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        同時檢測小鼠微小病毒(MVM)和小鼠細(xì)小病毒(MPV)的熒光定量PCR的建立及應(yīng)用*

        2019-01-03 12:09:34王淑菁李曉波岳秉飛賀爭鳴
        實驗動物科學(xué) 2018年4期
        關(guān)鍵詞:小鼠檢測

        王淑菁 林 歡 付 瑞 李曉波 王 吉 岳秉飛 賀爭鳴

        (1.中國食品藥品檢定研究院實驗動物資源研究所,北京 100050) (2.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院哈爾濱獸醫(yī)研究所,哈爾濱 150001)

        細(xì)小病毒感染是嚙齒類實驗動物常見的病原體感染之一。小鼠微小病毒(MVM)和小鼠細(xì)小病毒(MPV)兩種細(xì)小病毒均曾在小鼠中被分離得到。MVM易污染鼠源性細(xì)胞,比如 CHO細(xì)胞系中就曾分離到過MVM。MPV是鼠脾細(xì)胞培養(yǎng)物潛在的污染物。細(xì)小病毒感染小鼠,通常無癥狀臨床表現(xiàn),但研究表明,在涉及免疫系統(tǒng)、腫瘤和移植的實驗中,體內(nèi)、外感染MVM和MPV將會嚴(yán)重影響實驗數(shù)據(jù)的準(zhǔn)確性和可信性[1-3]。

        FELESA、Charles River、日本實中研等實驗室關(guān)于實驗小鼠健康監(jiān)測的指南中,規(guī)定了需要對MVM和MPV兩種細(xì)小病毒均進(jìn)行檢測。我國的國標(biāo)中僅規(guī)定對實驗小鼠進(jìn)行MVM檢測,國內(nèi)尚未開展實驗小鼠感染MPV的研究。本研究擬將建立同時檢測MVM和MPV的熒光定量PCR方法,初篩樣本中是否存在細(xì)小病毒感染,再使用本實驗室已建立的MVM、 MPV特異性熒光定量PCR方法鑒定是哪種細(xì)小病毒感染[4]。不僅可以實現(xiàn)對免疫缺陷小鼠、細(xì)胞系及生物原材料的細(xì)小病毒檢測,還可以進(jìn)行大樣本的病毒篩查和鑒定。

        1 材料與方法

        1.1 病毒

        小鼠微小病毒(MVM)、豬細(xì)小病毒、大鼠細(xì)小病毒H-1株和KRV株均購自美國ATCC。

        1.2 主要試劑

        Takara MiniBEST Viral RNA/DNA 提取試劑盒購自TaKaRa公司;TaqMan Universal PCR Master Mix購自Applied Biosystems公司。

        1.3 引物和探針的設(shè)計

        根據(jù)NCBI上發(fā)表的MVM(NC_001510)和MPV(NC_001630.1)基因組序列,通過BLAST比對分析分別選擇保守特異區(qū)域設(shè)計引物和探針,選擇MVM和MPV共有序列設(shè)計引物和探針。見表1。

        表1 MVM-MPV熒光定量PCR的引物和探針Table 1 Primer and probe sequence for MVM-MPV real time PCR assays

        1.4 MVM-MPV標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒的制備

        本實驗室無MPV毒種,僅有MVM毒種,需要建立MVM-MPV質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品。人工合成MVM(NC_001510)基因組2011-2240 DNA序列,該序列為MVM和MPV共有序列,轉(zhuǎn)入pMD19-T質(zhì)粒中,作為MVM-MPV質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品。

        1.5 熒光定量PCR方法反應(yīng)體系及反應(yīng)條件

        PCR反應(yīng)體系為:TaqMan Universal PCR Master Mix 10 μL,探針引物混合物(10 μmol/L)1 μL,無RNA酶水7 μL,模板2 μL。反應(yīng)條件:50 ℃ 2 min;95 ℃ 10 min;95 ℃ 15 s,60 ℃ 1min,40個循環(huán)。

        1.6 考察特異性

        提取MVM、大鼠細(xì)小病毒H-1株和KRV株、豬細(xì)小病毒的DNA,進(jìn)行熒光定量PCR,考察該引物和探針的特異性。

        1.7 考察敏感性

        倍比稀釋構(gòu)建的質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品,從109至100拷貝/μL,每個稀釋度重復(fù)3次,考察該方法的靈敏度,以陽性檢出率為100%的最低稀釋倍數(shù)為該方法的靈敏度。

        1.8 初步應(yīng)用

        使用建立的熒光定量PCR方法檢測2014—2015年送檢的178份清潔級小鼠糞便。

        2 結(jié)果

        2.1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制及最佳線性范圍的確定

        當(dāng)MVM-MPV標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒分別在109~104拷貝/μL時, R2值可達(dá)0.99,R2值越接近1,代表標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性關(guān)系越好。見圖1。

        圖1 MVM-MPV熒光定量PCR標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.1 The standard curve of MVM-MPV real-time PCR

        2.2 考察特異性

        檢測結(jié)果顯示,當(dāng)檢測MVM病毒和MVM-MPV標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒時,均出現(xiàn)FAM熒光擴(kuò)增曲線。檢測大鼠細(xì)小病毒H-1株、大鼠細(xì)小病毒KRV株、豬細(xì)小病毒均無明顯擴(kuò)增曲線。表明所建立的熒光定量PCR法特異性強(qiáng),與其他細(xì)小病毒均無交叉反應(yīng)。

        2.3 考察敏感性

        倍比稀釋構(gòu)建的質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品,從109至100拷貝/μL,以陽性檢出率為100%的最低稀釋倍數(shù)為該方法的靈敏度,檢測結(jié)果顯示,該方法檢測MVM-MPV標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒的靈敏度為101拷貝/μL。見圖2。

        圖2 MVM-MPV熒光定量PCR方法的靈敏度Fig.2 The sensitivity of MVM-MPV real-time PCR

        2.4 初步應(yīng)用

        2.4.1MVM-MPV熒光定量PCR初篩176份清潔級小鼠糞便:對2014—2015年送檢的178份清潔級小鼠糞便樣本,提取DNA后應(yīng)用MVM-MPV熒光定量PCR進(jìn)行初篩,檢測顯示出現(xiàn)兩份陽性樣本。

        2.4.2應(yīng)用本實驗室建立的MVM熒光定量PCR和MPV熒光定量PCR分別檢測陽性樣本,以確定為哪種細(xì)小病毒感染,檢測結(jié)果顯示,2份陽性樣本均檢測為MVM陰性,MPV陽性。

        2.4.3陽性樣本測序:將兩份陽性樣本DNA送至北京擎科新業(yè)生物技術(shù)有限公司進(jìn)行全基因組測序,測序得到可信的堿基序列4 016 bp,在 NCBI上進(jìn)行序列比對,結(jié)果顯示與MPV(NC_001630.1)的序列一致率可達(dá)96%,確定兩份陽性樣本感染的病毒為MPV。見圖3。

        圖3 序列比對結(jié)果注:Identities為兩段序列的一致性;比對序列1為測序得到的4 016 bp堿基序列;比對序列2為MPV基因組序列(Mouse parvovirus 1,序列號NC_001630.1);比對結(jié)果為兩段序列中有3 843 bp序列完全一致,一致率為96%Fig.3 BLAST resultNote: Identities is the consistent rate of two sequences. The first sequence is the sequence of 4 016 bp base obtained by sequencing and the second sequence is the MPV genome sequence (Mouse parvovirus 1, complete genome, sequence number NC_001630.1). The blast result showed that the 3 843 bp sequences of the two sequences were identical,and the concordance rate was 96%.

        3 討論

        細(xì)小病毒并不引起小鼠明顯臨床疾病和組織學(xué)病變,但細(xì)小病毒可通過對小鼠體內(nèi)免疫調(diào)節(jié)的影響,從而對實驗研究的結(jié)果造成嚴(yán)重偏差。因此,開展MVM和MPV的檢測,對于實驗小鼠以及鼠源性生物材料或鼠源性細(xì)胞系具有重要意義[5]。

        國外對實驗小鼠進(jìn)行細(xì)小病毒檢測時發(fā)現(xiàn),MPV感染占77%,MVM感染占16%,而混合感染占7%[6-7]。Wang等檢測臺灣地區(qū)178份小鼠脾臟DNA樣品中,20份樣品為MPV陽性,178份樣品MVM檢測均為陰性。MPV的感染率(11.5%)高于歐美國家(1%~3%),MVM的感染率與歐美國家(低于0.5%)相似[8]。國內(nèi)在細(xì)小病毒研究,尤其是實驗小鼠MPV研究方面報道較少[4,9-10]。

        本研究中建立的小鼠MVM-MPV熒光定量PCR方法,最佳線性范圍為109~104拷貝/μL,標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性關(guān)系良好,靈敏度均為101拷貝/μL,特異性強(qiáng),僅擴(kuò)增其對應(yīng)的細(xì)小病毒。應(yīng)用MVM-MPV探針對178份清潔級小鼠糞便DNA進(jìn)行初篩,檢測出2份陽性樣本,經(jīng)MVM、MPV特異性探針鑒定,確認(rèn)均為MPV感染。將陽性樣本進(jìn)行全基因組測序,與NCBI上MPV(NC_001630.1)序列比對,結(jié)果顯示其一致率可達(dá)96%,驗證了所建立方法的可靠性。目前本實驗室只有MVM毒種,沒有MPV毒種,本次篩查檢測出的MPV陽性樣本可進(jìn)一步分離MPV活病毒。目前國標(biāo)中并未規(guī)定實驗小鼠中必須進(jìn)行MPV檢測,研究中檢測到MPV陽性,需要引起實驗動物科技工作者的重視。本研究中建立的小鼠MVM-MPV熒光定量PCR方法,為同時檢測MVM、MPV,研究細(xì)小病毒感染情況提供了有效的技術(shù)支持。

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