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        誘發(fā)肺水腫動(dòng)物模型方法及評(píng)價(jià)

        2019-02-21 09:50:24張丹參王非凡
        神經(jīng)藥理學(xué)報(bào) 2019年5期
        關(guān)鍵詞:染毒肺水腫家兔

        張丹參 王非凡

        河北科技大學(xué),石家莊,050018,中國(guó)

        肺水腫是指肺毛細(xì)血管內(nèi)液體滲入肺間質(zhì)和肺泡,使肺血管外液量增多的病理狀態(tài)。急性肺水腫的臨床表現(xiàn)為突然發(fā)病、呼吸困難、紫紺、咳嗽、咳無(wú)色或粉紅色泡沫,肺有彌漫性濕啰音,重者因呼吸衰竭而死亡,X線檢查表現(xiàn)呈兩肺蝶形模糊陰影,是呼吸系統(tǒng)臨床急癥之一[1]。引起肺水腫的原因雖然各種各樣,但大多數(shù)是由于肺毛細(xì)血管壁通透性增加或毛細(xì)血管內(nèi)血壓升高所致。肺水腫動(dòng)物模型的復(fù)制,常采用注射一定的化學(xué)物質(zhì)(如硝酸銀、氯化銨)或吸入一定量的化學(xué)毒氣(如氯氣、雙光氣)等方法。肺水腫的典型表現(xiàn)有呼吸急促、呼吸困難,聽(tīng)診有濕啰音,氣管插管口有粉紅色泡沫痰溢出。

        1 誘發(fā)肺水腫動(dòng)物模型方法

        1.1 氯氣吸入法致肺水腫模型

        小鼠體重25 g 左右,用1 g 重鉻酸鉀加5 mL 濃氯化氫,使瓶中生成薄薄一層云霧狀氣體后,將動(dòng)物投于瓶中,小鼠吸入氯氣而致肺水腫。

        高濃度的氯氣可引起嚴(yán)重的呼吸系統(tǒng)損傷。關(guān)于氯氣的致傷機(jī)制目前主要認(rèn)為是氯氣與呼吸道黏膜接觸后發(fā)生如下反應(yīng):Cl2+H2O→HOCl+HCl。其中HOCl是主要的致傷物質(zhì),可引起黏膜上皮細(xì)胞和肺泡上皮的壞死脫落,且可直接導(dǎo)致肺微血管通透性增加。此外,HCl 也可使肺泡微血管對(duì)蛋白質(zhì)的通透性增加[2]。

        1.1.1 小鼠氯氣吸入法致肺水腫模型

        張洪偉等[2]建立了鼠的實(shí)驗(yàn)性肺水腫動(dòng)物模型,取小白鼠一只,稱體質(zhì)量,計(jì)數(shù)呼吸頻率及觀察呼吸深度。將鼠放入廣口瓶中慢慢通入氯氣,待瓶中生成一層薄薄云霧狀氣體后中止通氣。觀察動(dòng)物一般表現(xiàn)及呼吸變化。動(dòng)物死后即解剖,切開(kāi)胸腔觀察肺組織變化,然后用線結(jié)扎氣管下端,在結(jié)扎的上端剪斷氣管取出全肺,清除肺周圍的其他組織。將肺放在玻璃培養(yǎng)皿內(nèi),用紙吸去其外表水分,稱取肺的質(zhì)量,計(jì)算肺占體重的百分?jǐn)?shù),與正常動(dòng)物對(duì)照[2]。

        1.2 甲醛吸入法致肺水腫模型

        通過(guò)自制封閉裝置,連續(xù)通氣促進(jìn)甲醛揮發(fā)并結(jié)合間歇噴霧,給大鼠持續(xù)吸 入高濃度甲醛揮發(fā)氣體制作肺水腫動(dòng)物模型[3]。

        甲醛吸入致大鼠急性肺水腫動(dòng)物模型的制作關(guān)鍵在幾個(gè)方面:即控制好甲醛濃度、染毒溫度、染毒時(shí)間和鼠均吸毒流量以及動(dòng)物年齡等,若甲醛濃度過(guò)低,如染毒裝置敞開(kāi)或染毒空間小而鼠密度過(guò)大,染毒需要時(shí)間延長(zhǎng)且效果不理想[4];相反,如果一次放入大鼠數(shù)量過(guò)少,導(dǎo)致鼠均吸入毒氣濃度高流量過(guò)大,除非縮短染毒時(shí)間,否則動(dòng)物肺水腫嚴(yán)重,死亡率增高。如果溫度過(guò)高,如35℃,則動(dòng)物易中毒且較深,溫度低如 18~20℃則中毒較溫和。染毒時(shí)間則與中毒成正相關(guān),時(shí)間長(zhǎng)染毒深。成年鼠或許比未成年鼠更能耐受。以上各因素恰當(dāng)搭配,才能做出理想的動(dòng)物模型[5]。

        1.2.1 大鼠甲醛吸入法致肺水腫模型

        梁志鋒等[5]建立了鼠的實(shí)驗(yàn)性肺水腫動(dòng)物模型。大鼠按隨機(jī)數(shù)字表分對(duì)照組(10只)和甲醛組(14只)。稱量,標(biāo)記,裝入大鼠籠中,置于染毒箱正中,啟動(dòng)加氧泵并蓋好箱蓋,動(dòng)物出現(xiàn)明顯癥狀時(shí)開(kāi)始計(jì)時(shí),讓大鼠在箱內(nèi)連續(xù)吸入甲醛染毒素2 h,密切觀察大鼠的一般反應(yīng)情況并記錄,期間每隔 25~30 min 給箱內(nèi)噴入霧化甲醛1次,每次約10 mL 。染毒結(jié)束后取出大鼠,放室外通風(fēng)處,禁食不禁水,過(guò)5 h 后大鼠 頸椎脫臼處死,稱體質(zhì)量及心臟和肺臟濕質(zhì)量,計(jì)算心肺系數(shù)、肺指數(shù)[6]。

        1.3 雙光氣吸入致肺水腫模型

        將12 mg·L-1雙光氣滴在濾紙上,干后放入密閉容器內(nèi),將小鼠置于容器內(nèi)15 min,即可形成肺水腫,全部操作應(yīng)在通風(fēng)櫥進(jìn)行數(shù)[7]。

        雙光氣主要作用于呼吸器官,認(rèn)為是刺激呼吸道感受器,通過(guò)迷走神經(jīng)將沖動(dòng)傳入四疊體以下中樞,再通過(guò)交感神經(jīng)將沖動(dòng)傳至肺血管,使其通透性增高,而發(fā)生肺水腫。

        1.3.1 大鼠雙光氣吸入法致肺水腫模型

        劉瑞等[5]建立了鼠的實(shí)驗(yàn)性肺水腫動(dòng)物模型。小鼠50只,雌雄各半,體質(zhì)量為18~23 g,隨機(jī)分為5組:正常對(duì)照組、光氣染毒劑量32、39、46、53 mg·L-1組,每組小鼠各10只。正常對(duì)照組小鼠放入動(dòng)態(tài)染毒柜中 5 min,染毒組小鼠放入染毒柜中,分別給予 32、39、46 和53 mg·L-1的光氣,染毒 5 min[8]。

        指標(biāo)測(cè)定染毒后4 h 斷頭取血,分離血清,測(cè)定血清丙二醛(malonic dialdehyde,MDA)含量。取肺臟,稱量肺臟濕重,放入75℃ 烤箱烘烤 24 h,直至恒重,稱量肺臟干重,計(jì)算肺臟濕干比。取肝臟,左下葉用體積分?jǐn)?shù)為 4%的甲醛固定HE 染色;其余肝臟加生理鹽水制成1∶5 的勻漿液,3 000 g 離心 10 min,取上清測(cè)定 MDA 含量、總超氧化物歧化酶(total superoxide dismutase,T-SOD)活力。血清和肝勻漿MDA 含量測(cè)定,采用改進(jìn)的硫代巴比妥酸熒光法,T-SOD 活力測(cè)定,采用改良鹽酸羥胺法[9]。

        1.4 氯化銨中毒致肺水腫模型

        動(dòng)物選大鼠、小鼠、豚鼠,分別于腹腔注射氯化銨0.6 mL·100g-1(大鼠)、0.15 mL·10 g-1(小鼠)和0.5~0.7 mL·kg-1(豚鼠),使其藥液濃度分別達(dá)6%,3%,6%[10]。

        氯化銨中毒性肺水腫,認(rèn)為是通過(guò)神經(jīng)系統(tǒng)選擇性地對(duì)肺毛細(xì)血管起作用,使毛細(xì)血管擴(kuò)張、通透性增加,而致肺水腫。

        1.4.1 大鼠氯化銨中毒致肺水腫模型

        薛敬禮等[10]建立了鼠的實(shí)驗(yàn)性肺水腫動(dòng)物模型。稱重實(shí)驗(yàn)組大鼠腹腔注射6%氯化銨,然后觀察一般情況和呼吸,存活時(shí)間。對(duì)照組不作任何處理,對(duì)動(dòng)物實(shí)行安樂(lè)死。解剖,先結(jié)扎氣管以免液體外溢,將肺和心臟一起取出,剪除心臟和其它脂肪組織,用濾紙吸去肺表面的液體,用天平稱兩肺質(zhì)量,計(jì)算肺質(zhì)量系數(shù),若肺質(zhì)量系數(shù)>1%,證明肺水腫已形成[10]。

        1.5 快速生理鹽水輸液致肺水腫模型

        家兔或犬,靜脈快速輸入大量生理鹽水,按每分鐘40 mL·kg-1注入動(dòng)物全血量1~1.5 倍時(shí)即可發(fā)生肺水腫[11]。

        在大量快速輸液基礎(chǔ)上,輸注腎上腺素,可引起外周血管廣泛收縮,導(dǎo)致血液由體循環(huán)急速轉(zhuǎn)移到肺循環(huán),加之毛細(xì)血管通透性增高,未能為左心所代償,結(jié)果使左心房壓力和肺毛細(xì)血管流體靜壓突然升高,液體進(jìn)入肺泡及間質(zhì)增多,影響肺呼吸功能,而出現(xiàn)肺水腫。

        1.5.1 家兔快速輸液致肺水腫模型

        陳德森等[9]建立了家兔的實(shí)驗(yàn)性肺水腫動(dòng)物模型。稱重家兔2%普魯卡因局部麻醉,將動(dòng)物仰臥固定于實(shí)驗(yàn)臺(tái)上,分離一側(cè)頸總動(dòng)脈以備取血,用BL-410生物機(jī)能實(shí)驗(yàn)系統(tǒng)記錄心率及呼吸頻率。注入生理鹽水(10 mL·kg-1),迷走神經(jīng)組切斷家兔頸部?jī)蓚?cè)迷走神經(jīng)。各組動(dòng)物以出現(xiàn)進(jìn)行性呼吸困難、發(fā)紺、鼻溢出粉紅色泡沫樣痰,可聞及濕性啰音并逐漸增強(qiáng)為建模成功[13]。

        1.5.2 家養(yǎng)鴨快速輸液致肺水腫模型

        鄒亞超等[1]建立了家鴨的實(shí)驗(yàn)性肺水腫動(dòng)物模型。準(zhǔn)確稱重后將鴨仰臥固定于動(dòng)物手術(shù)臺(tái)上,1%普魯卡因局麻下切頸前皮膚,分離和插管氣管、一側(cè)動(dòng)脈和另一側(cè)靜脈。記錄正常的呼吸,血壓和肺部呼吸音。按160 mL·kg-1輸入37℃生理鹽水,輸液濃度150~180 滴·min-1,當(dāng)輸液達(dá)總量2/3 時(shí),注入腎上腺素0.5 mL·kg-1,觀察呼吸,血壓和肺部呼吸音的變化。當(dāng)肺部出現(xiàn)濕性羅音和氣管插管出現(xiàn)粉紅分泡沫溢液時(shí),證明動(dòng)物出現(xiàn)急性肺水腫。剪開(kāi)胸前壁、結(jié)扎氣管取出肺,準(zhǔn)確稱取肺重量,計(jì)算肺系數(shù)[1]。

        1.5.3 貓快速輸液致肺水腫模型

        何建宇等[14]建立了家貓的實(shí)驗(yàn)性肺水腫動(dòng)物模型??焖佥斠褐滦乃ツP驮炷#杭邑堃?0% 烏拉坦1.2 mg·kg-1腹腔麻醉,仰臥手術(shù)臺(tái)固定。分離氣管及頸總動(dòng)脈,分別行氣管及頸總動(dòng)脈插管。氣管插管連接HX-200 動(dòng)物呼吸機(jī)機(jī)械通氣,頸總動(dòng)脈插管連接YH-4 型生理壓力傳感器,將換能器信號(hào)輸入微機(jī)BL-420 生物機(jī)能實(shí)驗(yàn)系統(tǒng)。沿胸骨中線打開(kāi)胸腔,剪開(kāi)心包,暴露心臟。縫制心包床后,再將一內(nèi)徑約0.20 cm的心室導(dǎo)管插入左心室,連接YH-4 型生理壓力傳感器,測(cè)量左室內(nèi)壓(left ventricular pressure,LVP),將LVP 信號(hào)輸入微機(jī)BL-420 生物機(jī)能實(shí)驗(yàn)系統(tǒng),測(cè)定左室舒張末期壓(left ventricular end-diastolic pressure,LVEDP)。同時(shí),對(duì)LVP 上升速度進(jìn)行微分計(jì)算,得到±dp/dtmax。動(dòng)物麻醉開(kāi)胸后,股靜脈給予生理鹽水20 mL·h-1以補(bǔ)充血容量。淘汰LVEDP>1.6 kPa 者。待血流動(dòng)力學(xué)各項(xiàng)指標(biāo)穩(wěn)定30 min 后,描記一段正常圖形和各種指標(biāo)的數(shù)值作為基礎(chǔ)值。先靜脈快速輸入生理鹽水250~300 mL,至LVEDP 達(dá)到或超過(guò)造模前值的150%并穩(wěn)定 30 min 后,確定為急性肺水腫模型造模成功[14]。

        1.6 高滲葡萄糖輸注致肺水腫模型

        動(dòng)物麻醉后,氣管插管,抬高固定臺(tái)頭端成30°角,保持氣管位于正中位,10%葡萄糖(1 mL·kg-1),將針頭插入氣管插管分叉處,在5 min 內(nèi)緩慢勻速地將葡萄糖液滴入氣管內(nèi),以造成滲透性肺水腫。

        大量快速輸液時(shí),血容量明顯增加,血液稀釋而致血管內(nèi)流體靜壓上升,膠體滲透壓下降,有利于水腫的發(fā)生。

        1.6.1 犬高滲葡萄糖輸注致肺水腫模型

        本地犬6只,雌雄各半,2月齡,體質(zhì)量(3±0.5)kg,將葡萄糖氯化鈉注射液按每千克體質(zhì)量100 mL 靜脈滴注,速度控制在 60 滴·min-1,對(duì)犬心率和呼吸音進(jìn)行監(jiān)測(cè)。待兩肺區(qū)濕啰音出現(xiàn)后,Xray 胸片檢查,觀察雙肺野陰影大小和程度。病理模型成功復(fù)制 后采用藥物進(jìn)行對(duì)癥治療,觀察動(dòng)物的各種表現(xiàn)并做好相關(guān)記錄。

        1.7 腎上腺素靜脈輸注致肺水腫模型

        沿家兔耳緣靜脈注入1∶5 000 腎上腺素0.4~0.6 mg·kg-1;或在快速輸入大量生理鹽水后,將0.1%腎上腺素0.5 mg·kg-1用生理鹽水稀釋10 倍后加入輸液瓶中,繼續(xù)滴注,可造成肺水腫[15]。

        腎上腺素復(fù)制肺水腫模型簡(jiǎn)單、易操作、臨床癥狀典型,經(jīng)濟(jì)易行且重復(fù)性好,有關(guān)檢測(cè)指標(biāo)的變化充分體現(xiàn)了該型肺水腫的許多臨床特點(diǎn)。在注入后5 min可聽(tīng)及濕啰音,30 min 后即出現(xiàn)粉紅色樣痰,所測(cè)得的肺系數(shù)大于正常值約3倍左右。

        1.7.1 大鼠腎上腺素靜脈輸注致肺水腫模型

        薛敬禮等[10]建立了大鼠的實(shí)驗(yàn)性肺水腫動(dòng)物模型。大鼠稱質(zhì)量后,用20%烏拉坦(5 mL·kg-1)腹腔注射麻醉或1%戊巴比妥鈉5 mL·kg-1肌肉注射麻醉,背位固定,做頸部正中縱切口(長(zhǎng)2 cm),分離氣管、左側(cè)頸總動(dòng)脈及右側(cè)頸淺靜脈。插入氣管插管固定,然后將其的一端與壓力換能器相連并連接在微機(jī)記錄系統(tǒng),描記呼吸曲線。

        結(jié)扎頸淺靜脈遠(yuǎn)心端,在近心端插入靜脈插管(內(nèi)充0.1%的肝素化生理鹽水)結(jié)扎固定,注入0.5%肝素(0.01 mL·kg-1)抗凝。結(jié)扎頸總動(dòng)脈遠(yuǎn)心端,動(dòng)脈夾夾閉近心端,插入充滿0.1%肝素的動(dòng)脈插管結(jié)扎固定,將動(dòng)脈插管經(jīng)壓力換能器連于記錄儀或微機(jī)系統(tǒng)上,記錄一段正常血壓曲線。經(jīng)頸淺靜脈推注0.01%的腎上腺素(0.1 mL·100 g-1),觀察動(dòng)物的表現(xiàn)及存活時(shí)間。動(dòng)物死亡或處死后,同上取出肺臟,稱重并計(jì)算肺質(zhì)量系數(shù)[10]。

        1.7.2 家兔腎上腺素靜脈輸注致肺水腫模型

        李燦等[15]建立了家兔的實(shí)驗(yàn)性肺水腫動(dòng)物模型。家兔稱重后耳緣靜脈注入20%烏拉坦(5 mL·kg-1)麻醉,背位固定,在頸部正中做長(zhǎng)6 cm 的縱切口,鈍性分離氣管和一側(cè)的頸淺靜脈。氣管插管用粗棉線結(jié)扎固定,然后將其一端與壓力換能器相連并連接在微機(jī)記錄系統(tǒng)上,描記呼吸曲線[15]。

        結(jié)扎頸淺靜脈遠(yuǎn)心端,在近心端插入連有輸液裝置的靜脈插管,打開(kāi)輸液裝置檢查是否通暢,然后將輸液滴數(shù)調(diào)到每分鐘10~15 滴,以防止血液凝固,觀察并描記正常呼吸曲線。

        輸入生理鹽水100 mL·kg-1,輸液速度控制在每分鐘150~180 滴,輸完后,將0.1%腎上腺素0.5 mg·kg-1用生理鹽水稀釋10 倍后加入輸液瓶中,繼續(xù)滴注。腎上腺素輸完后,可給少量生理鹽水,以每分鐘10~15 滴速度維持通道,以便必要時(shí)第二次給藥。

        當(dāng)動(dòng)物出現(xiàn)肺水腫典型表現(xiàn)時(shí),用止血鉗夾閉氣管,剪開(kāi)胸前壁,然后用粗棉線在氣管分叉處結(jié)扎,防止水腫液溢出,小心分離心臟和血管,將肺取出,用濾紙吸干肺表面水分后,準(zhǔn)確稱取肺質(zhì)量,計(jì)算肺質(zhì)量系數(shù)。

        1.8 油酸致肺水腫模型

        家兔耳緣靜脈注射油酸0.08 mL·kg-1,30 min 出現(xiàn)氣促、唇舌發(fā)紺,1 h 后即可發(fā)生肺水腫。

        油酸復(fù)制肺水腫模型方法簡(jiǎn)便、成功率高。但劑量小,癥狀不典型;大劑量,癥狀典型,但治療效果差,且病因與臨床差距甚遠(yuǎn)[16]。

        1.8.1 大鼠油酸靜脈注射致肺水腫模型

        張青峰等[17]建立了大鼠的實(shí)驗(yàn)性肺水腫動(dòng)物模型。將試驗(yàn)動(dòng)物大鼠隨機(jī)分成 2組,A組8只,B組12只。A組為正常對(duì)照組,不作任何處理;B組(試驗(yàn)組)為油酸致傷組,稱質(zhì)量,并沿大鼠尾靜脈注射油酸0.2 mL·kg-1,推注后觀察大鼠呼吸頻率、濕啰音、咳血、身體抽搐等體征變化出現(xiàn)的時(shí)間,并與 A組進(jìn)行比較。1.5 h 后處死,A組動(dòng)物也在同一時(shí)間處死。解剖時(shí),先結(jié)扎氣管以免液體外溢,然后將肺和心臟一起取出,剪除心臟和脂肪組織,并用濾紙吸去肺表面的液體,最后用天平分別稱量 A、B組大鼠的肺質(zhì)量,計(jì)算肺質(zhì)量系數(shù),若肺質(zhì)量系數(shù)>1%,證明肺水腫形成[17]。

        1.8.2 家兔油酸靜脈注射致肺水腫模型

        李燦等[15]建立了家兔的實(shí)驗(yàn)性肺水腫動(dòng)物模型。稱重,用25%烏拉坦100 mg·kg-1耳緣靜脈注射麻醉家兔,固定手術(shù)臺(tái)上。剪去頸部被毛,分離氣管,行氣管插管術(shù)。沿家兔耳緣靜脈注入油酸0.08 mL·kg-1,對(duì)照組不作任何處理。觀察家兔的呼吸及一般情況改變,通過(guò)計(jì)算機(jī)生物信號(hào)分析記錄系統(tǒng)描記呼吸曲線。若呼吸曲線明顯變淺變快或氣管內(nèi)涌出粉紅色泡沫樣液體,則提示肺水腫已形成,記錄肺水腫形成的時(shí)間。如有家兔死亡,記錄死亡時(shí)間。放血處死家兔,取氣管—支氣管—肺。用粗線自氣管下方結(jié)扎氣管,自上而下打開(kāi)胸腔,將肺和心臟一起取出,剪去心臟,用濾紙吸去肺表現(xiàn)的水分,天平稱兩肺質(zhì)量,計(jì)算肺質(zhì)量系數(shù),若肺質(zhì)量系數(shù)>5.0,證明肺水腫已形成[18]。

        1.8.3 小型豬油酸靜脈注射致肺水腫模型

        趙進(jìn)等[19]建立了小型豬的實(shí)驗(yàn)性肺水腫動(dòng)物模型。將實(shí)驗(yàn)動(dòng)物隨機(jī)分成 2組。A組為正常對(duì)照組,B組為油酸致傷組,每組10只。兩組動(dòng)物在實(shí)驗(yàn)前均禁食12 h。將動(dòng)物用 3%的戊巴比妥鈉5 mL 和速眠新1 mL 肌注麻醉后,俯臥位固定于手術(shù)臺(tái)。3%的戊巴比妥鈉 5 mL·h-1維持麻醉。A組(對(duì)照組)不作任何處理,B組沿小型豬耳緣靜脈緩慢注入油酸0.15 mL·kg-1,30 min 內(nèi)注完。觀察兩組動(dòng)物的呼吸及一般情況改變。B組動(dòng)物均以油酸推注4 h 后放血處死,A組動(dòng)物在同一時(shí)間放血處死,打開(kāi)胸腔,分離出氣管,于環(huán)狀軟骨下結(jié)扎,在結(jié)扎處以上切斷氣管。B組動(dòng)物用線在氣管分叉處結(jié)扎以防止肺水腫液滲出,將氣管連同整個(gè)肺臟取出,小心剔除肺外組織。

        1.9 氯仿靜脈注射致肺水腫模型

        家兔耳緣靜脈注射10%的氯仿0.1 mL·kg-1,10 min后呼吸變淺快,逐漸發(fā)展為呼吸困難、紫紺,發(fā)生肺水腫[15]。

        氯仿復(fù)制肺水腫起效快,癥狀典型,所測(cè)得的肺質(zhì)量系數(shù)大于正常值1 倍左右,但氯仿不穩(wěn)定,見(jiàn)光易分解,不易保存;且氯仿的毒性較大,容易損傷實(shí)驗(yàn)動(dòng)物。

        1.9.1 大鼠氯仿靜脈注射致肺水腫模型

        薛敬禮[10]等采用大鼠,稱重,實(shí)驗(yàn)組大鼠腹腔注射25%氯仿12 mL·kg-1,然后觀察一般情況和呼吸,存活時(shí)間。對(duì)照組不作任何處理,對(duì)動(dòng)物實(shí)行安樂(lè)死。解剖,先結(jié)扎氣管以免液體外溢,將肺和心臟一起取出,剪除心臟和其它脂肪組織,用濾紙吸去肺表面的液體,用天平稱兩肺質(zhì)量,計(jì)算肺質(zhì)量系數(shù),若肺質(zhì)量系數(shù)>1%,證明肺水腫已形成[10]。

        1.9.2 家兔氯仿靜脈注射致肺水腫模型

        李燦等[15]采用家兔,稱重,用25%烏拉坦100 mg·kg-1耳緣靜脈注射麻醉家兔,固定手術(shù)臺(tái)上。剪去頸部被毛,分離氣管,行氣管插管術(shù)。沿家兔耳緣靜脈注入10%氯仿(0.1 mL·kg-1),對(duì)照組不作任何處理。觀察家兔的呼吸及一般情況改變,通過(guò)計(jì)算機(jī)生物信號(hào)分析記錄系統(tǒng)描記呼吸曲線。若呼吸曲線明顯變淺變快或氣管內(nèi)涌出粉紅色泡沫樣液體,則提示肺水腫已形成,記錄肺水腫形成的時(shí)間。如有家兔死亡,記錄死亡時(shí)間。放血處死家兔,取氣管—支氣管—肺。用粗線自氣管下方結(jié)扎氣管,自上而下打開(kāi)胸腔,將肺和心臟一起取出,剪去心臟,用濾紙吸去肺表面的水分,天平稱兩肺質(zhì)量,計(jì)算肺質(zhì)量系數(shù),若肺質(zhì)量系數(shù)>5.0,證明肺水腫已形成[15]。

        1.10 高原反應(yīng)致肺水腫動(dòng)物模型

        利用低壓氧艙減壓大鼠,觀察大鼠在復(fù)合缺氧寒冷運(yùn)動(dòng)條件下的肺血流動(dòng)力學(xué)、肺組織病理形態(tài)學(xué)改變。

        高原肺水腫的發(fā)生主要取決于海拔高度、環(huán)境溫度、機(jī)體的適應(yīng)情況。國(guó)內(nèi)外學(xué)者認(rèn)為缺氧所致肺動(dòng)脈高壓是高原肺水腫發(fā)生的重要因素。內(nèi)皮功能失調(diào)和細(xì)胞損傷導(dǎo)致的肺毛細(xì)血管屏障通透性增加是發(fā)病機(jī)制之一[20]。

        張靜等[21]建立了大鼠的實(shí)驗(yàn)性肺水腫動(dòng)物模型。實(shí)驗(yàn)動(dòng)物分為平原對(duì)照組、缺氧寒冷運(yùn)動(dòng)組。HCE 實(shí)驗(yàn)條件為:持續(xù)減壓高度4 000 m,溫度在8:00~20:00為10℃,20:00 至次日8:00為4℃;濕度與外界環(huán)境相同;實(shí)驗(yàn)期間自由進(jìn)食和飲水,每日趕大鼠游泳運(yùn)動(dòng)6次,每 隔4 h l次,每次40 min。HCE 分為24、48、72 h 3個(gè)時(shí)相點(diǎn),分別檢測(cè)肺動(dòng)脈壓、心室壓、采取頸動(dòng)脈血后活殺取肺[21]。

        2 誘發(fā)肺水腫動(dòng)物模型的注意事項(xiàng)

        輸藥過(guò)程中,應(yīng)密切觀察呼吸曲線的變化,如無(wú)肺水腫的典型表現(xiàn),可重復(fù)使用腎上腺素,用法劑量同上,兩次間隔宜在10~15 min,不易過(guò)頻,直至出現(xiàn)肺水腫變化為止[22]。

        取肺時(shí)要小心,防止肺組織破裂和水腫液流出,否則影響肺系數(shù)的準(zhǔn)確性。肉眼觀察肺大體變化及雙肺底有無(wú)淤血發(fā)生,然后用刀片切開(kāi)肺組織,觀察擠壓時(shí)是否有水腫液溢出(注意其量、性質(zhì)、顏色)[23]。

        插完靜脈插管后,應(yīng)馬上以10~15 滴·min-1速度輸液,這樣可以防止靜脈插管內(nèi)凝血??刂坪幂斠核俣群洼斠毫?,過(guò)慢時(shí)實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組均不發(fā)生肺水腫,而過(guò)快時(shí)對(duì)照組也會(huì)發(fā)生肺水腫[24]。

        總之,動(dòng)物實(shí)驗(yàn)是生命科學(xué)研究及其他一些自然科學(xué)研究的重要手段,動(dòng)物肺水腫模型可以更好的研究人類發(fā)病原因、發(fā)病機(jī)理,對(duì)于臨床治療和藥物試驗(yàn)有重要的推動(dòng)作用。目前國(guó)內(nèi)外制備實(shí)驗(yàn)性肺水腫動(dòng)物模型方法很多,但是應(yīng)用不同方法和不同動(dòng)物導(dǎo)致的肺水腫結(jié)果都需要研究。通過(guò)肺水腫動(dòng)物實(shí)驗(yàn),為肺水腫防治研究提供模型依據(jù)。

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