趙勝娟 向進(jìn)樂 陳樹興費(fèi) 鵬 徐云鳳 李建科
(1. 陜西師范大學(xué)食品工程與營(yíng)養(yǎng)科學(xué)學(xué)院,陜西 西安 710119;2. 河南科技大學(xué)食品與生物工程學(xué)院,河南 洛陽 471023)
膽固醇代謝有著嚴(yán)格的調(diào)控機(jī)制,在正常情況下,細(xì)胞內(nèi)的膽固醇代謝保持著動(dòng)態(tài)平衡,該平衡一旦打破會(huì)導(dǎo)致機(jī)體病變,因此維持機(jī)體細(xì)胞內(nèi)膽固醇的動(dòng)態(tài)平衡至關(guān)重要[1-2]。當(dāng)機(jī)體內(nèi)皮細(xì)胞受到外界刺激發(fā)生損傷時(shí),巨噬細(xì)胞對(duì)膽固醇的攝入不受細(xì)胞內(nèi)膽固醇含量負(fù)反饋機(jī)制的調(diào)節(jié),進(jìn)而會(huì)打破巨噬細(xì)胞內(nèi)膽固醇的平衡,在細(xì)胞內(nèi)形成大量脂滴,直至巨噬細(xì)胞發(fā)生泡沫化,導(dǎo)致動(dòng)脈粥樣硬化(atherosclerosis,AS)的發(fā)生,嚴(yán)重地危害人們的健康[3-4]。
石榴皮多酚(pomegranate peel polyphenols,PPPs)是石榴中重要的活性成分,具有抗氧化、抗癌、抗菌、降血脂等多種生物學(xué)功能[5]。研究[6-7]表明PPPs可以降低巨噬細(xì)胞膽固醇和氧化脂質(zhì)的積累,以抑制泡沫細(xì)胞的形成,從而減少AS及心血管疾病的發(fā)生,然而,石榴多酚抑制泡沫細(xì)胞形成的機(jī)制尚不完全清楚。促進(jìn)巨噬細(xì)胞膽固醇流出對(duì)減少細(xì)胞內(nèi)脂滴形成、防止巨噬細(xì)胞泡沫化和AS發(fā)生具有重要意義,已經(jīng)成為了研究減緩或防止AS發(fā)生的一個(gè)新靶點(diǎn)[8]。現(xiàn)有研究[9-11]表明,清道夫受體 B1(Scavenger receptor B1,SR-B1)、酰基輔酶A:膽固醇?;D(zhuǎn)移酶(acyl-coenzyme A1: cholesterol acyltransferase,ACAT1)和膽固醇酯水解酶(cholesteryl ester hydrolase,nCEH)與機(jī)體膽固醇的流出密切相關(guān)。SR-B1是重要的抗AS受體,參與膽固醇酯的逆轉(zhuǎn)運(yùn),能夠有效地促進(jìn)膽固醇的流出[12]。ACAT1和nCEH是調(diào)節(jié)機(jī)體內(nèi)膽固醇平衡代謝的關(guān)鍵蛋白[10],能夠維持細(xì)胞中游離膽固醇(free cholesterol,F(xiàn)C)的濃度,促進(jìn)膽固醇的流出。因此,分析PPPs對(duì)SR-B1、ACAT1和nCEH蛋白表達(dá)調(diào)控作用對(duì)解釋該物質(zhì)促進(jìn)膽固醇流出的作用機(jī)制至關(guān)重要。
本試驗(yàn)擬以PPPs為研究對(duì)象,構(gòu)建Raw264.7巨噬細(xì)胞源性泡沫細(xì)胞模型,探索PPPs對(duì)SR-B1及膽固醇平衡代謝關(guān)鍵蛋白酶(SR-B1、ACAT1和nCEH)表達(dá)的影響,分析在PPPs作用下ACAT1和nCEH酶活性的變化,為揭示PPPs促進(jìn)膽固醇流出及抑制泡沫細(xì)胞形成的機(jī)制提供理論依據(jù)。
PPPs:紫外檢測(cè)多酚含量為60%,主要成分為鞣花酸、沒食子酸和安石榴苷,在濃度為0~50 μg/mL時(shí)對(duì)巨噬細(xì)胞無毒性[13],陜西天地源生物科技有限公司;
Raw264.7小鼠巨噬細(xì)胞:陜西師范大學(xué)食品營(yíng)養(yǎng)與安全實(shí)驗(yàn)室保存;
膽固醇測(cè)定試劑盒:北京普利來基因技術(shù)有限公司;
ox-LDL、高密度脂蛋白(High density lipoprotein,HDL):廣州奕源生物公司;
DMEM無酚紅基礎(chǔ)培養(yǎng)基:美國(guó)Hyclone公司;
胎牛血清:Gibco 10099-141,美國(guó)Gibco| Life Technologies公司;
ACAT1(BS8471):美國(guó)Bioworld Technology公司;
nCEH(ab111544)抗體、SR-B1抗體(ab52629):英國(guó)Abcam公司;
ACAT1、nCEH的ELISA試劑盒:上海酶聯(lián)生物技術(shù)有限公司。
普通倒置顯微鏡:OLYMPUS CKX41型,日本OLYMPUS公司;
全波長(zhǎng)酶標(biāo)儀:Multiskan GO型,美國(guó)熱電公司;
生物柜:ESCO AC2-4S1型,新加坡 ESCO有限公司;
脫色搖床:WD-9405A型,北京六一儀器廠;
暗匣:AX-Ⅱ型,廣東粵華醫(yī)療器械廠有限公司;
電泳儀:DYY-6C型,北京六一儀器廠。
1.3.1 Raw264.7巨噬細(xì)胞源性泡沫細(xì)胞模型的建立
收集對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的小鼠巨噬細(xì)胞Raw264.7,調(diào)整到適宜濃度,接種于12孔板,正常培養(yǎng)24 h后,更換無血清培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)12 h,使細(xì)胞同步化,然后分為正常對(duì)照組,泡沫細(xì)胞模型組(Ox-LDL)組,正常對(duì)照組更換新鮮培養(yǎng)基,泡沫細(xì)胞組加入含60 μg/mL Ox-LDL的培養(yǎng)基。繼續(xù)培養(yǎng)24 h,棄培養(yǎng)基用PBS清洗2次,然后對(duì)細(xì)胞進(jìn)行油紅O染色,測(cè)定其游離膽固醇和總膽固醇[14]。
1.3.2 石榴皮多酚對(duì)HDL介導(dǎo)的巨噬細(xì)胞膽固醇流出的影響 收集對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的小鼠巨噬細(xì)胞Raw264.7,調(diào)整到適宜濃度,接種于96孔板,正常培養(yǎng)24 h后,細(xì)胞用PBS清洗2次,更換無血清培養(yǎng)基,并分成4組(對(duì)照和藥物處理組),具體分組情況見表1,藥物組加入各濃度PPPs對(duì)細(xì)胞進(jìn)行預(yù)處理,1 h后加入ox-LDL(終濃度為60 μg/mL),再繼續(xù)培養(yǎng)24 h,之后更換含HDL(50 μg/mL)的無血清無酚紅培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),24 h后收集細(xì)胞液,4 ℃、10 000 r/min離心5 min,然后用膽固醇測(cè)定試劑盒測(cè)定上清膽固醇含量。
表1 細(xì)胞處理分組
1.3.3 Western blotting法檢測(cè)SR-B1、ACAT1和nCEH的蛋白表達(dá) 不同濃度PPPs預(yù)處理Raw264.7細(xì)胞1 h后,加入Ox-LDL共同作用泡沫細(xì)胞24 h后,收集細(xì)胞,確定蛋白濃度,然后將相同量的各蛋白樣品加入準(zhǔn)備好的各電泳孔中進(jìn)行10% SDS-PAGE電泳,然后將膠片轉(zhuǎn)膜至PVDF膜,用5%脫脂乳進(jìn)行封閉,再用濾紙吸干封閉液,加入稀釋好的一抗(ACAT1抗體,nCEH抗體,SR-B1抗體)孵育過夜,然后與二抗孵育,結(jié)束后進(jìn)行ECL顯色,并用Quantity-one軟件處理[15]。
1.3.4 細(xì)胞ACAT1和nCEH酶活性的檢測(cè) 不同濃度PPPs預(yù)處理Raw264.7細(xì)胞1 h后,加入Ox-LDL共同作用泡沫細(xì)胞24 h后,收集細(xì)胞,然后采用 ELISA試劑盒檢測(cè)ACAT1和nCEH的酶活力。
所得數(shù)據(jù)采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,用 SPSS13.0軟件分析,差異顯著性檢驗(yàn)采用單因素方差分析,并用 Duncan 法進(jìn)行多重比較,P<0.05 為差異顯著,P<0.01差異極顯著,表示差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
由表2和圖1可知,總膽固醇、游離膽固醇和膽固醇酯含量均明顯增加,總膽固醇增加了近2倍,細(xì)胞內(nèi)膽固醇酯占總膽固醇的比例(CE/TC)>50%,表示泡沫細(xì)胞模型建立成功[16]。油紅O染色結(jié)果顯示,巨噬細(xì)胞內(nèi)無明顯紅色脂滴,而泡沫細(xì)胞內(nèi)有大量紅色脂滴存在,進(jìn)一步顯示泡沫細(xì)胞模型構(gòu)建成功。
圖2顯示,隨著PPPs濃度的增加,HDL介導(dǎo)的總膽固醇流出量也呈遞增趨勢(shì),呈現(xiàn)一定的劑量效應(yīng)關(guān)系,但5,25 μg/mL 劑量均未能達(dá)到差異顯著性,50 μg/mL劑量則極顯著增加了膽固醇流出量,增加量達(dá)50%以上。
由圖3可知,Raw264.7細(xì)胞SR-B1蛋白的表達(dá)受到了PPPs影響,且當(dāng)PPPs濃度為25 μg/mL時(shí)調(diào)控作用最顯著。利用Quantity-one軟件對(duì)SDS-PAGE圖譜進(jìn)行量化,如圖4所示,當(dāng)PPPs的劑量為25,50 μg/mL時(shí),SR-B1蛋白的表達(dá)量顯著上調(diào)(P<0.01),且以25 μg/mL劑量對(duì)SR-B1的上調(diào)作用最強(qiáng)。但PPPs對(duì)SR-B1蛋白表達(dá)的影響并未呈現(xiàn)良好的劑量關(guān)系。
表2 細(xì)胞泡沫化程度
圖1 巨噬細(xì)胞和泡沫細(xì)胞油紅O染色圖Figure 1 Macrophage and foam cell oil red O
**表示與對(duì)照相比差異極顯著(P<0.01)
圖3 不同濃度PPPs作用下SR-B1受體表達(dá)圖譜
Figure 3 The expression pattern of SR-B1 receptor after treatments with different concentrations of PPPs
**表示與對(duì)照相比差異極顯著(P<0.01)
Figure 4 Effect of PPPS on the protein expression of SR-B1 in Raw264.7 Macrophages (n=3)
由圖5可知,PPPs處理組對(duì)Raw264.7細(xì)胞ACAT1和nCEH蛋白的表達(dá)無顯著影響。利用Quantity-one軟件量化后的結(jié)果(圖6),表明PPPs對(duì)Raw264.7細(xì)胞ACAT1和nCEH蛋白表達(dá)的作用不顯著(P>0.05)。
PPPs對(duì)Raw264.7細(xì)胞ACAT1和nCEH活性的影響見表3。在不同劑量PPPs受試物處理下,PPPs各劑量組顯著降低了ACAT1活性(P<0.01),而顯著升高了nCEH活性(P<0.01)。說明PPPs可以減少膽固醇酯化,減少泡沫細(xì)胞內(nèi)的脂滴。同時(shí)PPPs可以促進(jìn)膽固醇酯水解,使膽固醇變?yōu)橛坞x膽固醇,對(duì)促進(jìn)膽固醇的流出具有積極意義。
圖5 不同濃度PPPs作用下ACAT1和nCEH
Figure 5 The proteins expression pattern of ACAT1 and nCEH after treatments with different concentrations of PPPs
圖6 石榴皮多酚對(duì)Raw264.7細(xì)胞ACAT1和nCEH
Figure 6 Effect of PPPs on ACAT1 and nCEH protein expression in Raw264.7 macrophages (n=3)
表3 石榴皮多酚對(duì)Raw264.7細(xì)胞ACAT1和nCEH活性的影響?
? **表示與對(duì)照相比差異極顯著(P<0.01)。
本試驗(yàn)研究了PPPs對(duì)HDL介導(dǎo)的膽固醇流出及相關(guān)蛋白SR-B1的調(diào)控作用,并揭示了PPPs對(duì)膽固醇在細(xì)胞內(nèi)轉(zhuǎn)化的2個(gè)關(guān)鍵酶ACAT1和nCEH的影響。結(jié)果表明PPPs可以通過上調(diào)SR-B1蛋白促進(jìn)膽固醇流出,同時(shí),PPPs雖然未能顯著影響nCEH和ACAT1蛋白的表達(dá),但是降低了ACAT1的活性,提高了nCEH的活性,有助于減少巨噬細(xì)胞內(nèi)脂滴的蓄積,催化泡沫細(xì)胞脂滴中的膽固醇酯水解成游離膽固醇,并通過細(xì)胞膜上膽固醇運(yùn)載體ABCA1、SR-B1將游離膽固醇轉(zhuǎn)運(yùn)到外源性受體。本研究的結(jié)果完善了PPPs促進(jìn)Raw264.7巨噬細(xì)胞膽固醇流出的機(jī)理,解釋了泡沫細(xì)胞被PPPs抑制的機(jī)制,為利用PPPs防治動(dòng)脈粥樣硬化等心血管疾病提供了理論依據(jù)。
此外,本研究并未揭示PPPs對(duì)膽固醇流出關(guān)鍵酶ACAT1和nCEH酶活作用的機(jī)理,需要進(jìn)一步深入探索PPPs對(duì)ACAT1、nCEH酶活影響的途徑,從而更加全面地解釋PPPs促進(jìn)膽固醇流出的機(jī)制。