文海若郭雅娟 # 黃芝瑛王 雪 * 淡 墨*

（1．中國食品藥品檢定研究院國家藥物安全評價監(jiān)測中心，藥物非臨床安全評價研究北京市重點實驗室，北京 100176；2．中山大學(xué)藥學(xué)院，廣東 廣州 510006）

納米技術(shù)是21世紀最重要的科學(xué)技術(shù)成果之一，納米材料獨特的物理化學(xué)性質(zhì)及其與生物體的相互作用為其應(yīng)用于醫(yī)藥領(lǐng)域提供了廣闊的前景。1995年美國FDA批準了第1個納米藥物Doxil上市[1]，緊接著在1996年美國FDA又先后批準了兩種靜注磁性氧化鐵納米顆粒(iron oxide nanoparticle，IONP)，分別為Ferumoxil和Ferumoxide，用于肝損傷和腫瘤的核磁共振造影(MRI)診斷[2-3]。IONP是常見的生物醫(yī)用納米材料，其生物相容性較好，且在診斷和殺傷神經(jīng)膠質(zhì)瘤方面效果尤為卓越[4-5]。然而不同表面修飾可導(dǎo)致納米材料與細胞的相互作用產(chǎn)生明顯差異，從而可能影響其體內(nèi)成像效果和抗腫瘤療效。

肺臟是人體納米材料暴露的主要器官之一，文獻中已有納米氧化鐵致肺臟損傷的報道。II型肺泡上皮細胞是肺臟功能單位肺泡的重要組成部分，人肺腺癌細胞A549細胞與II型肺泡上皮細胞具有相似的生理功能，可通過內(nèi)吞作用吞噬納米顆粒，且是肺臟毒性的常用體外評價模型[6-7]。

胺基(Amine)和聚乙二醇[poly(ethyleneglycol)，PEG]是常見的納米材料表面修飾基團，可賦予納米顆粒不同的表面電荷及細胞作用特征。前者攜帶正電荷，與帶有負電荷的PEG相比，經(jīng)胺基修飾的納米材料更易于與表面帶負電荷的細胞相互作用。本研究首先通過比較相同粒徑范圍(約5 nm)的胺基表面修飾的納米氧化鐵顆粒(Amine-IONP)和聚乙二醇表面修飾的納米氧化鐵顆粒(PEG-IONP)對A549細胞存活率和細胞周期的影響；之后使用高內(nèi)涵法評價經(jīng)不同納米氧化鐵顆粒處理后胞內(nèi)活性氧簇(reactive oxygen species，ROS)含量、線粒體膜電位(mitochondtial membrance potential，MMP)和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)(endoplasmic reticulum，ER)狀態(tài) 指標的變化；然后采用體外胞質(zhì)分裂法微核試驗和堿性彗星電泳評價其對DNA損傷的影響，從而綜合比較不同表面修飾的氧化鐵納米顆粒對A549細胞的毒性及其作用機制的差異。研究聯(lián)合使用氧自由基清除劑乙酰半胱氨酸(N-acetylcysteine，NAC)和叔丁基對羥基茴香醚(butylated hydroxyanisole，BHA)來進一步評價氧化應(yīng)激作用與DNA及染色體斷裂的關(guān)聯(lián)。

1 材料與方法

1.1 主要試劑與儀器

主要化學(xué)試劑包括：平均粒徑為5 nm的PEGIONP(生產(chǎn)批號MKBR4497V)和Amine-IONP(生產(chǎn)批號MKBR2641V)，以及遺傳毒性陽性劑絲裂霉素C(mitomycin C，MMC)和甲磺酸乙酯(ethyl methanesulfonate)均購自Sigma Aldrich公司；Cell Titer-Glo 2.0試劑盒購自Promega公司；PI/RNase染液、乙酰半胱氨酸(NAC) 和叔丁基對羥基茴香醚(BHA)購自Invitrogen公司；細胞核熒光探針Hoechst 33342、胞內(nèi)活性氧檢測熒光探針DCFH-DA、線粒體膜電位檢測熒光探針Mito Tracker?Red CMXRos、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激水平檢測熒光探針ER-Tracker Red和SYBR Green I nuclei acid gel stain購自Life Technologies；Trevigen Comet Assay Kit彗星檢測試劑盒購自Trevigen公司；anti-p21抗體、anti-p53抗體、anti-β-tubulin抗體購自SANTA CRUZ。

主要儀器包括：Zetasizer Nano ZS90納米粒徑電位分 析 儀(Malvern)；FACS CaliburTM流 式 細 胞 儀(BD)；Mini-PROTEAN?Tetra Cell 系 統(tǒng) (BIO-RAD)， SPECTR Amax-PLUS型酶標儀(Molecular Devices)；5810R型離心機(Eppendorf)；DYCP31F 型電泳儀(北京市六一儀器廠)；Eclipse 80i熒光顯微鏡(Nikon)；Komet 6.0圖像分析系統(tǒng)(Andor Technology)；IN Cell 2 000高內(nèi)涵分析儀(GE Healthcare)。

1.2 細胞

人肺腺癌II型肺泡基底上皮細胞A549由中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)細胞中心提供，液氮中保存。本研究所用細胞代數(shù)在第90～100代，細胞倍增時間約20～24 h，支原體檢測結(jié)果為陰性。

1.3 氧化鐵納米顆粒的粒徑分布和表面電性測定

Amine-IONP與PEG-IONP分別經(jīng)RPMI 1640培養(yǎng)基稀釋到一定濃度后，使用動態(tài)光散射法(dynamic light scattering，DLS)檢測顆粒在細胞培養(yǎng)液中的顆粒分布和表面帶電性。經(jīng)測定兩種不同表面修飾的5 nm氧化鐵納米顆粒在細胞培養(yǎng)液中均勻分布，無明顯聚集。PEG-IONP顆粒平均分布為(5.6±0.4) nm，表面帶電為-2 mV；Amine-IONP顆粒平均分布為(5.3±0.7)nm，表面帶電為+13 mV[8]。

1.4 細胞存活率測定

使用RPMI 1640培養(yǎng)液(含10%熱滅活小牛血清，青霉素100 U/mL、鏈霉素100 μg/mL)培養(yǎng)A549細胞，并分別更換無菌注射用水及不同濃度(20、40、80、160、 320 μg/mL)的 Amine-IONP和 PEG-IONP處 理 48 h，每濃度8個復(fù)孔。保留孔內(nèi)原培養(yǎng)基，加入等量Cell Titer-Glo?2.0 Reagent，室溫孵育10 min后立即檢測生物發(fā)光強度。因各濃度條件下細胞存活抑制率均<20%，整個研究中Amine-IONP和PEG-IONP均使用上述濃度范圍開展。

1.5 細胞周期檢測

細胞經(jīng)不同濃度處理24 h后在4 ℃預(yù)冷的70%乙醇溶液中固定，并在-20 ℃保存過夜處理。每樣加入500 μL PI/RNase染液室溫避光孵育30 min，并使用流式細胞儀檢測，每組分析2×104個細胞計算細胞增殖指數(shù)(proliferation index，PI)，分析軟件為ModFit LT(Verity Software House)。

1.6 p21和p53蛋白表達水平測定

細胞經(jīng)不同濃度PEG-IONP處理24 h后，經(jīng)裂解液冰浴裂解20 min。細胞裂解經(jīng)勻漿后備用。樣本經(jīng)BCA試劑盒定量后，每個樣品取約20 μg總蛋白加至含4%濃縮膠和10%分離膠的SDS-PAGE電泳(濃縮膠50 V恒壓電泳40 min，待樣品進入分離膠后，更換電壓至100 V恒壓電泳直至克羅寧、溴酚藍遷移至凝膠邊緣)，并轉(zhuǎn)至PVDF膜(100 V電泳轉(zhuǎn)移90 min)。轉(zhuǎn)膜完畢后，將膜放入含5% BSA-TBS中，室溫搖動1 h以封閉膜上的非特異結(jié)合位點。之后將膜用TBS/T洗3次，每次5 min。洗滌完畢后，將膜放入容器中，分別加入稀釋 于 1% BSA-TBS/T中 的 anti-p21(1∶ 200)、 anti-p53(1∶200)和anti-β-tubulin(1∶5 000)抗體，4 ℃置于搖床上，平緩搖動過夜。一抗標記后取出膜，用TBS/T洗3次，將膜重新放入容器中，加入5 000倍稀釋于1%BSA-TBS/T中的辣根酶標記二抗。室溫平緩搖動1 h后，取出膜，用TBS/T洗3次。在膜上加入化學(xué)發(fā)光試劑后在暗室內(nèi)顯色曝光。試驗重復(fù)3次。

1.7 氧化應(yīng)激相關(guān)指標檢測

1.7.1 胞內(nèi)ROS含量測定 細胞接種及給藥方法同上，每個試驗條件每個濃度設(shè)復(fù)孔8個。孵育結(jié)束后棄去孔內(nèi)原有培養(yǎng)基，每孔加入100 μL含Hoechst 33342 (終濃度2.5 μg/mL)和H2DCFDA(終濃度10 μmol/L)的培養(yǎng)基混合液，胞內(nèi)ROS通過將H2DCFDA去乙酰化而使其在495 nm激發(fā)光下發(fā)射綠色熒光，根據(jù)熒光強度來反映胞內(nèi)ROS的含量。

1.7.2 線粒體損傷水平的測定 每孔加入100 μL含Hoechst 33342(終 濃 度 2.5 μg/mL)和 MitoTracker?Red CMX Ros(終濃度100 nmol/L)的培養(yǎng)基混合液，探針進入細胞后在狀態(tài)正常的線粒體內(nèi)蓄積，固定過程可以去除膜電勢下降的居于線粒體中的探針，因此可以根據(jù)熒光探針的數(shù)量來反映線粒體的狀態(tài)。

1.7.3 內(nèi)質(zhì)網(wǎng)損傷水平的測定 每孔加入100 μL含Hoechst 33342(終濃度2.5 μg/mL)和ER-Tracker Red(終濃度1 μmol/L)的培養(yǎng)基混合液，內(nèi)質(zhì)網(wǎng)表面突出表達磺酰脲受體與ER-Tracker結(jié)合，因此根據(jù)結(jié)合的ERTracker的多少可以反映內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的功能狀態(tài)。分別加入上述染料后，細胞在37 ℃培養(yǎng)30 min，之后移除含染料的培養(yǎng)基，使用PBS 100 μL清洗2次，每孔加入50 μL含5%甲醇的PBS溶液固定，使用IN Cell 2000型高內(nèi)涵系統(tǒng)進行檢測。

1.8 彗星試驗

彗星試驗方法詳見前期研究[9]，簡述如下。調(diào)整A549細胞達對數(shù)生長期后，更換不同濃度Amine-IONP和PEG-IONP和陽性對照(EMS，200 μg/mL)分別處理48 h，之后收獲細胞并將密度調(diào)整為2×105/mL。1.5 mL試管37 ℃水浴預(yù)熱，每管預(yù)先加入300 μL Comet LMAgarose(Trevigen Comet Assay Kit彗星檢測試劑盒中瓊脂糖凝膠制備試劑)。每孔取單細胞懸液30 μL，用移液頭與預(yù)熱的Comet LMAgarose迅速混合均勻1～2次后鋪片，保證細胞均勻分布于每孔，每個樣本平行2孔。鋪片結(jié)束后將玻片置于4 ℃、避光、過夜裂解。之后將玻片碼放在電泳槽內(nèi)，緩緩添加預(yù)冷的堿性解旋液(pH>13)，室溫、避光解旋20 min。電泳條件為電壓約0.7 V/cm，電流約300 mA，電泳時間20 min。玻片經(jīng)中和、脫水處理后晾干。

染色時將稀釋過的SYBR Green I(1∶10 000)加在每孔表面，4 ℃冰箱放置5 min，室溫、避光晾干。使用Komet 6.0(Andor Technology)彗星圖像分析軟件進行分析。每個樣品至少計數(shù)100個彗星細胞的尾部DNA百分率(percentage of tail DNA)和Olive尾矩(Olive tail moment)的中位數(shù)。

1.9 胞質(zhì)分裂阻斷法微核試驗

A549細胞接種于6孔細胞培養(yǎng)板，每孔4×105個，培養(yǎng)約48 h，待細胞生長良好并達到對數(shù)生長期更換不同濃度培養(yǎng)液。在無代謝活化條件下，給予不同濃度的PEG-IONP和Amine-IONP處理48 h；另設(shè)滅菌注射用水溶媒對照組和MMC(0.1 μg/mL)陽性對照組處理24 h。每個處理條件設(shè)3個復(fù)孔。與細胞作用約24 h后更換含CytoB(3 μg/mL)的培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)至約24 h。細胞收獲時，用胰酶-EDTA液消化細胞，將消化后的細胞懸液移至15 mL離心管，1 000 r/min離心5 min。用DPBS洗滌2次，加入用預(yù)溫的0.075 mol/L KCl溶液2 mL于 37 ℃低滲處理5 min；加入固定液(甲醇∶冰醋酸體積比為3∶1)5 mL固定，1 000 r/min離心5 min，棄上清液，重復(fù)固定2次。滴片制備標本并編號。固定后的玻片標本浸入5% Giemsa應(yīng)用液中，染色25～30 min；將染色后的標本先后置于自來水、超純水中沖洗干凈，室溫下自然干燥。

顯微鏡下觀察并計數(shù)每個劑量組的Giemsa染色玻片標本中：每2 000個雙核細胞中微核(micronucleus，MN)和核質(zhì)橋(nucleoplasmic bridge，NPB)出現(xiàn)率[10]。

1.10 氧自由基清除劑預(yù)處理

為評價氧化應(yīng)激作用對細胞染色體和DNA斷裂的影響，A549細胞經(jīng)不同濃度Amine-IONP和PEG-IONP處理前，先給予氧自由基清除劑在BHA(100 μmol/L)或NAC(1 mmol/L)預(yù)處理30 min。之后分別如前開展ROS水平測定、微核試驗和彗星試驗測定。

1.11 結(jié)果分析

2 結(jié) 果

2.1 氧化鐵納米顆粒對A549細胞存活率的影響

320 μg/mL Amine-IONP和PEG-IONP與A549細胞作用24 h或48 h后，細胞的形態(tài)無明顯改變且細胞表面無明顯的顆粒團聚(圖1)。處理濃度為160 μg/mL及以下時Amine-IONP和PEG-IONP對細胞存活率均無明顯抑制作用。當處理濃度達到320 μg/mL時，與無菌注射用水溶媒對照組比較，僅PEG-IONP處理48 h后的細胞存活率明顯降低(P<0.01，圖2)。

圖1 A549細胞分別經(jīng)Amine-IONP和PEG-IONP(320 μg/mL)處理24和48 h后形態(tài)學(xué)觀察示例

2.2 氧化鐵納米顆粒對A549細胞增殖的影響

A549細胞經(jīng)不同受試物處理后，通過染色細胞核來分析其細胞周期，結(jié)果發(fā)現(xiàn)兩者均可降低處于S期的細胞比率(表1)。與對照組比較，320 μg/mL Amine-IONP處理后S期細胞比率顯著降低(P<0.01)，而PEGIONP 自20 μg/mL起即明顯減少S期細胞比率(P<0.01)，且均有濃度相關(guān)趨勢。提示納米氧化鐵顆粒均可誘導(dǎo)G0/G1期細胞周期阻滯，且PEG-IONP可在較低濃度產(chǎn)生細胞阻滯效應(yīng)。進一步對與細胞增殖相關(guān)的蛋白表達水平進行分析發(fā)現(xiàn)，PEG-IONP處理細胞24 h后可誘導(dǎo)p21與p53表達水平顯著升高(圖3，P<0.05)。

圖2 A549細胞與不同濃度Amine-IONP和PEG-IONP分別作用后的細胞存活率變化

表1 Amine-IONP和PEG-IONP對A549細胞周期的影響(n=3)

2.3 氧化鐵納米顆粒潛在的氧化應(yīng)激損傷評價

熒光探針標定結(jié)合高內(nèi)涵檢測結(jié)果提示，Amine-IONP作用24 h后即可誘導(dǎo)A549細胞ROS的過量生成，且存在濃度效應(yīng)關(guān)系；而PEG-IONP在處理48 h后才誘導(dǎo)細胞ROS水平顯著升高(圖4)。給藥48 h后，Amine-IONP和PEG-IONP誘導(dǎo)ROS水平顯著升高的起始濃度分別為20和40 μg/mL。此外，分別檢測不同細胞線粒體膜電位和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激狀態(tài)的變化，發(fā)現(xiàn)氧化鐵納米顆粒可對細胞亞結(jié)構(gòu)線粒體、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)等細胞器造成損傷(圖5和圖6)。Amine-IONP誘導(dǎo)MMP和ER損傷水平顯著性改變的起始濃度均低于PEG-IONP，而相同濃度作用條件下，前者誘導(dǎo)的損傷更為顯著。提示相同濃度作用下，Amine-IONP更易于誘導(dǎo)細胞內(nèi)氧化應(yīng)激 效應(yīng)。

圖3 PEG-IONP對A549細胞p21和p53蛋白表達水平的影響

2.4 氧化鐵納米顆粒致DNA斷裂作用

堿性彗星電泳試驗通常用于評價受試物潛在的細胞毒性和致DNA斷裂性。不同濃度的兩種氧化鐵納米顆粒與細胞分別作用48 h后，均可誘導(dǎo)A549細胞的尾部DNA百分率顯著性升高(P<0.01)(圖7A、B)。在染色體損傷層面，給予納米氧化鐵顆粒48 h后也可誘導(dǎo)A549細胞微核率顯著升高(圖7C)。相同濃度條件下Amine-IONP 誘導(dǎo)的尾部DNA百分率和微核率均高于PEG-IONP。核質(zhì)橋發(fā)生率整體背景值較低，且僅PEG-IONP在160 μg/mL 以上濃度可顯著誘導(dǎo)核質(zhì)橋發(fā)生率的升高，而Amine-IONP則對核質(zhì)橋發(fā)生率無影響(圖7D)。

圖4 Amine-IONP和PEG-IONP作用24或48 h后對A549細胞ROS相對水平的影響

圖5 Amine-IONP和PEG-IONP作用24或48 h后對A549細胞MMP相對水平的影響

為進一步確證氧化應(yīng)激作用在IONPs誘導(dǎo)的遺傳物質(zhì)損傷中扮演的角色，分別使用自由基清除劑對細胞進行預(yù)處理后再將細胞與Amine-IONP和PEG-IONP作用48 h。細胞經(jīng)NAC(1 mmol/L)或BHA(100 μmol/L)預(yù)處理后均可顯著抑制Amine-IONP和PEG-IONP所誘導(dǎo)的ROS水平、尾部DNA百分率和微核百分率的升高(見圖8)。

3 討 論

IONP是常見的生物醫(yī)用納米材料，已有相關(guān)產(chǎn)品(如Ferumoxil和Ferumoxide)在臨床用于臨床醫(yī)學(xué)造影診斷[2-3]。與其他含金屬粒子的納米材料比較，IONP的毒性較低但具有多種表面修飾，有助于我們研究納米顆粒表面修飾對其毒性的影響。本研究從細胞存活率、細胞周期、氧化應(yīng)激和DNA斷裂等多角度，對粒徑接近而表面修飾不同的兩種IONPs (Fe3O4NP)的潛在細胞毒性進行了比較。Amine-IONP更易于誘導(dǎo)氧化應(yīng)激損傷，細胞內(nèi)自由基蓄積是兩種IONPs造成DNA損傷的主要原因；而PEG-IONP除氧化應(yīng)激損傷外，與Amine-IONP相比較更易于抑制細胞增殖，PEG誘導(dǎo)的DNA損傷較弱可能與其細胞周期阻滯作用有關(guān)。

圖6 Amine-IONP和PEG-IONP作用24或48 h后對A549細胞ER相對水平的影響

圖7 Amine-IONP和PEG-IONP處理后A549細胞的彗星試驗和微核試驗結(jié)果

金屬納米顆粒在應(yīng)用于生物醫(yī)藥領(lǐng)域前，通常需要通過不同分子對其進行表面修飾從而增強其穩(wěn)定性與生物相容性。常用的納米氧化鐵顆粒表面修飾材料包括聚乙烯-乙酸乙烯酯[poly(ethylene-co-vinyl acetate)]、聚乙烯吡咯烷酮[poly(vinylpyrrolidone)，PVP]、聚乳酸-羥基乙酸共聚物[poly(lactic-co-glycolic acid)，PLGA]、PEG等[11]。然而不同表面修飾可對其毒性產(chǎn)生一定影響，如IONP (Fe3O4NP)經(jīng)PLGA包被后，與未經(jīng)包被的顆粒對比，其DsRed-Rab7細胞攝取量有所下降且對細胞亞結(jié)構(gòu)的損傷程度顯著減輕，該結(jié)果也在NIH小鼠重復(fù)給藥試驗中得到驗證[12]。Malvindi等[13]發(fā)現(xiàn)含有二氧化硅外殼的IONP對A549和HeLa細胞的氧化應(yīng)激作用和細胞亞結(jié)構(gòu)損傷均明顯減輕。某些表面修飾可通過減毒有助于其生物應(yīng)用。如表面經(jīng)亞硝酸鈉硝基化的IONP與人外周血淋巴細胞在體外條件下作用24 h后彗星試驗結(jié)果為陰性，提示其可作為釋放一氧化氮的納米攜帶者在體內(nèi)發(fā)揮抗炎功效[14]。而某些表面修飾則可增加納米顆粒的毒性，如與無包被的IONP(Fe3O4NP)相比，油酸鈉(sodium oleate)包被的IONP(Fe3O4NP)對Balb/3T3和COS-1的細胞毒性較大[15]。本研究對比了兩種不同表面修飾且攜帶不同電荷的IONPs，結(jié)果顯示Amine-IONP和PEG-IONP均可引起A549細胞總ROS水平升高以及線粒體和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)損傷，且Amine-IONP誘導(dǎo)氧化應(yīng)激效應(yīng)的能力要強于PEGIONP。攜帶正電荷的顆粒可能更易于被表面帶負電荷的細胞攝取，考慮帶正電荷的Amine-IONP表現(xiàn)出的更為顯著的氧化應(yīng)激作用和DNA斷裂效應(yīng)可能與其細胞攝取水平較高有關(guān)[16]。

圖8 NAC和BHA預(yù)處理對IONPs誘導(dǎo)的ROS水平、彗星拖尾和微核率的影響

大量研究提示IONP可誘導(dǎo)氧化損傷和DNA損傷，前者是后者的主要作用機制之一，也是IONP在人體殺傷腫瘤細胞和毒性作用的主要機制[17]。粒徑約30~35 nm的IONPs(Fe2O3NP)可誘導(dǎo)大鼠外周血抗氧化酶出現(xiàn)顯著抑制[18]；粒徑約5 nm的IONP可誘導(dǎo)小鼠心肌氧化應(yīng)激生物標志物如ROS、脂質(zhì)過氧化(LPO)和超氧化物歧化酶等水平顯著升高，并造成心肌組織DNA損傷(彗星試驗結(jié)果陽性)[19]。在體外研究中，10 μg/mL IONP(Fe2O3NP，<50 nm)即可誘導(dǎo)人乳腺癌細胞(MCF-7)的ROS、GSH、LPO、超氧化物歧化酶等指標和尾部DNA百分率顯著性升高[20]。 K?ncz?l等[6]研究提示粒徑約20~60 nm的IONP與A549細胞接觸24 h后可通過內(nèi)吞作用進入細胞，電鏡下每個細胞含有約幾十至幾百個顆粒，在約1/100的細胞中可見顆粒位于細胞核。該IONP 可誘導(dǎo)微核率和尾部DNA百分率升高，但在自由基清除劑存在的情況下遺傳毒性嚴重程度可顯著性降低。此外，IONP(Fe3O4NP)也通過氧化應(yīng)激作用誘導(dǎo)線粒體、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)和溶酶體等細胞亞結(jié)構(gòu)損傷[21]。上述文獻結(jié)果與課題組前期研究[8]和本研究中發(fā)現(xiàn)的IONP誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激效應(yīng)和遺傳物質(zhì)損傷結(jié)果基本相符。

納米材料普遍可對細胞增殖產(chǎn)生抑制作用。如納米銀可誘導(dǎo)敘利亞倉鼠胚胎細胞發(fā)生G0/G1期細胞周期阻滯[22]，而IONP可通過影響細胞周期素依賴性激酶和細胞周期調(diào)節(jié)蛋白的表達水平而誘導(dǎo)人間充質(zhì)干細胞G0/G1期的細胞比例下調(diào)[23]。此外，納米材料還可破壞人神經(jīng)細胞的細胞骨架的穩(wěn)定性，從而干預(yù)神經(jīng)形成穩(wěn)定性來干預(yù)有絲分裂的正常進行[24]。本研究中觀察到PEG-IONP在較低濃度條件下(20 μg/mL)就可產(chǎn)生G0/G1期細胞周期阻滯效應(yīng)，且與相同濃度的Amine-IONP相比抑制效應(yīng)更為顯著，并可誘導(dǎo)與細胞增殖有關(guān)的蛋白質(zhì)p21和p53的表達量上調(diào)。PEG-IONP對A549細胞周期抑制作用是其最主要的毒性表現(xiàn)，與其誘導(dǎo)的NBP百分率升高有關(guān)。NBP百分率的顯著性升高提示PEG-IONP可能通過抑制細胞周期進一步干預(yù)了處于G0/G1期的細胞中染色體附著于著絲粒的過程，從而形成細胞核分離不完全的雙核細胞結(jié)構(gòu)。上述結(jié)果可通過識別著絲粒的熒光原位雜交(fluorescence in situ hybridization，F(xiàn)ISH)法微核試驗進一步驗證[25]。

綜上所述，納米顆粒的表面修飾、表面電荷分布等特性可使其細胞/組織攝取機制、毒性機制及毒性表現(xiàn)存在一定差異。就IONP而言，PEG表面修飾產(chǎn)生的細胞毒性和遺傳毒性較低，但PEG-IONP作為異物進入細胞后更易于干擾細胞增殖，作為腫瘤診斷試劑具有一定優(yōu)勢。本研究結(jié)果為設(shè)計合理的納米材料表面修飾結(jié)構(gòu)，提高生物醫(yī)用納米材料的療效及減毒，進而推動納米材料產(chǎn)業(yè)發(fā)展提供了數(shù)據(jù)支持。