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        晉西北酸粥發(fā)酵液中乳酸菌的潛在益生特性

        2019-02-15 02:56:26王琪劉聰景彥萍張敏范三紅
        食品與發(fā)酵工業(yè) 2019年2期
        關鍵詞:株菌膽鹽懸液

        王琪,劉聰,景彥萍,張敏,范三紅

        (山西大學 生命科學學院,山西 太原,030006)

        乳酸菌是發(fā)酵碳水化合物產(chǎn)生大量乳酸的一大類細菌。絕大部分乳酸菌是正常人、畜體內(nèi)極其重要的菌群,具有維持微生態(tài)平衡、提高免疫力、改善乳糖不耐癥等多種益生作用[1],因此在食品、醫(yī)藥等行業(yè)中應用非常廣泛。

        傳統(tǒng)發(fā)酵食品是利用有益微生物發(fā)酵谷物、豆類、乳、蔬菜及肉類等制成的食品,如醪糟、酸奶、泡菜、發(fā)酵香腸等[2]。目前已有大量研究發(fā)現(xiàn)傳統(tǒng)發(fā)酵食品中的乳酸菌具有潛在的益生特性[3-6]。同時,隨著抗生素的廣泛使用,益生菌的耐藥性也越來越受到關注[7-8]。

        晉西北酸粥是一種風味獨特、酸香濃郁的傳統(tǒng)谷物發(fā)酵食品,它以糜米為主要原料,經(jīng)微生物自然發(fā)酵而成。本文對晉西北酸粥發(fā)酵液中的乳酸菌進行了潛在益生特性和抗生素耐藥性的研究。這不僅可為晉西北酸粥的工業(yè)化生產(chǎn)提供理論指導和菌株保障,同時也可為功能性益生菌劑的開發(fā)及發(fā)酵食品奠定基礎。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        20株乳酸菌:本實驗室從晉西北酸粥中分離并于-80 ℃保存于含保護劑的MRS培養(yǎng)基中;金黃色葡萄球菌(Staphylococcusaureus)(ATCC 25923),購于中國微生物菌種保藏管理中心。

        牛膽鹽、膽固醇、細菌基因組DNA抽提試劑盒、瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒、DNA分子質(zhì)量標準、抗生素等,生工生物工程(上海)股份有限公司。

        MRS液體培養(yǎng)基:蛋白胨10 g、牛肉膏10 g、酵母膏5 g、葡萄糖20 g、K2HPO42 g、檸檬酸氫二銨2 g、乙酸鈉5 g、MgSO40.5 g、MnSO40.25 g、Tween-80 1 mL,蒸餾水1 000 mL,調(diào)pH 6.2~6.4,121 ℃滅菌15 min。

        MRS固體培養(yǎng)基:向1L MRS液體培養(yǎng)基中加20 g瓊脂,調(diào)pH 6.2~6.4,121 ℃滅菌15 min。

        MRS-THIO液體培養(yǎng)基:向100 mL MRS液體培養(yǎng)基中加入0.2 g硫代乙醇酸鈉,待充分溶解后,用1 mol/L 乙酸調(diào)pH 6.5,121 ℃滅菌15 min。

        1.2 儀器與設備

        ZWY-240恒溫培養(yǎng)振蕩器,上海智城分析儀器制造有限公司;SPX-250B-Z型生化培養(yǎng)箱、XM- 30R立式壓力蒸汽滅菌器,上海博迅實業(yè)有限公司醫(yī)療設備廠;HC- 2518高速離心機,安徽中科中佳科學儀器有限公司;Centrifuge 5430R小型臺式高速冷凍離心機,德國艾本德公司;TU-1810紫外可見分光光度計,北京普析通用儀器有限責任公司;JY92-ⅡN超聲波細胞粉碎機,寧波新芝生物科技股份有限公司;T100 Thermal Cycler PCR儀,Gel Doc 2000 UV凝膠成像系統(tǒng),美國Bio-Rad公司;YQX-Ⅱ厭氧培養(yǎng)箱,上海躍進醫(yī)療器械有限公司;DYY-6C型電泳儀,北京六一儀器廠。

        1.3 方法

        1.3.1 菌懸液的配制

        將活化后的菌株接種至MRS液體培養(yǎng)基中振蕩(150 r/min)傳代培養(yǎng)。將第3代培養(yǎng)物8 000×g離心10 min,取菌體沉淀用無菌PBS緩沖液(pH 6.5)洗滌3次后重懸,得到菌懸液。

        1.3.2 菌株的耐酸能力測定[9]

        取上述菌懸液,按φ=5%比例分別接種于pH值3.0和正常pH的MRS液體培養(yǎng)基中,混勻后于37 ℃厭氧培養(yǎng)。分別在接種后0 h和2.5 h取培養(yǎng)物,稀釋涂布MRS平板于37 ℃厭氧培養(yǎng)48 h后計數(shù),按公式(1)計算存活率。

        (1)

        式中:N1和N2分別為菌株接入pH 3.0的MRS液體培養(yǎng)基中培養(yǎng)2.5 h和0 h后的活菌數(shù)。

        選取存活率≥50%的菌株,接種到pH 3.0的MRS液體培養(yǎng)基中,于37 ℃厭氧培養(yǎng)24~96 h,若液體培養(yǎng)基變混濁,則菌株耐酸。

        1.3.3 菌株的耐膽鹽能力測定[10]

        將活化后的菌株按φ=3%接種量分別接種于含0.3、0.5、0.7 g/100 mL牛膽鹽的MRS液體培養(yǎng)基中,于37 ℃厭氧培養(yǎng)24 h,測定各菌液在560 nm的吸光度,以不添加牛膽鹽的培養(yǎng)物為對照。

        1.3.4 菌株的疏水性測定[10]

        將活化的菌株接種至MRS液體培養(yǎng)基中,于37 ℃厭氧培養(yǎng)24~48 h,8 000 ×g離心10 min,沉淀用除氧無菌PBS緩沖液(pH 6.5)洗滌3次后重懸,并調(diào)整密度使其A560nm值為1。取該菌懸液各4 mL,分別加入0.8 mL的甲苯和十六烷作為吸附劑,渦旋振蕩,待靜置分層后,取下層水相,測定其A560nm值。以無菌PBS緩沖液作空白對照,按公式(2)計算疏水率。

        (2)

        式中:A0和A1分別為菌液與吸附劑混勻前和混勻后的吸光度。

        1.3.5 菌株的體外降膽固醇能力測定

        將活化后的菌株按φ=53%接種量分別接種于含0.01 g/100 mL膽固醇的MRS-THIO液體培養(yǎng)基中,37 ℃厭氧培養(yǎng)24 h,8 000 ×g離心10 min,收集上清液。采用鄰苯二甲醛比色法[11]測定上清液中膽固醇含量,按公式(3)計算菌株的膽固醇降解率。

        (3)

        式中:A0和A1分別為未接菌的含膽固醇培養(yǎng)基和上清液在550 nm波長處的吸光度。

        1.3.6 菌株的體外抗氧化活性測定

        1.3.6.1 無細胞提取液的制備

        將活化好的菌株按φ=3%接種量接種于MRS液體培養(yǎng)基中,37 ℃厭氧培養(yǎng)24 h,8 000 ×g離心10 min,收集菌體,用除氧無菌PBS緩沖液(pH 6.5)洗滌3次后重懸,調(diào)整菌體密度分別為108、109、1010CFU/mL,每100 mL分別添加0.1 g溶菌酶,37 ℃恒溫水浴30 min,冰浴超聲破碎菌體(800 W,超聲2 s,間隔2 s,共15 min),于4 ℃、10 000 ×g離心20 min,上清液即為無細胞提取液,4 ℃保存待測。

        1.3.6.2 菌株對過氧化氫的耐受性測定[5]

        將活化好的菌株按φ=1%接種量分別接種于含不同濃度(0、0.4、0.7、1.0 mmol/L)過氧化氫和不含過氧化氫的MRS液體培養(yǎng)基中,37 ℃厭氧培養(yǎng)8 h,8 000 ×g離心15 min,收集菌體,使用除氧無菌PBS緩沖液(pH 6.5)洗滌3次,并重懸,測定A600nm值。

        1.3.6.3 菌株清除羥自由基(·OH)能力的測定[5]

        取0.435 mmol/L的亮綠l mL,0.5 mmol/L的FeSO42 mL,3 g/100 mL的過氧化氫1.5 mL,1 mL不同菌懸液密度的無細胞提取液,混勻,37 ℃水浴20 min。8 000 ×g離心15 min,取上清液測定A624nm值。按公式(4)計算·OH清除率。

        (4)

        式中:A為無Fenton試劑、無樣品、有亮綠體系的A624nm值;A0為有Fenton試劑、無樣品、有亮綠體系的A624nm值;As為有Fenton試劑、有樣品、有亮綠體系的A624nm值。

        1.3.6.4 菌株清除DPPH自由基能力的測定[12]

        取1 mL不同菌懸液密度的菌液加入2 mL DPPH- 甲醇溶液(0.1 mmol/L),混勻后室溫避光反應30 min,8 000 ×g離心15 min,取上清液測定A517nm值,用無菌水空白調(diào)零??瞻捉M以等體積甲醇代替DPPH溶液,對照組以等體積無菌水代替菌液。按公式(5)計算DPPH自由基清除率。

        (5)

        式中:A、A0、As分別為空白組、對照組、樣品組的A517nm值。

        1.3.7 乳酸菌16S rDNA序列的測定

        用試劑盒分別提取每株菌的基因組DNA,經(jīng)0.7%瓊脂糖凝膠電泳檢測。采用細菌16S rDNA的通用引物338F-806R擴增V3~V4區(qū)序列。338F:5′-ACTCCTACGGGAGGCAGCAG-3′,806R:5′-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3′。反應體系(50 μL):2×Taq PCR Master Mix 25 μL;引物(20 mmol/L)各5 μL;模板2 μL;ddH2O補至50 μL。反應條件:94 ℃預變性5 min;94 ℃變性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸90 s,35個循環(huán)后,72 ℃保溫10 min。擴增產(chǎn)物經(jīng)2%瓊脂糖凝膠電泳檢測后回收并測序。測序結果在GenBank中進行BLAST比對,并提交序列至NCBI獲得接收號(accession number)。

        1.3.8 藥物敏感性測定[13]

        藥敏紙片的制備:將直徑為7 mm的圓形濾紙片完全吸附以下不同效價的抗生素,氨芐青霉素、鏈霉素、氨芐西林均為10 μg,紅霉素15 μg,頭孢噻肟、氯霉素和四環(huán)素均為30 μg[14]。

        采用藥物紙片瓊脂擴散法測定菌株的藥敏性。將菌株分別接種于MRS液體培養(yǎng)基中,于37 ℃厭氧培養(yǎng)24~48 h,離心收集菌體,用無菌生理鹽水配成含菌數(shù)為107CFU/mL的菌懸液,取100 μL菌懸液均勻涂布于MRS平板,待平板表面干燥后將藥敏紙片貼于表面,每個平板內(nèi)等間距放置3張含有同種抗生素的紙片,37 ℃厭氧培養(yǎng)24 h,測量抑菌圈的直徑。重復3次取平均值。質(zhì)控菌株為金黃色葡萄球菌,結果參照WHO提供的NCCLS最新版本的標準進行判定。

        1.4 數(shù)據(jù)處理

        數(shù)據(jù)以平均值±標準差表示,采用SPSS17.0軟件利用Ducan多重比較法進行差異顯著性比較,以P<0.05表示組間具有顯著性差異。

        2 結果與分析

        2.1 菌株的耐酸能力

        作為益生菌的首要條件是能耐受胃酸[9]。人體胃液的pH值通常小于2,飯后被稀釋上升至3.5左右,食物通過胃的時間為1~2 h[9]。由圖1可知,在pH值為3.0的條件下培養(yǎng)2.5 h后,存活率大于50%的菌有14株;其中M-8、M-9、M-10、M-12、M-13和M-15的存活率超過100%。張和平等[15]發(fā)現(xiàn)內(nèi)蒙古酸馬奶中的LactobacilluscaseiZhang和LactobacillusacidophilusZL12- 1在pH值3.0培養(yǎng)3 h后的存活率達50%。

        將上述存活率≥50%的菌在pH值為3.0的MRS液體培養(yǎng)基中37 ℃培養(yǎng)24~96 h后以下14株菌可以生長:M-1、M-2、M-3、M-4、M-5、M-8、M-9、M-10、M-12、M-13、M-15、M-16、M-17和M-19。張和平等[15]發(fā)現(xiàn)發(fā)酵乳中的干酪乳桿菌在pH值為2.0~5.0的人工胃液中3 h后存活不受影響。

        圖1 菌株在pH 3.0的MRS液體培養(yǎng)基中2.5 h后的存活率Fig.1 The survival rate of strains after 2.5 h in MRS liquid medium of pH 3.0

        2.2 菌株的耐膽鹽能力

        益生菌必須能耐膽鹽[9]。盡管目前沒有確定益生菌能耐受的腸道膽鹽的最高濃度,但篩選能耐受高濃度膽鹽的菌株卻是非常必要的[16]。由表1可知,不同乳酸菌在不同膽鹽濃度下的生長情況各異;隨著膽鹽濃度的升高,菌株生長變慢;在相同膽鹽濃度下,各菌株的生長存在顯著性差異(P<0.05); M-1、M-5、M-7、M-8、M-9、M-10和M-13對膽鹽的耐受性較強。

        表1 不同膽鹽質(zhì)量濃度下菌株的生長情況Table 1 Tolerance of the strains to bile salts of different concentrations

        注:同列帶不同小寫字母的數(shù)據(jù)差異顯著(P<0.05)。

        其中,M-5在含0.7 g/100 mL膽鹽的培養(yǎng)基中仍能生長。王立平等[17]從蒙古酸馬奶中篩出的嗜酸乳桿菌能耐受膽鹽的最大濃度為0.6 g/100 mL,張和平等[15]從內(nèi)蒙古酸馬奶中分離的干酪乳桿菌能耐受膽鹽的最大濃度為1.6 g/100 mL。

        2.3 菌株的疏水性

        黏附是益生菌在人體消化道內(nèi)定植并發(fā)揮作用的基礎[18]。菌體的表面疏水性能反映其黏附力,疏水性越強,黏附力越強。由圖2可知,20株乳酸菌對甲苯和十六烷的黏附能力不同;M-5、M-10、M-17和M-19對甲苯和十六烷的吸附力較強,其中最強的是M-19,對甲苯和十六烷的疏水率分別為15.44%和16.42%。這與文獻中報道的疏水率還有一定的距離[19-20]。

        圖2 菌株的疏水性比較Fig.2 Comparison of the hydrophobicity of the strains

        2.4 菌株的體外降膽固醇能力

        過量膽固醇與心腦血管疾病密切相關[20]。由圖3可知,有12株菌對膽固醇的降解率超過50%;其中M-10的降解率最高(84.11%)。這遠高于文獻中的結果,L.caseiZhang的降解率為49.61%[15],嗜酸乳桿菌的降解率為50%[17]。

        圖3 菌株的體外降膽固醇能力比較Fig.3 Comparison of the cholesterol-reducing ability in vitro of strains

        2.5 菌株的體外抗氧化活性

        對H2O2的耐受性是評價抗氧化性的重要指標。由表2可知,隨著H2O2濃度的升高,菌株的耐受性降低;在相同的H2O2濃度下,各菌株的耐受性存在顯著性差異(P<0.05);其中M-4、M-1和M-8的耐受性較強。侯保朝等[21]發(fā)現(xiàn)乳酸菌SC608能耐受的H2O2濃度為1 mmol/L。

        表2 不同H2O2濃度下菌株的生長情況Table 2 Tolerance of the strains to hydrogen peroxide of different concentrations

        注:同列帶不同小寫字母的數(shù)據(jù)差異顯著(P<0.05)。

        羥自由基(·OH)是最主要的導致脂質(zhì)過氧化的自由基[22]。對(·OH)的清除力也是反映菌株抗氧化能力的重要參數(shù)。由圖4可知,20株乳酸菌都有一定的(·OH)清除力;隨著菌液密度的增加,清除率不斷提高;其中M-20在菌液密度為1010CFU/mL時的清除率最高(33.07%)。這遠高于王曦等[23]、劉洋等[24]報道的乳酸菌的清除率,但是低于蔣琰潔等[25]測定的面包乳桿菌的清除率(48%),遠低于王剛等[26]研究的植物乳桿菌和干酪乳桿菌的清除率(分別為83%和95%)。

        圖4 菌株對(·OH)的清除能力比較Fig.4 Comparison of the strains for scavenging activities on hydroxyl radicals

        對DPPH自由基的清除效果也是評價菌株抗氧化性的重要指標[27]。由圖5可知,20株乳酸菌對DPPH自由基的清除能力差別很大;隨著菌液密度的增加,清除能力不斷提高;在菌液密度為1010CFU/mL時,有10株菌對DPPH自由基的清除率大于50%,其中M-16的清除率最高(84.65%)。這遠高于文獻中的結果[24-25, 28-30],而稍低于王曦等[23]報道的結果(98.15%)。

        圖5 菌株DPPH自由基清除能力的比較Fig.5 Comparisons of the strains for scavenging effects on DPPH free radicals

        綜合上述3個抗氧化性指標,得出M-8的抗氧化能力較強。

        總之,對于20株乳酸菌首先從耐酸性篩選到存活率大于50%的14株菌,接著對這14株菌進行耐膽鹽和疏水性篩選后剩余9株菌,再對這9株菌進行降膽固醇和抗氧化性篩選后剩余4株菌。需要特別說明的是,M-15的降膽固醇能力非常強,而且對·OH的清除率很高;雖然其耐膽鹽能力相對而言最弱,但是其耐膽鹽能力的絕對值并不低,且它能在膽鹽環(huán)境中生長,只是速度慢些,故也被選中。因此,具有潛在益生特性的5株菌是:M-1、M-5、M-8、M-10和M-15。

        2.6 菌株16S rDNA序列分析

        對上述5株益生菌提取基因組DNA后進行16S rDNA V3-V4區(qū)的PCR擴增,擴增產(chǎn)物經(jīng)電泳檢測在約500 bp處有較濃的單一條帶,符合理論值(圖6)。這5株菌的16S rDNA序列均與短乳桿菌(Lactobacillusbrevis)的同源性為99%(表3)。結合前期的形態(tài)觀察、生理生化特征,將這5株菌均鑒定為短乳桿菌(Lactobacillusbrevis),NCBI接收號為MG722897-MG722901。

        Mr:100 bp DNA ladder marker;Lane 1:M-1;Lane 2:M-5;Lane 3:M-8;Lane 4: M-10;Lane 5:M-15圖6 五株菌16S rDNA的PCR擴增產(chǎn)物電泳圖Fig.6 Electrophoresis analysis of 16S rDNA amplification products of five strains

        表3 五株菌的16S rDNA序列的比對結果Table 3 Blast results of 5 strains by 16S rDNA sequences

        2.7 乳酸菌的藥敏性分析

        通過對益生菌進行藥敏性測定,可避免耐藥基因由于益生菌的廣泛使用而傳播。由表4可知,5株益生菌對不同抗生素的耐藥性不同;對青霉素、頭孢噻肟、四環(huán)素和鏈霉素均有耐藥性,這與凡琴等[31]的結果相似;對氨芐西林、紅霉素和氯霉素均敏感,且敏感度不同,這與楊吉霞等[13]的結果一致。

        表4 五株菌對抗生素的耐藥性Table 4 Antibiotic resistance of 5 strains

        注:S-敏感;I-中度敏感;R-耐藥。

        3 結論

        本文研究了20株乳酸菌的潛在益生特性和藥敏性。菌株M-8、M-9、M-10、M-12、M-13和M-15的體外耐酸性非常強;M-1、M-5、M-8、M-9、M-10和M-13對膽鹽的耐受性較強;M-19的疏水性最強;有12株菌對膽固醇的降解率大于50%;M-1、M-4和M-8對H2O2的耐受性較好,M-12和M-20對(·OH)的清除率最高,M-5和M-1對DPPH自由基的清除率最高。綜上,M-1、M-5、M-8、M-10和M-15具有潛在益生特性,均為短乳桿菌(Lactobacillusbrevis)。這5株菌對青霉素、頭孢噻肟、四環(huán)素和鏈霉素耐藥,對氨芐西林、紅霉素和氯霉素敏感。

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