雷維瓊,劉欣煜,艾慧婷,林顯光
(1.中南民族大學(xué) 生物醫(yī)學(xué)工程學(xué)院,醫(yī)學(xué)信息分析及腫瘤診療湖北省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湖北 武漢 430074;2.武漢第四中學(xué),湖北 武漢 430034)
Ⅰ型糖尿病是絕對胰島素分泌不足導(dǎo)致的持續(xù)性高血糖癥狀[1]。治療Ⅰ型糖尿病一直都是一個(gè)非常具有挑戰(zhàn)性的問題,但無論如何,研究的實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)是要能分離出數(shù)量足、形態(tài)好的胰島細(xì)胞[2]。同時(shí),胰島單細(xì)胞的分離培養(yǎng)對于通過膜片鉗手段揭示糖尿病的發(fā)病機(jī)制與研究治病藥物的功能機(jī)制十分重要。因此,本文對急性分離培養(yǎng)大鼠胰島單細(xì)胞方法進(jìn)行改良,為后期實(shí)驗(yàn)需要胰島單細(xì)胞的研究提供一種新的獲取途徑。
雄性SD大鼠,SPF級,體重180 ~ 250 g,購買于湖北省疾病預(yù)防控制中心。飼養(yǎng)于12 h光照/12 h黑暗的環(huán)境中,自由攝食飲水。動物實(shí)驗(yàn)與處理均遵照《中南民族大學(xué)實(shí)驗(yàn)動物使用與福利指導(dǎo)手冊》[3]。
RPMI-1640培養(yǎng)液和FBS(Fetal bovine serum)購買于Gibco,膠原酶V購買于Sigma Aldrich,其余試劑均購買于Biosharp或國藥化學(xué)試劑。
2.3.1 溶液配制
無鈣無鎂KRBB溶液(g/L):7.54 NaCl, 0.35 KCl, 0.16 KH2PO4,0.42 NaHCO3,2.38 Hepes,1 BSA;pH值7.0。10 mg/mL膠原酶V溶液:將0.2 g的膠原酶V溶于20 mL的無鈣無鎂的KRBB溶液中,過濾,1 mL分裝,凍于-20 ℃保存。
2.3.2 胰島的分離提取
實(shí)驗(yàn)前將大鼠斷糧12~16 h,飲水不限。將10 mg/mL膠原酶V溶液稀釋為2 mg/mL膠原酶V溶液置于冰上預(yù)冷。用10%的水合氯醛以0.3 g/kg的劑量腹腔注射來麻醉大鼠,將大鼠腹側(cè)暴露,用膠帶固定于木板。給腹部消毒后,按圖1(A)所示從大鼠生殖器上方剪開皮膚,然后再沿黑線的方向剪開暴露出大鼠的腹腔。用顯微剪和顯微鑷小心剝離總膽管后用止血鉗將圖1(B)中指示的胰管與十二指腸交匯處(白點(diǎn))鉗住,同時(shí)用另一止血鉗將總膽管走向肝臟的分支鉗住。從圖1(B)所示的總膽管處緩慢灌入冷的2 mg/mL 膠原酶V溶液進(jìn)入胰腺。待看到如圖1(C)與圖1(D)所示,即胰頭胰尾膨脹后剪下胰腺,將其沖洗干凈,放入留有1 mL的 2 mg/mL 膠原酶V溶液的離心管中置于37 ℃消化,每隔3~5 min吹打一次,使胰腺均勻消化,直至組織成細(xì)沙狀,約10 min,立即終止消化,再根據(jù)胰島的折射率的不同手動挑出胰島。
圖1 大鼠解剖過程
2.3.3 胰島單細(xì)胞的分離
取出1 mL 0.015% 用無鈣無鎂KRBB配制的胰蛋白酶,加2 mL無鈣無鎂KRBB溶液混勻,即0.005%的胰蛋白酶溶液。將提好的胰島用無鈣無鎂KRBB輕輕吹打、清洗后離心,去上清。加入5 mL 3mM的EGTA孵育9 min,期間吹打一次,孵育完成后離心去上清。在離心管中加入3 mL 0.005%的胰蛋白酶溶液置于37 ℃搖床,170 r/min,每5 min吹打約30~40 s,消化時(shí)間約為8-15 min。在消化的過程中應(yīng)當(dāng)每隔3~5 min吹打幾次,同時(shí)還要取1、2滴消化液在20倍顯微鏡下觀察消化的狀況,直至大部分胰島呈單細(xì)胞的狀態(tài),并且光滑圓潤飽滿。消化完成后加入10 mL培養(yǎng)基混勻終止消化,500 r/min, 離心5 min,去上清。加入適量培養(yǎng)基,吹打均勻,滴加在已用L-型多聚賴氨酸處理過的玻片上,每片滴加40 μL細(xì)胞重懸液,放入37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中90~120 min貼壁,再在每個(gè)孔中輕輕加入1 mL 含10%FBS的RPMI-1640培養(yǎng)基。
2.3.4 電生理實(shí)驗(yàn)
記錄動作電位的外液成分[4]是(mmol/L):140 NaCl,10 Hepes,1 MgCl2,2.5 CaCl2,3.6 KCl,pH值7.35。電極電阻一般為3~5 MΩ。電極內(nèi)液成分[4]是(mmol/L):76 K2SO4,5 NaCl,10 KCl,1 MgCl2,10 Hepes,pH 7.35。11.1 mM葡萄糖加在外液中來記錄膜電位[4]。膜片鉗實(shí)驗(yàn)是用EPC-10放大器和PatchMaster軟件(HEKA,德國)進(jìn)行。所有的電生理實(shí)驗(yàn)都是在25-33 ℃并且標(biāo)準(zhǔn)全細(xì)胞模式下進(jìn)行的。動作電位是將細(xì)胞封接破膜后換成“電流鉗”模式,把鉗制電流調(diào)成0 pA,給一個(gè)4000 ms,500 pA的刺激即可記錄。由于胰島中70%都是β細(xì)胞,所以挑選那些較大的細(xì)胞,那些看著更像是β細(xì)胞[5]。
胰島形態(tài)的完好對于分離單細(xì)胞來說十分重要。為了讓后續(xù)試驗(yàn)順利進(jìn)行,事先在體視解剖鏡下觀察消化完成的胰島。在一束斜照的光源下,由于胰島組織的折光性較好,會比其他腺泡組織亮,在挑取胰島時(shí),發(fā)現(xiàn)胰島就像沙漠里的珍珠,十分白亮,如圖2所示。圖2(a)中紅色圈中的即是胰島組織,其余的沙沙狀的則為腺泡組織,圖2(b)則為分離純化完全的在體視解剖鏡下觀察的胰島組織。一般能分離出200~300個(gè)胰島組織。
如圖3所示,記錄到的胰島β細(xì)胞的動作電位是標(biāo)準(zhǔn)的動作電位的形狀。這也說明本文提取的胰島單細(xì)胞是有興奮性的,具有良好活性的。
胰腺是由內(nèi)、外分泌腺組成的混合分泌腺,由于整個(gè)胰腺中僅有1%~2%的體積為胰島組織,因而胰島的分離純化較為困難。本研究采用的內(nèi)外聯(lián)合消化法,
圖2 體視解剖鏡下觀察的胰島組織
圖3 胰島β細(xì)胞的動作電位
將膽總管的分支截住,逆行灌注膠原酶V,快速剪下胰腺,放入酶中消化。分離形狀好的胰島對于分離單細(xì)胞來說十分重要。將胰島分離成單細(xì)胞的方法是采用Dispase-Ⅱ和DNAase聯(lián)合消化或者是0.015%的胰蛋白酶直接消化,但DNase和Dispase這兩種酶相較于胰蛋白酶來說價(jià)格較高,本研究是將0.015%的胰蛋白酶稀釋了3倍即0.005%的胰蛋白酶來分離單細(xì)胞,消化時(shí)間較短,8~15 min。從電生理的結(jié)果表明這樣低濃度的胰蛋白酶消化分離的單細(xì)胞的活性不錯(cuò),興奮性良好。這樣來看本研究的分離胰島單細(xì)胞的方法分離出的單細(xì)胞也具有良好活性,適用于膜片鉗電生理實(shí)驗(yàn),同時(shí)節(jié)省了實(shí)驗(yàn)耗材與費(fèi)用。