Fig.1 Rarefaction(a)and Shannon-Wiener curves(b)of the sample

        圖2 基于OTU的微小亞歷山大藻amtk-4共附生菌群系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹Fig.2 Phylogenetic tree of the bacterial community associated with A.minutum amtk-4 based on OTU

        圖3 微小亞歷山大藻amtk-4共附生菌群多樣性的屬水平分布圖Fig.3 Microbial distribution at genus level of the associated bacterial community of A.minutum amtk-4

        2.2 amtk-4可培養(yǎng)菌株16S r RNA系統(tǒng)發(fā)育分析

        從微小亞歷山大藻amtk-4不同生長期所分離的細(xì)菌數(shù)量比較數(shù)據(jù)見表2。由表2可見,藻生長延緩期所獲得細(xì)菌種類及數(shù)量較少;進(jìn)入對數(shù)生長期后,細(xì)菌數(shù)量及種類增加;穩(wěn)定期細(xì)菌種類最多;進(jìn)入衰亡期后,細(xì)菌數(shù)量及種類均減少。對14株可培養(yǎng)細(xì)菌經(jīng)排重后,發(fā)現(xiàn)包括5株細(xì)菌,分別為 Thalassobaculum sp.、Muricauda sp.、Mesorhizobium sp.、亞硫酸桿菌(Sulfitobacter)及Microbacterium sp.,其中菌株Z1-D及Z1-4的16S rRNA基因序列與已有模式種的同源性最高值分別為97.8%及97.3%,其16S rRNA基因鄰接法(neighbor-joining)系統(tǒng)發(fā)育樹見圖4,將其分別鑒定為亞硫酸桿菌屬及Mesorhizobium屬新種。對Z1-D菌株的發(fā)酵代謝產(chǎn)物進(jìn)行了LC-MS分析(圖5),發(fā)現(xiàn)其可產(chǎn)生約 12.6 ng·mL-1石房蛤毒素(STX)產(chǎn)物。

        2.3 sxtA1基因進(jìn)化分析

        SxtA是催化STX生物合成的關(guān)鍵起始基因,包括4個結(jié)構(gòu)域(sxtAZ1-4,圖6),其中 sxtA1為腺苷甲硫氨酸依賴性甲基轉(zhuǎn)移酶(Methyltransferase,MTF)[5]。通過 GenBank Blast分析對Z1-D菌株的全基因組序列進(jìn)行了比對。結(jié)果表明,該菌株基因組中含有sxtA1同源基因片段(orf-01498)并構(gòu)建了其sxtA1基因系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹(圖6)。表明orf-01498基因片段與水華束絲藻屬(Aphanizomenon)、擬柱胞藻屬(Cylindrospermopsis)等藍(lán)藻進(jìn)化距離較近。暗示sxtA1基因在微小亞歷山大藻amtk-4共附生菌株Z1-D及部分藍(lán)藻之間可能存在著共同進(jìn)化[13-14]。

        表2 不同生長期微小亞歷山大藻amtk-4所獲得細(xì)菌數(shù)量比較Tab.2 Comparison of number of bacterial strains isolated from A.minutum amtk-4 at different growth phases

        圖4 微小亞歷山大藻amtk-4來源可培養(yǎng)細(xì)菌的系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹Fig.4 Phylogenetic tree of 16S r RNA gene sequences of cultivable bacterial strains from A.minutum amtk-4

        圖5 細(xì)菌新種Z1-D發(fā)酵產(chǎn)PSP的LC-MS分析圖譜Fig.5 LC-MSanalysis of PSP toxins from fermentation products of the novel species strain,Z1-D isolated from A.minutum amtk-4

        圖6 新種Z1-D的sxtA1基因系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹Fig.6 Phylogenetic tree of sxtA1 genes of strain Z1-D

        3 討論

        微小亞歷山大藻及鏈狀亞歷山大藻是亞歷山大藻屬兩種主要產(chǎn)PSP赤潮甲藻。前期對東海鏈狀亞歷山大藻LZ09共附生菌多樣性進(jìn)行了高通量測序分析[15]。兩種亞歷山大藻共附生菌多樣性差異比較結(jié)果顯示,微小亞歷山大藻amtk-4及鏈狀亞歷山大藻LZ09共附生菌群中變形菌比例均超過50%,為兩種藻的共附生菌絕對優(yōu)勢門,其中α-變形菌綱所占比例分別為35.6%和21.4%。兩種藻細(xì)菌群落多樣性在科及屬水平上差異較大。紅桿菌(Rhodobacteraceae)、紅螺菌 (Rhodospirillaceae)及 Alteromonadaceae在amtk-4中為優(yōu)勢科,而在LZ09中比例均低于10%。amtk-4共附生菌包括87個屬,其中以Phycisphaeraceae科未鑒定屬、Muricauda屬、腐螺旋菌科未鑒定屬、Hyphomonadaceae科未鑒定屬、Haliea屬及紅細(xì)菌科未鑒定屬為優(yōu)勢屬。而amtk-4共附生菌包括 34個屬,其中Cryomorphaceae科和Cyanobacteria科未鑒定屬、糖螺菌屬、紅細(xì)菌科未鑒定屬及Maricaulis屬為優(yōu)勢屬。兩株藻共附生菌群的共有優(yōu)勢屬為紅細(xì)菌科未知屬。本研究取得的數(shù)據(jù)可為后續(xù)開展amtk-4可培養(yǎng)共附生菌株分離策略的優(yōu)化提供科學(xué)參考。

        值得關(guān)注的是,微小亞歷山大藻amtk-4及鏈狀亞歷山大藻LZ09中未鑒定屬細(xì)菌比例均高于50%,表明這兩株產(chǎn)PSP亞歷山大藻蘊(yùn)含從中發(fā)現(xiàn)功能未知微生物新種(屬)的巨大潛力。本文從微小亞歷山大藻amtk-4分離獲得的2株細(xì)菌Z1-D及Z1-4經(jīng)鑒定其分別為亞硫酸桿菌屬(Sulfitobacter)及Mesorhizobium屬新種。亞硫酸桿菌屬于變形菌門紅桿菌科(Rhodobacteraceae),現(xiàn)包括18個模式種,在海洋物質(zhì)循環(huán)中扮演重要角色。其分離來源多樣,包括海洋動植物如海星(Stellaster equestris)、海草(Zostera marina)、海水及有毒海洋硅藻[16],而在海洋甲藻中尚未見相關(guān)報道。Mesorhizobium屬于1997年首次報道[17],為專性共生菌,通常在豆科植物根部形成固氮固結(jié)物。該屬是繼根瘤菌之后的第二大類植物根瘤共生菌,目前包括39個模式種,但尚未在海洋甲藻中得到報道。本文所獲的新的研究結(jié)果表明,微小亞歷山大藻amtk-4蘊(yùn)含獨(dú)特的共生菌新物種資源,非常值得對其進(jìn)行進(jìn)一步深入挖掘研究。

        高通量測序結(jié)果揭示了微小亞歷山大藻amtk-4具有豐富共附生菌物種多樣性信息,但通過純培養(yǎng)(culture-dependent)分離目前僅獲得數(shù)株可培養(yǎng)細(xì)菌菌株,遠(yuǎn)未體現(xiàn)出其豐富物種多樣性原貌。究其原因,絕大多數(shù)海洋微生物種群為活的不可培養(yǎng)狀態(tài)(viable but none-cultivable,VBNC),而微生物可培養(yǎng)性 (microbial cultivability)是海洋微生物研究的一個關(guān)鍵瓶頸[18]。因此,若要最大限度還原海洋復(fù)雜生態(tài)體系細(xì)菌群落生態(tài)學(xué)功能原貌,必須組合利用宏基因組學(xué)、新興單細(xì)胞基因組學(xué)(single cell genomics,SCG)等免培養(yǎng)(culture-independent)研究技術(shù)[19],以突破傳統(tǒng)微生物培養(yǎng)方法的局限,為解析復(fù)雜海洋特殊生境微生物菌群多樣性及其生態(tài)學(xué)功能提供研究新思路[20-21]。

        海洋甲藻包括亞歷山大藻屬(Alexandrium)、裸甲藻屬(Gymnodinium)及 Pyrodinium屬等;淡水浮絲藻屬(Planktothrix)及藍(lán)藻(cyanobacteria)包 括 Cylindrospermopsis raciborskii、Anabaena circinalis、Aphanizomenon、Raphidiopsis brookii及Lyngbya wollei等均可產(chǎn)生PSP[22-24]。除上述產(chǎn)毒藻以外,存在于自然海水、藻際(phycosphere)及藻內(nèi)細(xì)菌包括如弧菌(Vibrio)、對極鞭毛菌(Alteromonas)、毗鄰單胞菌(Plesiomonas)、假單胞菌(Pseudomonas)、變形菌(Proteus)、莫拉氏菌(Moraxella)等,同樣可產(chǎn)生 PSP[25]。甲藻、藍(lán)藻及細(xì)菌產(chǎn)PSP的跨界分布(cross-kingdom)是否蘊(yùn)含某種內(nèi)在規(guī)律?而藻共附生菌群在PSP產(chǎn)生機(jī)制中究竟扮演何種角色?具有哪些潛在應(yīng)用價值?這些問題的解答目前均缺乏足夠研究數(shù)據(jù)積累,亟待系統(tǒng)發(fā)掘。藻內(nèi)共生菌在長期自然選擇進(jìn)化過程中,與甲藻形成了復(fù)雜的生態(tài)體系,構(gòu)建了復(fù)雜的化學(xué)防御系統(tǒng)[25-26]。藻共附生菌群與甲藻之間既存在多種代謝產(chǎn)物(化學(xué)防御物質(zhì)、群體感應(yīng)物質(zhì)、營養(yǎng)物質(zhì)、生長因子等)相互交流,亦有重要遺傳物質(zhì)(包括PSP合成基因)在不同物種及種屬間的基因水平轉(zhuǎn)移與融合[26]。本研究發(fā)現(xiàn),分離自微小亞歷山大藻amtk-4可產(chǎn)生STX細(xì)菌新種Z1-D的sxtA1基因與產(chǎn)毒水華束絲藻屬、擬柱胞藻屬等藍(lán)藻聚類,推測其可能存在著共同進(jìn)化[22-26]。

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