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        凡納濱對蝦野田村病毒RT-PCR檢測方法的建立及應(yīng)用

        2019-04-13 14:31:02張文文胡芳源唐紹林
        廣東海洋大學(xué)學(xué)報 2019年2期
        關(guān)鍵詞:凡納濱野田對蝦

        雷 燕,肖 洋,王 娟,張文文,胡芳源,唐紹林

        (1.廣州利洋水產(chǎn)科技股份有限公司, 廣東 廣州 510515;2.廣州金水動物保健品有限公司, 廣東 廣州 510515)

        凡納濱對蝦(Litopenaeus vannamei)又稱南美白對蝦,是我國重要養(yǎng)殖蝦種,為世界上養(yǎng)殖產(chǎn)量最高的三大優(yōu)良蝦類之一[1]。然而隨對蝦養(yǎng)殖業(yè)的發(fā)展,養(yǎng)殖環(huán)境惡化,凡納濱對蝦養(yǎng)殖中的病害問題日益嚴(yán)重。近年來,“偷死病”[2-5]是困擾凡納濱對蝦養(yǎng)殖的主要病害之一,導(dǎo)致嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失。2014年,中國水產(chǎn)科學(xué)研究院黃海水產(chǎn)研究所科研人員通過組織病理學(xué)分析、人工感染實驗、疑似病原基因進(jìn)化分析、病毒分離純化和熒光原位雜交等手段,證實新型野田村病毒(Litopenaeus vannamei nodavirus,LVNV)是導(dǎo)致凡納濱對蝦“偷死病”病原之一[6-7]。凡納濱對蝦野田村病毒隸屬于野田村病毒科(Nodaviridae)的 α野田村病毒屬(Alphanodavirus),是近年來發(fā)現(xiàn)的一種新興病原體。感染野田村病毒的凡納濱對蝦臨床癥狀主要為肝胰腺萎縮和發(fā)白,空腸空胃,軟殼,生長緩慢,多數(shù)蝦腹部肌肉發(fā)白和壞死[7]。據(jù)調(diào)查,該病毒主要引起60 ~ 80 d的蝦發(fā)病,養(yǎng)殖環(huán)境較差的池塘死亡率高達(dá)80%[7]。

        對于野田村病毒的傳染源、傳播途徑和感染方式尚無明確結(jié)論,亦無針對性治療方法。為及早發(fā)現(xiàn)養(yǎng)殖凡納濱對蝦是否感染野田村病毒,及時對臨床發(fā)病病例進(jìn)行針對性處理,有必要建立一種準(zhǔn)確、快速、靈敏、特異的檢測方法。目前,針對水產(chǎn)動物病原檢測的方法有原位雜交、ELISA、膠體金試紙條、PCR及LAMP等,在實際檢測過程中,原位雜交和ELISA耗時長,靈敏度低;膠體金試紙條雖檢測快,但靈敏度偏低;LAMP則存在假陽性較高的情況。因PCR檢測方法有較高的特異性和敏感性,已廣泛應(yīng)用于水產(chǎn)動物病原微生物的檢測和診斷。張達(dá)云等[8]建立了對蝦偷死野田村病毒的檢測方法,但尚未應(yīng)用于對臨床病料進(jìn)行檢測。潘曉藝等[9]建立了羅氏沼蝦野田村病毒的 RT-PCR檢測方法,但該方法對凡納濱對蝦野田村病毒無特異性。筆者建立針對凡納濱對蝦野田村病毒的特異性RT-PCR檢測方法,為臨床對該病的準(zhǔn)確診斷檢測提供一種快速、敏感、準(zhǔn)確的技術(shù)手段,以盡早檢測,及時處理,減少損失。

        1 材料和方法

        1.1 材料

        野田村病毒陽性材料采自福建省漳州市某凡納濱對蝦養(yǎng)殖場,由廣州利洋水產(chǎn)科技股份有限公司水產(chǎn)動物疾控中心實驗室(下稱“本實驗室”)收集、PCR擴(kuò)增和測序鑒定并保存。健康凡納濱對蝦采自廣東省廣州市。白斑癥病毒(White spot syndrome virus,WSSV)、對蝦桿狀病毒(Baculovirus penaei,BP)、傳染性皮下及造血器官壞死病毒(Infectious hypodermal and hematopoietic necrosis virus,IHHNV)、肝胰腺細(xì)小病毒(Hepatopancereatic parvovirus,HPV)、黃頭病毒(Yellow head virus,YHV)、傳染性肌肉壞死病毒(Infectious myonecrosis virus,IMNV)、桃拉病毒(Taura syndrome virus,TSV)陽性材料由本實驗室收集,并經(jīng)PCR擴(kuò)增和測序鑒定,保存。凡納濱對蝦野田村病毒重組質(zhì)粒由本實驗室構(gòu)建保存。臨床樣品分別采自福建、廣東、海南、廣西、江蘇、浙江、山東等地凡納濱對蝦養(yǎng)殖場。

        大腸桿菌 DH5α感受態(tài)細(xì)胞、2×Taq PCR MasterMix、普通瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒、高純度質(zhì)粒小量抽提試盒等購自天根生化科技(北京)有限公司,由本實驗室繁殖保存。pMD19-T載體、RNAiso Plus RNA提取試劑、PrimeScriptTMRT Reagent Kit、DL2000 DNA分子標(biāo)準(zhǔn)購自寶生物工程(大連)有限公司。其他試劑均為國產(chǎn)分析純。

        1.2 引物設(shè)計與合成

        根據(jù)GenBank中野田村病毒的基因序列(登錄號:KM112247)設(shè)計 1對特異性的引物序列。上游引物:5′ -TTGAAGGCTATCTCGTGACAG-3′;下游引物:5′ -ATTAGCTTCGTATTTGCTGGC-3′,預(yù)擴(kuò)增片段長度為413 bp,引物由華大基因科技股份有限公司合成。

        1.3 RNA的提取

        取野田村病毒陽性凡納濱對蝦的鰓和肌肉組織,加入600 μL 滅菌雙蒸水,充分勻漿,于- 20 ℃冰箱凍融3次,以6 000 r/min低速離心,取上清液,用RNA抽提試劑RNAiso Plus提取上清液中的病毒RNA,所提RNA加入60 μL滅菌的焦碳酸二乙酯(DEPC)處理水溶解,保存于- 80 ℃下,備用。待檢凡納濱對蝦及健康凡納濱對蝦組織樣品也按照上述方法取樣,研磨處理后抽提RNA。

        1.4 RT-PCR檢測及測序驗證

        反轉(zhuǎn)錄(RT)反應(yīng)體系(10 μL):陽性樣品的病毒 RNA 模板 7 μL,5×PrimeScript Buffer 2 μL,PrimeScript RT Enzyme Mix I 0.5 μL,Random 6 mers 0.5 μL。反應(yīng)條件:37 ℃ 15 min,85 ℃ 5 s,4 ℃下保存,得cDNA產(chǎn)物。

        擴(kuò)增體系(20 μL):2×Taq PCR MasterMix10 μL、滅菌雙蒸水 6 μL、cDNA 模板 3 μL 和 10 μmol/L上下游引物各 0.5 μL。反應(yīng)參數(shù):95 ℃ 5 min,95 ℃30 s,55 ℃ 35 s,72 ℃ 30 s,共 30 個循環(huán);72 ℃ 10 min,4 ℃保存。用12 mg/mL瓊脂糖凝膠電泳檢測擴(kuò)增結(jié)果。用膠回收試劑盒純化目的條帶,與pMD19-T 載體于16 ℃下連接4 h以上,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化至E.coliDH5α感受態(tài)細(xì)胞,涂布于含50 μg/mL氨芐青霉素(Amp+)的LB固體培養(yǎng)基上,倒置于37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)12 h,從培養(yǎng)皿上挑取陽性重組質(zhì)粒菌落接種于 5 mL含 50 μg/mL Amp+的LB液體培養(yǎng)基中,37 ℃下震蕩培養(yǎng)12 ~14 h,用高純度質(zhì)粒小提試劑盒提取質(zhì)粒。對重組質(zhì)粒用F/R引物進(jìn)行PCR 鑒定。重組質(zhì)粒送華大基因科技股份有限公司測序,結(jié)果提交NCBI 中的BLAST進(jìn)行序列比對,利用DNAStar5.0、cluxtal X等生物信息學(xué)軟件進(jìn)行序列分析。

        1.5 RT-PCR反應(yīng)條件的優(yōu)化

        參考文獻(xiàn)[8-9]進(jìn)行。通過調(diào)整 Taq酶濃度、dNTPs濃度、Mg2+濃度、引物濃度、模板濃度、退火溫度、延伸時間等,對PCR反應(yīng)體系和反應(yīng)程序進(jìn)行優(yōu)化,以獲得最優(yōu)的反應(yīng)體系和反應(yīng)程序。

        1.6 RT-PCR特異性試驗

        參考文獻(xiàn)[8-9]進(jìn)行。分別提取健康蝦和野田村病毒陽性蝦、WSSV陽性蝦、IHHNV陽性蝦、BP陽性蝦、HPV陽性蝦、YHV陽性蝦、IMNV陽性蝦和TSV陽性蝦的核酸,作為模板,按照1.5中最優(yōu)的反應(yīng)體系和反應(yīng)程序進(jìn)行 RT-PCR,觀察記錄反應(yīng)的特異性。

        1.7 RT-PCR敏感性試驗

        參考文獻(xiàn)[6-7]進(jìn)行。對構(gòu)建的重組質(zhì)粒的濃度進(jìn)行測定后,按 10倍遞增稀釋成 1 ng/mL、100 pg/mL、10 pg/mL、1 pg/mL、100 fg/mL、10 fg/mL、1 fg/mL,再以各濃度梯度的質(zhì)粒作為反應(yīng)的模板,根據(jù)1.5中已獲得的最佳反應(yīng)體系和反應(yīng)程序進(jìn)行PCR,反應(yīng)結(jié)束后取8 μL PCR產(chǎn)物用12 mg/mL瓊脂糖凝膠電泳檢測擴(kuò)增結(jié)果,檢測所建立方法可檢出的最低模板量。

        1.8 臨床樣品檢測試驗

        應(yīng)用本研究建立的野田村病毒特異性 RT-PCR檢測方法,對收集自福建、廣東、海南、廣西、江蘇、浙江、山東等地的386份臨床樣品進(jìn)行處理和RT-PCR檢測,檢驗新建立的 RT-PCR檢測方法的臨床實用性。

        2 結(jié)果

        2.1 RT-PCR檢測方法的建立

        利用設(shè)計合成的針對于野田村病毒特異性引物,對野田村病毒陽性凡納濱對蝦樣品進(jìn)行RT-PCR擴(kuò)增,得到與目的條帶大小相符的特異性片段(圖1)。將PCR陽性產(chǎn)物分別回收、連接、轉(zhuǎn)化、克隆和測序,得到一條長度為413 bp的基因序列,序列比對結(jié)果顯示,其與GenBank中獲得的野田村病毒基因的序列同源性為99.8%。

        圖1 野田村病毒陽性凡納濱對蝦樣品的RT-PCR檢測結(jié)果Fig.1 Electrophoresis of RT-PCR detection of nodavirus in positive Litopenaeus vannamei

        2.2 RT-PCR反應(yīng)條件的優(yōu)化

        比較不同反應(yīng)體系和反應(yīng)程序下擴(kuò)增產(chǎn)物的電泳結(jié)果(圖2 ~ 5),圖2、3可見,Mg2+和引物用量對PCR反應(yīng)結(jié)果無影響,圖4、5可見,5 U/μL的 Taq酶使用量大于 0.5 μL時,退火溫度高于52.7 ℃時,PCR擴(kuò)增結(jié)果一致,但為防止出現(xiàn)非特異性擴(kuò)增,選擇 Taq酶使用量 0.5 μL,退火溫度58 ℃,因此,最終確定反應(yīng)體系(20 μL)為:2×Taq PCR MasterMix 10 μL,滅菌雙蒸水 7 μL,cDNA 模板 2 μL,10 μmol/L 上下游引物各 0.5 μL;反應(yīng)程序為:95 ℃ 5 min,95 ℃ 30 s,58 ℃ 35 s,72℃ 30 s,共30個循環(huán);72 ℃ 10 min,4 ℃條件下保存。

        圖2 不同引物下PCR擴(kuò)增結(jié)果Fig.2 PCR amplification at different primer level

        圖3 不同Mg2 +下PCR擴(kuò)增結(jié)果Fig.3 PCR amplification at different Mg2+ level

        圖4 不同Taq酶下PCR擴(kuò)增結(jié)果Fig.4 PCR amplification at different Taq level

        圖5 不同退火溫度下PCR擴(kuò)增結(jié)果Fig.5 PCR amplification at different annealing temperature

        2.3 RT-PCR特異性試驗

        分別提取健康蝦和野田村病毒陽性蝦、WSSV陽性蝦、IHHNV陽性蝦、BP陽性蝦、HPV陽性蝦、YHV陽性蝦、IMNV陽性蝦和TSV陽性蝦的核酸,作為模板,按照1.5中所獲得最優(yōu)的反應(yīng)體系和反應(yīng)程序進(jìn)行(RT-)PCR,對新建方法進(jìn)行特異性分析,結(jié)果表明,僅野田村病毒陽性樣品可擴(kuò)增出與試驗預(yù)期大小相符的目的條帶,健康蝦樣品及其他對照組樣品均未擴(kuò)增出任何條帶(圖6)。

        圖6 特異性擴(kuò)增結(jié)果Fig.6 Result of specific amplification

        2.4 RT-PCR敏感性試驗

        對不同濃度的質(zhì)粒模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,檢驗新建方法的敏感性,結(jié)果表明,該RT-PCR檢測方法可檢出的最低質(zhì)粒模板濃度為100 fg/mL(圖7)。

        圖7 敏感性試驗結(jié)果Fig.7 Result of sensitivity detection

        2.5 臨床檢測結(jié)果

        用建立的針對野田村病毒的特異性RT-PCR檢測方法,對386份采自福建、廣東、海南、廣西、江蘇、浙江、山東等地養(yǎng)殖場的臨床發(fā)病凡納濱對蝦樣品進(jìn)行野田村病毒RT-PCR檢測,結(jié)果見表1。

        表1 不同地區(qū)臨床凡納濱對蝦樣品野田村病毒的RT-PCR檢測結(jié)果Table 1 Detection results of nodavirus in clinical samples collected from different areas

        3 討論

        目前,世界范圍內(nèi)危害養(yǎng)殖凡納濱對蝦的主要病原有白斑癥病毒(WSSV)、對蝦桿狀病毒(BP)、傳染性皮下及造血器官壞死病毒(IHHNV)、肝胰腺細(xì)小病毒(HPV)、黃頭病毒(YHV)、傳染性肌肉壞死病毒(IMNV)、桃拉病毒(TSV)、蝦肝腸胞蟲(EHP)和肝胰腺壞死性細(xì)菌(AHPND)等,為及時發(fā)現(xiàn)和監(jiān)測這些病原體,均已建立針對性的快速檢測技術(shù)[10-14]。對于凡納濱對蝦野田村病毒,其危害嚴(yán)重程度、流行程度及傳播方式尚不清楚,亦無針對性的治療措施。

        RT-PCR 檢測技術(shù)作為水產(chǎn)動物病原檢測的一種常規(guī)高靈敏的病原檢測手段,已應(yīng)用于許多病原微生物檢測。本研究參照GenBank中凡納濱對蝦野田村病毒的基因序列,設(shè)計合成了1對預(yù)擴(kuò)增片段長為413 bp的特異性檢測引物,建立的針對凡納濱對蝦野田村病毒的特異性RT-PCR 檢測方法,可以從 100 fg/mL重組質(zhì)粒中擴(kuò)增出特異性的目標(biāo)片段,對健康蝦、WSSV陽性蝦、BP陽性蝦、IHHNV陽性蝦、HPV陽性蝦、YHV陽性蝦、IMNV陽性蝦和TSV陽性蝦的檢測均呈陰性,證明該 RT-PCR檢測方法對凡納濱對蝦野田村病毒有高度特異性和靈敏度。本研究建立的RT-PCR檢測方法,相對于其他檢測方法,有操作簡單、檢測時間短等優(yōu)越性,可在4 h內(nèi)完成大量樣品的檢測,適用于對大量臨床樣品的快速檢測。

        對采集的386份臨床樣品檢測結(jié)果顯示,野田村病毒在福建地區(qū)的檢出率較高,可能與樣品的采集時間和野田村病毒的流行水溫有關(guān),福建地區(qū)的樣品主要采集于3月份,池塘水溫24 ℃。進(jìn)一步對陽性樣品測序比對,結(jié)果準(zhǔn)確,表明該方法可應(yīng)用于臨床病料的檢測。本研究建立的RT-PCT檢測方法,可為凡納濱對蝦野田村病毒的流行情況和傳播途徑的調(diào)查提供可靠的技術(shù)手段,為臨床對該病的預(yù)防控制提供理論依據(jù)。

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