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        髓系觸發(fā)受體-1的拮抗劑對大鼠腸巨噬細胞超微結(jié)構(gòu)的影響

        2019-01-21 08:19:28盛竹鴿郭劍梁愛玲王宇暉朱浪潮王瑩劉利平
        川北醫(yī)學院學報 2018年6期
        關(guān)鍵詞:拮抗劑屏障細胞因子

        盛竹鴿,郭劍,梁愛玲,王宇暉,朱浪潮,王瑩,劉利平

        (渭南市中心醫(yī)院消化內(nèi)科,陜西 渭南 714000)

        腸道是人體中最大的內(nèi)毒素、細菌貯存庫,可通過體液免疫和細胞免疫共同防御各種有害因素對機體的侵犯,特別是腸黏膜屏障可有效防止腸腔內(nèi)多種有害物質(zhì)穿越腸黏膜進入血液循環(huán),引起其他組織器官損傷[1-2]。腸道巨噬細胞是腸黏膜屏障重要的組成部分,源于骨髓中造血干細胞,主要存在于腸上皮下的固有層中,可參與機體固有免疫反應(yīng),具有殺傷及吞噬功能[3-4]。在病理狀態(tài)下,腸道巨噬細胞可釋放大量的炎癥因子,可以進入血循環(huán),作用于肝、肺、腎等器官組織并引起損傷[5]。特別是脂多糖(LPS)可以與細胞表面受體結(jié)合而激活這一途徑,影響腸黏膜屏障通透性,造成腸屏障功能障礙[6-7]。髓系細胞觸發(fā)受體-1(triggering receptor expressed on myeloid cells-1,TREM-1)是當前發(fā)現(xiàn)的細胞表面分子,是選擇性表達在CD14+單核細胞及中性粒細胞等髓系細胞表面的炎癥受體,可參與促炎因子的合成釋放,能夠放大炎癥的級聯(lián)反應(yīng)[8-9]。17個氨基酸組成的多肽(LP17)是TREM-1拮抗劑,含有TREM-1天然的CDR2、CDR3序列的至少3個氨基酸,可減少炎癥介質(zhì)的釋放[10-11]。本研究采用LPS體外刺激腸巨噬細胞,應(yīng)用TREM-1拮抗劑-LP17來干預(yù)腸巨噬細胞內(nèi)TREM-1的表達,探討TREM-1的拮抗劑對大鼠腸巨噬細胞超微結(jié)構(gòu)的影響,現(xiàn)報告如下。

        1 材料與方法

        1.1 實驗材料

        健康雄性SD大鼠由本院動物實驗動心提供,質(zhì)量0.2~0.25 kg,實驗符合動物倫理要求,批準號:[SCXK()2012-0004],9周齡,實驗前予以禁食12 h、禁水4 h,保持腸道清潔。 LP17多肽由上海潔而生化合成,LPS購自美國sigma公司。RPMI-1640培養(yǎng)基、FBS購自美國Hyelone公司;細胞培養(yǎng)板購自美國Corning公司。

        1.2 大鼠腸巨噬細胞的分離培養(yǎng)與鑒定

        大鼠用尾靜脈注射0.3%戊巴比妥鈉麻醉。選擇腹部正中切口,顯露全部小腸,沿系膜快速切取全部小腸,PBS沖洗腸管,沿小腸系膜縱向分段剖開,用Hanks平衡鹽溶液,振蕩培養(yǎng)60 min后采用用膠原酶Ⅳ繼續(xù)消化2 h,不銹鋼400目篩網(wǎng)進行過濾,1 500 rpm 4 ℃ 離心20 min收集細胞。 計數(shù)大腸巨噬細胞,以RPMI1 640培養(yǎng)基進行分離培養(yǎng)。采用一抗Rabbit polyclonal to CD14(1∶300)進行鑒定分析,二抗為Goat anti—Rabbit IgG(H+L),于熒光顯微鏡下觀察并拍照,陽性信號為綠色熒光。

        1.3 大鼠腸巨噬細胞的分組處理

        大鼠腸巨噬細胞分為3組,對照組:未加LPS 和LP17;LPS組:LPS給藥濃度為1 mg/L;治療組:LPS給藥濃度為1 mg/L,LP17給藥濃度為0.1 mg/L。

        1.4 MTT法檢測細胞活力

        將分離好的大鼠腸巨噬細胞按照2×104個細胞的接種密度接種至96孔板中,生長到對數(shù)生長期進行上述處理,每個濃度3個復(fù)孔。培養(yǎng)48 h后每孔加入20 μL MTT溶液,繼續(xù)培養(yǎng)4 h,加入二甲基亞砜后進行震蕩10 min,采用酶標儀在490 nm處測定各孔的吸光值(OD值),計算細胞活力。

        1.5 流式細胞儀檢測細胞凋亡

        收集處理48 h后的大鼠腸巨噬細胞,采用預(yù)冰冷70%的乙醇固定,使用PBS重懸5 min,400目篩網(wǎng)過濾。然后4 ℃避光30 min,流式細胞儀檢測與計算細胞凋亡情況。

        1.6 Western blot檢測細胞TREM-1和TNF-α表達

        收集處理48 h后的大鼠腸巨噬細胞,提出總蛋白,用Western blot檢測TREM-1和TNF-α 蛋白表達。

        1.7 電鏡觀察細胞超微結(jié)構(gòu)

        收集處理48 h后的大鼠腸巨噬細胞,經(jīng)2.5% 戊二醛前固定2 h,再經(jīng)常規(guī)脫水、透明、樹脂浸透包埋,制成70 nm切片組織,經(jīng)檸檬酸鉛染色后在透射電鏡上觀察拍照。

        1.8 統(tǒng)計學分析

        2 結(jié)果

        2.1 細胞分離培養(yǎng)、鑒定及活力比較

        大鼠腸巨噬細胞生長狀態(tài)良好,免疫熒光顯示為綠色熒光,CD14表達陽性,細胞分布較均勻,見圖1。治療組與對照組的細胞活力指數(shù)顯著高于LPS組(P<0.05),治療組與對照組對比,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。見表1。

        表1 3組大鼠腸巨噬細胞活力指數(shù)比較

        *P<0.05,與LPS組比較。

        2.2 細胞凋亡指數(shù)比較

        治療組與對照組的細胞凋亡指數(shù)顯著低于LPS組(P<0.05),治療組與對照組對比差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。見表2。

        表2 3組大鼠腸巨噬細胞凋亡指數(shù)對比

        組別n細胞凋亡指數(shù)(x-±s)對照組32.19±0.22LPS組321.43±1.83治療組33.28±0.84

        *P<0.05,與LPS組比較。

        2.3 TREM-1、TNF-α的表達

        治療組與對照組的TREM-1、TNF-α相對表達量顯著低于LPS組(P<0.05),治療組與對照組對比差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。見圖2。

        2.4 細胞超微結(jié)構(gòu)對比

        電鏡下觀察對照組腸微絨毛整齊排列,巨噬細胞形態(tài)規(guī)則;LPS組發(fā)現(xiàn)腸巨噬細胞內(nèi)出現(xiàn)大量凋亡小體,巨噬細胞體積增大,突起,胞間連接紊亂斷裂;治療組發(fā)現(xiàn)腸巨噬細胞內(nèi)出現(xiàn)邵愛玲凋亡小體,腸上皮細胞間隙恢復(fù)正常,巨噬細胞表面突起、偽足少。見圖3。

        3 討論

        腸黏膜中腸巨噬細胞、樹突狀細胞構(gòu)成了腸道防止感染的重要防線,在腸黏膜屏障中占重要作用,確保保護性免疫反應(yīng)[12]。在機體損傷與發(fā)生感染時,可出現(xiàn)腸黏膜上皮水腫,產(chǎn)生大量酸性代謝產(chǎn)物,細胞間連接斷裂,使腸黏膜血管舒縮紊亂,進一步損傷腸黏膜上皮。特別是腸巨噬細胞的活化可產(chǎn)生大量促炎因子,形成炎癥級聯(lián)放大反應(yīng),引起腸黏膜通透性增加[13]。

        巨噬細胞在先天性免疫、腫瘤、炎癥中發(fā)揮重要作用,其在炎癥反應(yīng)早期階段可起到吞噬細菌及殺滅抗原的作用,也在腫瘤的形成中有一定促進作用[14]。LPS可引起黏膜下水腫,腸上皮絨毛出現(xiàn)壞死,通透性增加,血流量減少,并可誘導(dǎo)炎癥因子等釋放,引起腸黏膜屏障損傷[15]。LP17為TREM-1特異性拮抗劑,可有效阻斷感染性休克模型大鼠TREM-1通路,并顯著減輕腸屏障的通透性[16]。本研究顯示治療組與對照組的細胞活力指數(shù)顯著高于LPS組(P<0.05),細胞凋亡指數(shù)顯著低于LPS組(P<0.05),治療組與對照組對比差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),表明大量過度激活的腸巨噬細胞對腸黏膜屏障是有害的,LP17的應(yīng)用能促進恢復(fù)細胞活力,降低細胞凋亡水平。不過也有研究表明LP17并不能完全阻斷細胞因子的產(chǎn)生,不影響其他免疫系統(tǒng)的能力[17-18]。但大部分研究已經(jīng)證明LP17 是與TREM-1結(jié)構(gòu)相似的合成肽,可競爭性阻斷TREM-1信號,提高膿毒血癥模型小鼠的生存率,一定程度上減少腸巨噬細胞凋亡,降低在炎癥環(huán)境下腸黏膜損害的程度,發(fā)揮腸道保護作用[19]。

        腸道巨噬細胞是腸道保護性免疫的重要組成部分,具有維持腸道微生物穩(wěn)定等作用;其在不同的條件下表現(xiàn)出不同的免疫表型,具有分泌、吞噬細胞因子等功能,并能放大炎癥反應(yīng)[20]?;罨蟮木奘杉毎梢院铣煞置诎═NF-α素在內(nèi)的多種細胞因子,并可循環(huán)促進炎癥反應(yīng)的發(fā)生,形成級聯(lián)反應(yīng)[21]。TREM-1為跨膜糖蛋白,由 234 個氨基酸組成,相對分子量為30 KD。TREM-1能進一步增強Toll樣受體所介導(dǎo)的炎癥反應(yīng),同時增加炎性細胞的細胞因子。TREM-1也可識別到不同病原微生物或宿主所產(chǎn)生的危險信號,并引起機體產(chǎn)生免疫應(yīng)答,誘導(dǎo)細胞因子、趨化因子等的產(chǎn)生,在代謝、炎癥、病原體反應(yīng)及組織損傷和修復(fù)中發(fā)揮重要作用,也可進一步清除病原微生物[22]。TREM-1在中性粒細胞表達與膿毒癥的嚴重程度有關(guān),TREM-1+中性粒細胞計數(shù)分別與SAP大鼠病理評分、血清淀粉酶的水平和促炎性細胞因子的水平正相關(guān)。本研究顯示治療組與對照組的TREM-1、TNF-α相對表達量顯著低于LPS組(P<0.05),治療組與對照組對比差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。相關(guān)研究也表明LP17在大鼠膿毒癥模型可通過阻斷與TREM-1誘餌受體相互作用,可減少炎癥介質(zhì)的釋放,可防止大鼠器官功能衰竭;LP17也能能夠減輕結(jié)腸的炎癥反應(yīng),從而降低小鼠結(jié)腸炎的嚴重性[23]。

        雖然對于TREM-1阻斷可降低炎癥的研究已經(jīng)逐步涉及,但對于TREM-1分子的上下游信號通路及其調(diào)控機制的研究還不夠清楚。TREM-1和TREM 受體表達在各種髓系細胞中,能夠誘導(dǎo)多種炎癥介質(zhì)產(chǎn)生。通過對抗TREM-1抗體在單核細胞上的競爭性抑制,可誘發(fā)細胞內(nèi)鈣離子轉(zhuǎn)移,使促炎性細胞因子及共同刺激因子的產(chǎn)生,放大陽性反應(yīng)[24]。不過TREM-1激活后的信號通路并未完全明確,目前研究表明TREM-1可活化下游信號通路,促進細胞合成促炎因子[25]。因此關(guān)于TREM-1激活在巨噬細胞炎癥中的作用機制還有待進一步研究。

        總之,TREM-1特異性拮抗劑LP17能有效提高細胞活力,減少巨噬細胞凋亡,抑制巨噬細胞TREM-1與TNF-α的表達,有望成為治療腸屏障功能障礙的新靶點。

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