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        丹紅注射液對阿托伐他汀鈣在大鼠體內(nèi)藥動學(xué)的影響Δ

        2019-01-02 03:19:44朱金燕彭燦胡容峰湯繼輝金涌
        中國藥房 2018年24期
        關(guān)鍵詞:血漿劑量

        朱金燕,彭燦,胡容峰#,湯繼輝,金涌

        (1.安慶醫(yī)藥高等??茖W(xué)校藥學(xué)系,安徽 安慶 246052;2.安徽中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院,合肥 230031;3.安徽醫(yī)科大學(xué)藥學(xué)院,合肥 230032)

        阿托伐他汀鈣(ATV)是臨床上治療高膽固醇血癥、混合型高脂血癥,防治冠心病和腦卒中的常用選擇競爭性3-羥基-3-甲基戊二酸單酰輔酶A(HMG-CoA)還原酶抑制劑[1]。該藥可抑制體內(nèi)膽固醇的合成,降低血清低密度脂蛋白(LDL)含量,從而達到調(diào)整體內(nèi)血脂水平的目的[2]。丹紅注射液是由丹參和紅花組方制成的中藥注射劑,其主要功能為活血化瘀、通脈舒絡(luò),常用于治療冠心病、心絞痛、心肌梗死等[3]。臨床上常采用丹紅注射液聯(lián)合ATV治療冠心病、心絞痛等,研究顯示聯(lián)合用藥后臨床療效顯著增強[4],但兩者聯(lián)用后的藥動學(xué)研究尚未見報道。

        研究表明,多藥耐藥基因編碼的P糖蛋白(P-gp)、微粒體混合功能氧化酶系中的細胞色素P450(CYP450)等均可影響ATV的血藥濃度及降脂效果[5]。據(jù)報道,丹參的主要成分能夠抑制P-gp的表達[6-8]及大鼠肝微粒體酶的活性[9-10]。因此,丹紅注射液聯(lián)合給藥后,可能通過影響P-gp或CYP450而對ATV的體內(nèi)藥動學(xué)行為產(chǎn)生影響,進而影響后者藥效的發(fā)揮?;诖?,筆者通過研究丹紅注射液單次給藥對ATV在大鼠體內(nèi)藥動學(xué)行為的影響,為探究臨床聯(lián)合使用丹紅注射液與ATV的安全性及合理性提供實驗依據(jù)。

        1 材料

        1.1 儀器

        Waters AcquityTM超高效液相色譜(UPLC)系統(tǒng),包括Waters串聯(lián)質(zhì)譜(MS/MS)檢測器、Masslynx 4.1工作站(美國Waters公司);LC-4016型低速離心機(安徽中科中佳科學(xué)儀器有限公司);TG16-WS型高速離心機(長沙湘儀離心機儀器有限公司);AB135-S型十萬分之一電子天平[梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司];XW-80A型微型渦旋混合器(上海滬西分析儀器廠有限公司);BCD-225CHC型冰箱(合肥美菱股份有限公司);Milli-Q GradientA10型超純水系統(tǒng)[密理博(上海)貿(mào)易有限公司]。

        1.2 藥品與試劑

        丹紅注射液(陜西步長制藥有限公司,批號:13101001,規(guī)格:10 mL/支);阿托伐他汀鈣片(輝瑞制藥有限公司,批號:J01570,規(guī)格:10 mg);阿托伐他汀鈣對照品(批號:100590-201303,純度:>95.3%)、鹽酸噻氯匹定對照品(內(nèi)標,批號:20120812,純度:>99%)均來自中國食品藥品檢定研究院;甲醇為色譜純,其余試劑均為分析純,水為超純水(實驗室自制)。

        1.3 動物

        健康SD大鼠24只,雌雄各半,體質(zhì)量為(200±20)g,由安徽省實驗動物中心提供,動物生產(chǎn)許可證號:SCXK(皖)2011-002。

        2 方法與結(jié)果

        2.1 色譜與質(zhì)譜條件

        色譜條件:色譜柱為AcquityTMBEH C18(50 mm×2.1 mm,1.7 μm);流動相A為5 mmol/L甲酸銨溶液(含0.1%甲酸)、流動相B為甲醇,梯度洗脫(0→1.0 min,20%B;1.0→1.3 min,20%B→80%B;1.3→2.0 min,80%B→60%B;2.0→4.0 min,60%B→80%B;4.0→7.0 min,80%B→20%B;7.0→8.0 min,20%B);柱溫為30 ℃;流速為0.2 mL/min;進樣量為5 μL。

        質(zhì)譜條件:離子源為電噴霧離子源(ESI),采用正離子檢測方式;毛細管電壓為3.60 kV;離子源溫度為150℃,去溶劑化溫度為500℃;噴霧氣為氮氣,碰撞氣為氬氣;ATV和鹽酸噻氯匹定(內(nèi)標)的錐孔電壓分別為44、30 V,碰撞能分別為22、26 eV;采用多反應(yīng)離子監(jiān)測(MRM)模式,質(zhì)荷比(m/z)分別為 559.20→440.20(ATV)、264.20→154.05(內(nèi)標)。

        2.2 溶液的制備

        精密稱取ATV對照品2.00 mg于50 mL量瓶中,用甲醇溶解并定容,搖勻,即得40 μg/mL的ATV對照品貯備液;精密量取該貯備液適量,用甲醇逐級稀釋制成相應(yīng)質(zhì)量濃度的ATV系列對照品溶液。精密稱取鹽酸噻氯匹定適量,用甲醇配制成質(zhì)量濃度為20 μg/mL的內(nèi)標貯備液;精密量取該貯備液適量,用甲醇稀釋制成20 ng/mL的內(nèi)標溶液。上述溶液均于4℃冷藏保存?zhèn)溆谩?/p>

        2.3 血漿樣品預(yù)處理

        取大鼠血漿100 μL置于肝素化處理過的離心管中,加入20 ng/mL的內(nèi)標溶液100 μL,渦旋混合2 min;然后加入甲醇200 μL沉淀蛋白,渦旋混合3 min后,12 000 r/min離心10 min;吸取上清液,以0.22 μm有機濾膜濾過,取5 μL進樣,進行UPLC-MS/MS分析。

        2.4 方法學(xué)考察

        2.4.1 專屬性考察 取大鼠空白血漿、大鼠空白血漿+丹紅注射液(空白血漿與丹紅注射液體積比為10∶1)、大鼠空白血漿+ATV對照品(ATV在血漿中的終質(zhì)量濃度為62.50 ng/mL)、大鼠灌胃ATV(10 mg/kg)后2 h時血漿及大鼠灌胃ATV(10 mg/kg)+尾靜脈注射丹紅注射液(2 mL/kg)后2 h時血漿,按“2.3”項下方法預(yù)處理(其中大鼠空白血漿、空白血漿+丹紅注射液不加內(nèi)標),按“2.1”項下色譜與質(zhì)譜條件進樣測定,總離子流色譜圖見圖1。結(jié)果顯示,血漿中的內(nèi)源性物質(zhì)和丹紅注射液中的各成分均不干擾ATV和內(nèi)標的測定,本方法專屬性良好;ATV保留時間約為5.8 min,內(nèi)標保留時間約為3.5 min,兩者峰形均良好。

        2.4.2 標準曲線制備和定量下限考察 取大鼠空白血漿,分別加入不同質(zhì)量濃度的ATV對照品溶液適量,配制成 ATV 質(zhì)量濃度分別為 62.50、25.00、12.50、6.25、2.50、1.25、0.25 ng/mL的血漿樣本,按“2.3”項下方法預(yù)處理,并按“2.1”項下色譜與質(zhì)譜條件進樣測定。以ATV的血藥濃度(c)為橫坐標、ATV與內(nèi)標的峰面積比值(Y)為縱坐標進行線性回歸,求得標準曲線方程Y=0.101 9c+0.149 6(R2=0.999 4)。結(jié)果表明,ATV的血藥濃度線性范圍為0.25~62.50 ng/mL,定量下限為0.25 ng/mL(RSD=5.8%,n=6)。

        2.4.3 精密度試驗 取大鼠空白血漿,分別加入不同質(zhì)量濃度的ATV對照品溶液適量,配制成ATV低、中、高質(zhì)量濃度(1.25、6.25、25.00 ng/mL)的血漿樣本,每個濃度平行配制6份,按“2.3”項下方法預(yù)處理,并按“2.1”項下色譜與質(zhì)譜條件進樣測定,單日內(nèi)測定3次,連續(xù)測定3 d,考察日內(nèi)及日間精密度。結(jié)果顯示,ATV低、中、高質(zhì)量濃度血漿樣本的日內(nèi)RSD分別為8.34%、4.52%、9.31%(n=18),日間RSD分別為6.25%、8.13%、10.79%(n=18),表明本方法精密度良好,符合生物樣品分析要求。

        圖1 各血漿樣本總離子流色譜圖Fig 1 TIC chromatogram of plasma samples

        2.4.4 提取回收率試驗 按“2.4.3”項下方法配制ATV低、中、高質(zhì)量濃度(1.25、6.25、25.00 ng/mL)的血漿樣本,每個濃度平行配制6份,同法預(yù)處理后進樣,測得ATV與內(nèi)標的峰面積比值(Y1);另取空白血漿,同法預(yù)處理后加入適量ATV對照品溶液,進樣,測得ATV與內(nèi)標的峰面積比值(Y空白)。按公式Y(jié)1/Y空白×100%計算提取回收率。結(jié)果顯示,ATV低、中、高質(zhì)量濃度血漿樣本的平均提取回收率分別為88.30%、91.46%、87.64%,RSD均小于11%(n=6)。

        2.4.5 穩(wěn)定性試驗 按“2.4.3”項下方法配制ATV低、中、高質(zhì)量濃度(1.25、6.25、25.00 ng/mL)的血漿樣本,每個濃度平行配制6份,分別在室溫放置12 h、-80℃-室溫反復(fù)凍融3次、-80℃放置14 d后,按“2.3”項下方法預(yù)處理,并按“2.1”項下色譜與質(zhì)譜條件進樣測定。結(jié)果顯示,ATV低、中、高質(zhì)量濃度血漿樣本的血藥濃度RSD分別為5.45%、6.78%、11.53%,RSD均小于15%(n=6),表明血漿樣本中的ATV在上述條件下均較穩(wěn)定。

        2.4.6 基質(zhì)效應(yīng)考察 按“2.4.3”項下方法配制ATV低、中、高質(zhì)量濃度(1.25、6.25、25.00 ng/mL)的血漿樣本,每個濃度平行配制6份,同法預(yù)處理后進樣,測得ATV與內(nèi)標的峰面積比值(Y2);另以水代替血漿配制樣本,同法預(yù)處理后進樣,測得ATV與內(nèi)標的峰面積比值(Y水)。按公式Y(jié)2/Y水×100%計算基質(zhì)效應(yīng)(ME)。結(jié)果顯示,ATV低、中、高質(zhì)量濃度血漿樣本的平均ME分別為89.42%、86.54%、94.24%,RSD均小于10%(n=6)。

        2.5 藥動學(xué)實驗

        取24只大鼠,隨機分為ATV單用組和丹紅注射液低、中、高劑量聯(lián)用組,每組6只。結(jié)合文獻[11-13]并按人與大鼠體表面積比進行換算,確定各組ATV的給藥劑量均為10 mg/kg,聯(lián)用丹紅注射液低、中、高劑量分別為1、2、4 mL/kg。實驗前大鼠禁食不禁水12 h,次日清晨除ATV單用組大鼠尾靜脈注射等體積生理鹽水外,其余大鼠尾靜脈注射相應(yīng)劑量的丹紅注射液;5 min后,各組大鼠均灌胃ATV(將ATV片劑以羥甲基纖維素鈉溶液溶解后給藥)。灌胃給藥前(0 h),給藥后5、10、15、30、45 min和1、2、4、6、8、12、24 h時在大鼠眼底靜脈叢取血0.4 mL,置于肝素化處理的試管中,3 500 r/min離心10 min分離血漿。血漿樣本按“2.3”項下方法預(yù)處理,并按“2.1”項下色譜與質(zhì)譜條件進樣測定,將測得的ATV與內(nèi)標的峰面積比值代入隨行標準曲線計算血藥濃度。各組大鼠體內(nèi)ATV的平均血藥濃度-時間曲線見圖2。

        圖2 各組大鼠體內(nèi)ATV的平均血藥濃度-時間曲線(n=6)Fig 2 Average plasma concentration-time curves of ATV in rats in each group(n=6)

        采用3p97軟件計算各組大鼠體內(nèi)ATV的藥動學(xué)參數(shù),詳見表1。ATV在各組大鼠體內(nèi)的藥動學(xué)特征均符合非房室模型。采用SPSS 17.0軟件進行組間單因素方差分析,結(jié)果表明丹紅注射液低、中、高劑量聯(lián)用組的cmax、AUC0-24、AUC0-∞均高于ATV單用組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05或P<0.01)。

        表1 各組大鼠體內(nèi)ATV的藥動學(xué)參數(shù)(x±s,n=6)Tab 1 Pharmacokinetic parameters of ATV in rats(x±s,n=6)

        3 討論

        本實驗建立了大鼠血漿中ATV藥物濃度的UPLC-MS/MS測定法,該方法簡便,精密度、回收率高,穩(wěn)定性較好,且不受內(nèi)源性物質(zhì)干擾,專屬性好。篩選色譜條件時發(fā)現(xiàn),在流動相中加入甲酸銨和甲酸后,可有效改善ATV的峰形及響應(yīng)值。該檢測方法定量下限低至0.25 ng/mL,可準確測定大鼠血漿中ATV的含量,靈敏度高。

        藥動學(xué)實驗結(jié)果顯示,與ATV單用組比較,除丹紅注射液低劑量聯(lián)用組的cmax之外,丹紅注射液各劑量聯(lián)用組的ATV藥動學(xué)參數(shù)cmax、AUC0-24h、AUC0-∞均大幅度提高,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義,但tmax、t1/2、MRT0-24h等參數(shù)卻無顯著差異。筆者分析其原因可能為:(1)ATV是P-gp的底物[14],當(dāng)ATV與丹紅注射液聯(lián)合用藥時,丹紅注射液中的主要成分如羥基丹參酮ⅡA[6]、紅花黃色素A[7]、隱丹參酮[8]等可能通過競爭性抑制P-gp而使ATV在體內(nèi)的吸收量增加,從而使cmax等參數(shù)明顯增大;(2)CYP3A4是ATV代謝的關(guān)鍵酶[15],而有研究證實丹紅注射液不會影響CYP3A4的活性[16],故不會影響ATV在體內(nèi)的代謝速度,因此t1/2等參數(shù)無顯著差異。

        另外,丹紅注射液臨床靜脈注射給藥劑量為4 mL,根據(jù)人體表面積換算后的大鼠給藥劑量為0.8 mL/kg。參考文獻[11-13],本研究最終確定丹紅注射液的低、中、高劑量分別為1、2、4 mL/kg。ATV的臨床起始給藥劑量為10 mg,根據(jù)人體表面積換算后的大鼠起始給藥劑量應(yīng)該為1 mg/kg。然而,Shu N等[17]采用10 mg/kg作為ATV的大鼠給藥劑量;Galani V等[18]研究格列美脲與ATV的相互作用時選擇ATV的大鼠給藥劑量為60 mg/kg。綜合以上文獻并考慮到本研究所建立檢測方法的靈敏度,最終選擇10 mg/kg ATV作為大鼠給藥劑量。由于藥物給藥劑量直接影響藥物間相互作用結(jié)果,因此后續(xù)在檢測方法靈敏度進一步提高的情況下,可考慮在降低ATV給藥劑量的實驗條件下繼續(xù)探討其聯(lián)合用藥后受到的影響,以更接近臨床實際用藥情況。

        綜上,本研究結(jié)果表明,丹紅注射液聯(lián)合給藥可影響ATV在大鼠體內(nèi)的藥動學(xué)行為,即可增加ATV在大鼠體內(nèi)的暴露量。考慮到實際用藥中兩藥的給藥次數(shù)、給藥劑量及人與大鼠對ATV代謝存在的種屬差異,因此有必要開展后續(xù)研究以明確兩者在臨床上合并用藥時的藥動學(xué)相互作用,以確保安全、合理用藥。

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