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(池州市人民醫(yī)院神經(jīng)外科,安徽 池州 247000)
動(dòng)脈栓塞(middle cerebral artery occlusion,MCAO)是指栓子沿血液循環(huán)進(jìn)入腦動(dòng)脈系統(tǒng),引起動(dòng)脈管腔閉塞,致使該動(dòng)脈供血區(qū)局部腦組織的壞死。MCAO是威脅人類健康的一種疾病,近年來發(fā)現(xiàn)促進(jìn)腦內(nèi)血管生成是一種新的恢復(fù)腦梗死的治療手段。骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(Bone Mesenchymal Stem Cells,BMSCs)是具有自我更新能力的一種細(xì)胞,可以多向分化為機(jī)體的各種細(xì)胞,其在體外誘導(dǎo)可以分化為神經(jīng)細(xì)胞[1],在組織工程、基因工程、細(xì)胞移植方面有較好的臨床應(yīng)用前景,BMSCs移植是治療腦血管疾病一種新的治療方法。本實(shí)驗(yàn)通過建立大鼠腦動(dòng)脈栓塞模型,觀察BMSCs移植后腦組織微血管密度(micro-vascular density,MVD)、血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)165、Notch1的表達(dá),來探究BMSCs促進(jìn)血管新生的機(jī)制。
1.1材料與試劑實(shí)驗(yàn)動(dòng)物:45只健康雄性SD大鼠,體質(zhì)量(260±20)g;10只健康雄性SD大鼠,體質(zhì)量(90±10)g,購自北京維通利華實(shí)驗(yàn)技術(shù)有限公司,許可證號(hào)SCXK(京)2011-0011。
主要試劑:胎牛血清、DMEM培養(yǎng)基、胰酶、雙抗(Gibico,美國);兔抗鼠Ⅷ因子多克隆抗體(Preprotech,美國);小鼠抗大鼠Notch1抗體(Chemicon,美國);兔抗大鼠VEGF抗體(Preprotech,美國);辣根過氧化物標(biāo)記的羊抗鼠IgG(北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司);組織蛋白提取試劑盒(北京索萊寶)。主要儀器:光學(xué)顯微鏡(OLYMPUS,日本);低溫高速離心機(jī)(Thermo,美國);PCR儀(ABI,美國);微量移液器、培養(yǎng)瓶、培養(yǎng)皿等。
1.2 BMSCs的分離培養(yǎng)[2]取體重為(90±10)g SD大鼠,分離其兩側(cè)的股骨,以使骨髓腔充分暴露,用DMEM培養(yǎng)基反復(fù)沖洗后,將骨髓懸液過濾并離心,棄掉上清,將重懸的細(xì)胞移至培養(yǎng)瓶中于細(xì)胞培養(yǎng)箱中進(jìn)行培養(yǎng)。培養(yǎng)24 h后棄掉沒有貼壁的細(xì)胞,更換新的培養(yǎng)液。在此之后每3天進(jìn)行1次換液,等到細(xì)胞生長融合達(dá)到80%~90%時(shí)傳代培養(yǎng)。取第4代的細(xì)胞用于本實(shí)驗(yàn)研究來進(jìn)行移植。
1.3 MCAO模型的建立線栓法制作MCAO模型[3-4]。將大鼠按照1 mL/100 g腹腔注射4%的水合氯醛麻醉。大鼠固定后,在頸部正中切口,分離暴露出右側(cè)頸總、頸內(nèi)和頸外動(dòng)脈,結(jié)扎頸外動(dòng)脈遠(yuǎn)心端、頸總動(dòng)脈近心端,夾閉頸內(nèi)動(dòng)脈,在頸外動(dòng)脈近心端剪一“V”形切口,將線栓插入距離頸總動(dòng)脈18 mm處時(shí)固定,縫合皮下組織,1個(gè)小時(shí)后拔線,縫合切口。大鼠即刻出現(xiàn)右側(cè)Horner征即為模型成功。
1.4 MCAO癱瘓程度評(píng)分動(dòng)物麻醉清醒后,參照Zea Longa方法[3],對(duì)神經(jīng)功能缺損進(jìn)行評(píng)分。1~3分者為納入本實(shí)驗(yàn)研究對(duì)象,對(duì)于神經(jīng)損傷太重(4分)或太輕(0分)的老鼠棄之不用。
1.5實(shí)驗(yàn)分組BMSCs移植組:模型制作成功24小時(shí)后,將第4代的BMSCs細(xì)胞3×106個(gè)混懸于0.6 mL磷酸鹽緩沖液(PBS),通過股靜脈勻速注入。MACO組,24小時(shí)后股靜脈勻速注入等量PBS。假手術(shù)對(duì)照組,只切開頸部皮膚暴露動(dòng)脈,不插線栓,24小時(shí)后股靜脈勻速注入等量PBS。各組再按不同時(shí)間點(diǎn)隨機(jī)分為3組,每組5只。BMSCs移植后4天、7天、14天取材。
1.6 MVD檢測隨機(jī)選擇各組各時(shí)間點(diǎn)腦組織冰凍切片5張,按照免疫熒光染色法Ⅷ因子檢測法,每單個(gè)內(nèi)皮細(xì)胞或內(nèi)皮簇為一個(gè)血管計(jì)數(shù),每個(gè)標(biāo)本取2~3張切片,熒光顯微鏡下對(duì)微血管進(jìn)行計(jì)數(shù)。用均值來作為微血管密度。
1.7 Western blot檢測VEGF165、Notch1蛋白表達(dá)
嚴(yán)格按照試劑盒說明書進(jìn)行操作來提取各組大鼠腦組織中的總蛋白,并進(jìn)行蛋白定量。分別制備濃縮膠與分離膠,加樣后行蛋白電泳、電轉(zhuǎn)移,5%脫脂奶粉封閉后,加入相應(yīng)一抗兔抗大鼠VEGF抗體、小鼠抗大鼠Notch1抗體(稀釋倍數(shù)為1∶1 000),4 ℃孵育過夜、洗膜后加入二抗(稀釋倍數(shù)為1∶2 000)37 ℃孵育2 h,清洗后于暗室中滴加化學(xué)發(fā)光液顯影,于凝膠成像系統(tǒng)采集圖像。以β-actin蛋白作為內(nèi)參,各組目的條帶灰度值與內(nèi)參進(jìn)行比值為蛋白的表達(dá)相對(duì)量。
1.8 RT-PCR檢測VEGF165、Notch1 mRNA表達(dá)取大鼠腦組織提取總RNA,于PCR儀中行逆轉(zhuǎn)錄,按照預(yù)先設(shè)定熒光定量PCR反應(yīng)程序進(jìn)行擴(kuò)增,行瓊脂凝膠電泳,用凝膠成像分析系統(tǒng)對(duì)電泳條帶的吸光度(OD值)半定量分析。結(jié)果以目的基因的OD值比上β-actin的OD值來表示。
2.1 BMSCs形態(tài)學(xué)變化原代培養(yǎng)的細(xì)胞呈圓形,1天后即開始貼壁生長,3天后可見細(xì)胞呈成纖維樣,5天時(shí)細(xì)胞生長增加,10天左右細(xì)胞生長達(dá)到80%~90%融合,細(xì)胞呈長梭形。傳代后,細(xì)胞增殖速度加快,隨著傳代代數(shù)的增加,細(xì)胞形態(tài)多逐漸趨于一致較均一為長梭形,并呈漩渦或束狀排列生長(圖1)。
圖1 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的形態(tài)學(xué)觀察(200×)A:原代培養(yǎng)的細(xì)胞;B:呈成纖維樣生長的貼壁干細(xì)胞; C:細(xì)胞生長達(dá)到80%~90%;D:第4代干細(xì)胞
2.2各個(gè)不同時(shí)間點(diǎn)大鼠腦組織MVD分析在假手術(shù)組微血管計(jì)數(shù)幾乎很少,MCAO組、BMSCs組微血管數(shù)量顯著高于假手術(shù)組(P<0.05),BMSCs移植后新生血管數(shù)量明顯增多(P<0.05,表1)。
表1 大鼠腦組織不同時(shí)間微血管計(jì)數(shù)
與假手術(shù)對(duì)照組,aP<0.05;與MCAO組,bP<0.05
2.3 Wsternblot檢測VEGF165、Notch1蛋白的表達(dá)MCAO組、BMSCs組在各個(gè)時(shí)間點(diǎn)VEGF165、Notch1蛋白表達(dá)均明顯高于假手術(shù)對(duì)照組(P<0.05),BMSCs移植后,表達(dá)更高(P<0.05),在第14天各組蛋白表達(dá)開始下降(圖2、表2)。
圖2 各組大鼠不同時(shí)間點(diǎn)VEGF165、Notch1蛋白的表達(dá)
分組VEGF1654天7天14天Notch14天7天14天假手術(shù)對(duì)照組0.019±0.0020.019±0.0030.018±0.0030.014±0.0020.014±0.0040.016±0.003MCAO組0.156±0.007a0.189±0.011a0.121±0.007a0.145±0.008a0.186±0.010a0.130±0.007aBMSCs組0.214±0.013ab0.298±0.014ab0.175±0.006ab0.202±0.012ab0.345±0.014ab0.183±0.008ab
與假手術(shù)對(duì)照組,aP<0.05;與MCAO組,bP<0.05
2.4 RT-PCR檢測VEGF165、Notch1 mRNA的表達(dá)
MCAO組、BMSCs組VEGF165、Notch1 mRNA表達(dá)均明顯高于假手術(shù)對(duì)照組(P<0.05),BMSCs移植后表達(dá)更高(P<0.05,表3)。
表3 各組大鼠不同時(shí)間點(diǎn)腦組織VEGF165、Notch1 mRNA的表達(dá)(n=5)
與假手術(shù)對(duì)照組比較,aP<0.05;與MCAO組比較,bP<0.05
腦栓塞有較高的發(fā)病率及致死率,會(huì)導(dǎo)致神經(jīng)功能損害,隨著對(duì)干細(xì)胞移植這一領(lǐng)域的研究越來越多,為治療腦動(dòng)脈栓塞提供了新的治療手段。BMSCs來源充足,生物特性穩(wěn)定,易于傳代培養(yǎng),可以分泌大量促血管生長因子[5]。BMSCs移植可以通過組織滲透、減少細(xì)胞凋亡、分泌細(xì)胞因子、減少炎癥反應(yīng)等許多途徑而作用于神經(jīng)系統(tǒng),對(duì)受損組織發(fā)揮修復(fù)與保護(hù)的作用[6]。BMSCs具有多向分化的功能,有研究表明BMSCs移植可以遷移到病變部位,分化為神經(jīng)細(xì)胞,改善腦梗死模型大鼠的神經(jīng)功能[7]。BMSCs移植對(duì)腦缺血損傷具有恢復(fù)、保護(hù)作用,其作用機(jī)理可能是通過增加神經(jīng)細(xì)胞數(shù)量與神經(jīng)因子表達(dá)來實(shí)現(xiàn)[8]。
血管新生是指血管內(nèi)皮細(xì)胞在血管生成因子的作用下形成新生血管,血管發(fā)生密度改變決定了腦梗死后神經(jīng)元存活與否,同時(shí)也是干細(xì)胞移植成功與否的關(guān)鍵性因素[9]。本實(shí)驗(yàn)通過股靜脈注射將BMSCs移植到MCAO大鼠模型體內(nèi),通過促進(jìn)栓塞區(qū)血管新生降低神經(jīng)功能的損失。本研究發(fā)現(xiàn)栓塞區(qū)腦組織血管新生明顯多于對(duì)照組,BMSCs組有大量微血管生成,提示可能是VEGF表達(dá)上調(diào),隨著時(shí)間延長,數(shù)量增加,在第14天時(shí)數(shù)量開始下降,進(jìn)一步Westernblot、PCR實(shí)驗(yàn)也證明了這一推論。
目前廣大學(xué)者認(rèn)為與血管新生密切有關(guān)的是VEGF和Notch信號(hào)通路。病理?xiàng)l件下,Notch信號(hào)通路與血管形成密切相關(guān),而VEGF可以通過Notch信號(hào)通路發(fā)揮生理作用,促進(jìn)血管生成[10-11]。VEGF是特異性促血管生成因子,對(duì)血管新生的起始具有關(guān)鍵性作用,其中VEGF165的作用最明顯。MACO動(dòng)物模型顯示,MACO后24小時(shí)血管內(nèi)皮細(xì)胞開始明顯增生[12],在本實(shí)驗(yàn)中,BMSCs移植到腦栓塞大鼠體內(nèi)后發(fā)現(xiàn)VEGF165蛋白、mRNA相較于假手術(shù)對(duì)照組明顯升高,說明BMSCs移植能夠通過增加VEGF165的表達(dá)從而促進(jìn)血管新生。
研究發(fā)現(xiàn),許多信號(hào)通路參與了血管新生的過程,其中Notch信號(hào)的調(diào)節(jié)作用尤為突出[13],另外,Notch信號(hào)激活可以促進(jìn)BMSCs移植作用,使心肌梗死區(qū)BMSCs向內(nèi)皮細(xì)胞分化,促進(jìn)缺血心肌中毛細(xì)血管新生[14],此外還對(duì)一些組織的血管生成具有調(diào)控作用[15]。在本實(shí)驗(yàn)中,BMSCs移植到腦栓塞大鼠體內(nèi)后發(fā)現(xiàn)Notch1蛋白、mRNA相較于假手術(shù)對(duì)照組明顯升高,表明BMSCs移植后可能通過激活Notch信號(hào)通路而促進(jìn)腦動(dòng)脈栓塞組織中VEGF165的表達(dá),從而促進(jìn)形成新生的血管[2]。
組織器官缺血后VEGF和Notch信號(hào)通路均與血管新生有著密切關(guān)系。VEGF能刺激血管的新生,是血管生成的重要因素,VEGF表達(dá)增加激活Notch信號(hào)通路。本實(shí)驗(yàn)檢測了腦栓塞組織區(qū)的VEGF165蛋白、mRNA與Notch1蛋白、mRNA,結(jié)果顯示,MCAO組、BMSCs組VEGF165蛋白、mRNA與Notch1蛋白、mRNA表達(dá)較假手術(shù)對(duì)照組明顯升高。表明Notch信號(hào)通路可以促進(jìn)BMSCs分化,提示VEGF調(diào)控血管生成過程中,Notch信號(hào)通路也參與血管新生,起著重要調(diào)控作用。
綜上所述,BMSCs移植可對(duì)腦動(dòng)脈栓塞大鼠有很好的治療效果,能夠使BMSCs在栓塞區(qū)存活,加快促進(jìn)血管新生,提高VEGF、Notch表達(dá),激活VEGF/Notch通路,促進(jìn)受損神經(jīng)功能的恢復(fù),在一定程度上保護(hù)了腦組織,為臨床治療腦栓塞提供了新的治療方法。但VEGF/Notch通路在BMSCs移植促進(jìn)腦微血管形成中的具體機(jī)制需要廣大學(xué)者的進(jìn)一步探索。