葉 鈺,高金燕,陳紅兵,佟 平*
(1.南昌大學(xué) 食品科學(xué)與技術(shù)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江西 南昌 330047; 2.南昌大學(xué)食品學(xué)院,江西 南昌 330047;3.南昌大學(xué)中德聯(lián)合研究院,江西 南昌 330047)
蛋清凝膠作為一種食品原料,在生產(chǎn)加工中具有重要的作用,不僅可以改善食品的質(zhì)地和形態(tài),還可以提高食品的保水性、增稠性、黏結(jié)性等[1]。但由于蛋清的水分含量較高,乳化性相對(duì)較低,蛋清蛋白極容易發(fā)生變性,在保藏和運(yùn)輸中蛋清的品質(zhì)和功能特性會(huì)發(fā)生變化[2-3]。
為提高蛋清凝膠的穩(wěn)定性和凝膠特性,胡瑞等[4]研究發(fā)現(xiàn)雜糧的種類與添加量可以影響雞蛋凝膠的保水性及質(zhì)構(gòu)特性,其中雜糧粉添加量與雞蛋凝膠的保水性、硬度、咀嚼性呈正相關(guān),與彈性呈負(fù)相關(guān)性,結(jié)果顯示添加適量雜糧粉可以改善雞蛋凝膠的品質(zhì)。曾虹艷等[5]研究不同磷酸鹽對(duì)雞蛋凝膠持水性的影響,結(jié)果表明,添加適量磷酸鹽可提高雞蛋凝膠的持水性。Handa等[6]研究不同pH值對(duì)熱誘導(dǎo)條件下蛋清凝膠質(zhì)構(gòu)特性的影響,發(fā)現(xiàn)在堿性條件下,溶液的pH值越高,蛋清凝膠的質(zhì)構(gòu)特性越好,網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)越有序。Croguennec等[7]研究發(fā)現(xiàn)金屬離子的種類與pH值對(duì)蛋清的凝膠性能有顯著影響。這些實(shí)驗(yàn)所用到的方法在一定程度上可以提高蛋清凝膠的保水性,增加凝膠強(qiáng)度,但也破壞了蛋清蛋白的結(jié)構(gòu),產(chǎn)生的副產(chǎn)物會(huì)影響其營(yíng)養(yǎng)價(jià)值,且存在一定的安全性問(wèn)題。因此,在不破壞蛋清蛋白的情況下研究一種改善蛋清凝膠性質(zhì)的技術(shù)對(duì)于凝膠產(chǎn)品的合理加工及開(kāi)發(fā)具有實(shí)際的指導(dǎo)意義。
近年來(lái),超聲作為一種改善蛋白質(zhì)功能性質(zhì)的綠色技術(shù),在食品的破損檢測(cè)、乳化、均質(zhì)、肉質(zhì)嫩化、滅菌、提取、過(guò)濾、干燥等方面發(fā)揮著重要作用[8-10]。并且經(jīng)研究發(fā)現(xiàn),經(jīng)過(guò)超聲處理后的蛋白質(zhì)凝膠特性顯著增強(qiáng)[11-16]。Hu Hao等[11-12]發(fā)現(xiàn)大豆分離蛋白鈣離子熱凝膠和葡萄糖酸內(nèi)酯熱凝膠經(jīng)過(guò)高場(chǎng)強(qiáng)超聲處理后凝膠強(qiáng)度和保水性都增強(qiáng),并且超聲處理后大豆蛋白的凝膠空間網(wǎng)絡(luò)變得更加致密、均一。Madadlou等[13]研究發(fā)現(xiàn),酪蛋白溶液經(jīng)過(guò)超聲處理后,形成凝膠的pH值降低,彈性和強(qiáng)度增強(qiáng)。超聲輔助適度加熱可以增強(qiáng)酸奶的凝膠結(jié)構(gòu)和持水性,降低凝膠的收縮性[14]。Tang Chuanhe等[15]發(fā)現(xiàn)高場(chǎng)強(qiáng)超聲能夠提高商用大豆分離蛋白的溶解性和凝膠性。Zisu等[16]對(duì)牛奶蛋白質(zhì)超聲處理后,發(fā)現(xiàn)超聲能夠降低乳清蛋白和酪蛋白的黏性,并增強(qiáng)其凝膠性。
目前,對(duì)超聲影響蛋白質(zhì)凝膠特性的研究多集中在單一分離蛋白質(zhì)理化性質(zhì)的變化等方面,而蛋清是一種混合蛋白質(zhì),結(jié)構(gòu)相對(duì)復(fù)雜,關(guān)于超聲改善蛋清凝膠性質(zhì)的研究鮮見(jiàn)報(bào)道。因此,本研究釆用超聲波技術(shù)作為改性手段,對(duì)蛋清溶液進(jìn)行超聲處理,分析蛋清蛋白質(zhì)超聲處理前后的空間結(jié)構(gòu)、分子分布和流變學(xué)性能的變化;然后,制作不同超聲條件處理的蛋清凝膠,通過(guò)對(duì)蛋清凝膠的保水性、質(zhì)構(gòu)特性等進(jìn)行分析,探索超聲對(duì)蛋清溶液形成凝膠的影響。研究結(jié)果可為利用超聲改善蛋清的凝膠性能提供參考,對(duì)雞蛋清產(chǎn)業(yè)化利用具有一定的指導(dǎo)和應(yīng)用價(jià)值。
雞蛋購(gòu)自于南昌市天虹商場(chǎng)。
考馬斯亮藍(lán)G250、牛血清白蛋白(均為分析純)生工生物工程(上海)股份有限公司;5,5’-二硫雙(2-硝基苯甲酸)(5,5’-dithiobis(2-nitrobenzoic acid),DTNB)、8-苯胺-1-萘磺酸(8-anilino-1-naphthalenesulfonic acid,ANS) 美國(guó)Sigma公司。
XO-1000D超聲波細(xì)胞破碎儀 江蘇南京先歐儀器制造有限公司;T18高速分散機(jī) 德國(guó)IKA公司;Lambda25紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì) 美國(guó)Perkin Elmer公司;J-810圓二色光譜儀 日本分光公司;F-4600熒光分光光度計(jì) 日本日立公司;高速冷凍離心機(jī) 美國(guó)Thermo Scientific公司;BI-200SM動(dòng)靜態(tài)光散射儀美國(guó)布魯克海文儀器公司;迷你型蛋白垂直電泳儀 美國(guó)Bio-Rad公司;DHR-2流變儀 美國(guó)TA公司;G:BOX凝膠成像系統(tǒng) 英國(guó)Syngene公司;TA.XT-Plus質(zhì)構(gòu)分析儀英國(guó)Stable Micro Systems公司。
1.3.1 超聲處理
手工分離得到鮮雞蛋的蛋清,用高速分散機(jī)攪拌(4 200 r/min、55 min),間歇開(kāi)閉分散機(jī)開(kāi)關(guān),控制蛋清溶液在室溫條件下,靜置1 h后,采用冷凍離心機(jī)離心(8 000 r/min,30 min),取上清液進(jìn)行超聲處理。將超聲波探頭伸入蛋清溶液表面1~2 cm。超聲前,先將盛有蛋清樣品的50 mL離心管放在冰水混合物中靜置20 min,以降低溶液溫度,整個(gè)超聲過(guò)程中,使蛋清樣品處于冰浴環(huán)境下,以避免樣品過(guò)熱。設(shè)置超聲頻率功率為30 Hz,工作時(shí)間7 s,間歇時(shí)間3 s。超聲功率分別為0、200、400、600 W,超聲時(shí)間分別為0、10、20、30 min,正交處理蛋清溶液,得到超聲處理前后的一系列樣品。
1.3.2 粒徑分析
將超聲處理前后的蛋清稀釋至1 mg/mL,經(jīng)0.45 μm濾膜過(guò)濾,設(shè)置測(cè)量波長(zhǎng)為633 nm,入射光路中的衰減輪為50%檔,散射角為90°,小孔徑片為200 μm,測(cè)試時(shí)間為5 min[17-18]。樣品平行測(cè)量3 次。
1.3.3 流變學(xué)分析
整個(gè)過(guò)程根據(jù)Nyemb等[19]的研究有所調(diào)整,設(shè)置儀器應(yīng)變?yōu)?%,振動(dòng)頻率在0.1~100 Hz范圍內(nèi)以對(duì)數(shù)增加,測(cè)量超聲處理前后的蛋清的儲(chǔ)能模量(G’)、耗能模量(G’’)和相位角(θ)與振動(dòng)頻率的關(guān)系。
1.3.4 結(jié)構(gòu)分析
1.3.4.1 一級(jí)結(jié)構(gòu)的測(cè)定
采用十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis,SDSPAGE)對(duì)超聲處理前后的蛋清的蛋白質(zhì)條帶進(jìn)行分析,按照不連續(xù)SDS-PAGE配方配制分離膠和濃縮膠,待凝膠凝固后,取樣品和上樣緩沖液等體積混合,每孔上樣量為10 μg。電泳后,在G:BOX凝膠成像系統(tǒng)上分析得到凝膠圖。
1.3.4.2 二級(jí)結(jié)構(gòu)的測(cè)定
將樣品稀釋成0.5 mg/mL,設(shè)定掃描范圍為190~250 nm,掃描速率為100 nm/min,光徑為0.1 cm,間隔0.1 nm,帶寬0.1 nm,平行測(cè)2 次。通過(guò)在線圓二色譜分析網(wǎng)站(http://dichroweb.cryst.bbk.ac.uk/html/ho.shtml)對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析計(jì)算,結(jié)果以平均摩爾橢圓率[θ]表示,單位為(deg·cm2)/dmol。
1.3.4.3 內(nèi)源性熒光光譜分析
將超聲處理前后的蛋清稀釋至0.1 mg/mL,設(shè)定熒光分光光度計(jì)的條件為:激發(fā)波長(zhǎng)為350 nm,發(fā)射波長(zhǎng)為300~400 nm,應(yīng)答時(shí)間為4 s,狹縫寬度為5.0 nm,電壓為400 V。對(duì)樣品的熒光強(qiáng)度進(jìn)行掃描。
1.3.4.4 紫外-可見(jiàn)分光光譜分析
將超聲處理前后的蛋清稀釋至0.1 mg/mL,設(shè)置掃描波長(zhǎng)范圍為250~350 nm,間隔為1.0 nm,掃描速率中等,帶寬為2.0 nm,響應(yīng)時(shí)間為0.2 s。
1.3.4.5 表面疏水性的測(cè)定
將超聲處理前后的蛋清用磷酸鹽緩沖液(50 mmol/L,pH 7.0)稀釋至0.1 mg/mL,分別取5 mL加入30 μL ANS溶液(5 mmol/L)混合,室溫下避光反應(yīng)1 h后,測(cè)其熒光強(qiáng)度。設(shè)定熒光分光光度計(jì)的條件為:激發(fā)波長(zhǎng)為390 nm,發(fā)射波長(zhǎng)為400~700 nm,掃描速率為1 200 nm/min,光徑為1 cm,狹縫寬度為5 nm,電壓為700 V。
1.3.4.6 游離巰基含量的測(cè)定
采用Ellman法測(cè)定超聲處理前后的蛋清的游離巰基含量[20-21]。將樣品用三羥甲基氨基甲烷-甘氨酸(Tris-glycine)緩沖液稀釋成4 mg/mL,將4 mg DTNB溶于1 mL Tris-glycine緩沖液配成Ellman試劑,分別取3 mL稀釋后的樣品溶液與30 μL Ellman試劑混合,室溫下避光反應(yīng)15 min后,在412 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度,以Tris-glycine緩沖液作為空白對(duì)照,按照公式(1)計(jì)算游離巰基含量。
式中:75.53=106/(1.36×104),1.36×104表示摩爾消光系數(shù)(mol/(L?cm));ρ表示蛋白質(zhì)樣品的質(zhì)量濃度/(mg/mL);D表示樣品稀釋倍數(shù)(7.5)。
1.3.5 凝膠性質(zhì)的分析
將超聲處理前后的蛋清90 ℃水浴加熱30 min,制成蛋清凝膠[22],冷卻,妥善保存,確保其完整性。
1.3.5.1 凝膠保水性的測(cè)定
用離心法測(cè)凝膠保水性[23],并做適當(dāng)修改。取2 g蛋清凝膠用濾紙制成小包,置于10 mL EP管中。8 000 r/min離心20 min,倒去水分,并小心用濾紙轉(zhuǎn)移殘存的水分,稱質(zhì)量,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次,凝膠保水性按式(2)進(jìn)行計(jì)算。
式中:m1表示離心前凝膠和離心管的質(zhì)量/g;m2表示離心后去除水分的凝膠和離心管的質(zhì)量/g。
1.3.5.2 質(zhì)構(gòu)特性的測(cè)定
用質(zhì)構(gòu)儀測(cè)量蛋清凝膠的質(zhì)構(gòu)特性[24-25]。采用P/5探頭對(duì)樣品進(jìn)行兩次壓縮。測(cè)定條件如下:測(cè)前速率:5.0 mm/s;探頭以1.0 mm/s的速率穿刺;測(cè)后速率:5.0 mm/s;測(cè)定距離為15 mm;壓縮比例為50%;觸發(fā)力:5.0 g;觸發(fā)類型:Auto;數(shù)據(jù)攫取速率:200 pps;停留時(shí)間:5 s。每個(gè)樣品制3塊凝膠,平行測(cè)量3 次。
所有數(shù)據(jù)利用Microsoft Excel 2010軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)處理,采用Origin 9.0軟件進(jìn)行作圖分析,用SPSS 17.0軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行方差分析,用S-N-K法進(jìn)行多重比較(P<0.05表示差異顯著)。
利用動(dòng)靜態(tài)光散射分析超聲對(duì)蛋清溶液粒徑大小及其分布的影響(圖1),與未超聲的樣品相比,隨著超聲功率的增加和超聲時(shí)間的延長(zhǎng),蛋清溶液粒徑主峰不斷左移,粒徑分布范圍變窄,說(shuō)明超聲使蛋白質(zhì)的整體分子粒徑分布變窄。與未超聲樣品相比,超聲200 W、20 min和30 min的樣品在20 nm以下的粒徑分布消失,而在28~40 nm范圍內(nèi)出現(xiàn)了新的粒徑次峰;超聲400 W、10 min和30 min的樣品的粒徑分布分別在15 nm和20 nm以下消失,均在30~50 nm范圍內(nèi)出現(xiàn)了新的粒徑次峰,說(shuō)明在200 W和400 W的超聲處理下,蛋清溶液的蛋白質(zhì)發(fā)生了聚集,也有小部分發(fā)生了降解。與未超聲樣品相比,在超聲600 W條件下,超聲10、20、30 min的樣品分別在55、45、42 nm以下沒(méi)有粒徑分布,且在65~90、55~85、55~82 nm范圍內(nèi)出現(xiàn)了新的粒徑次峰,說(shuō)明在600 W的超聲處理下,蛋清溶液的蛋白質(zhì)發(fā)生了部分的降解,也有小部分發(fā)生了聚集。
圖1 超聲處理的蛋清樣品粒徑分布圖Fig.1 Particle size distribution of egg white samples after ultrasonic treatment
G’表示樣品在發(fā)生形變時(shí),由于彈性形變(可逆)而儲(chǔ)存的能量,大小與凝膠的彈性有關(guān),G’’表示樣品在發(fā)生形變時(shí),由于黏性形變(不可逆)而損耗的能量,大小與液體的黏性有關(guān)[26]。G’和G’’的比值稱為損耗角正切(tan θ),表示黏彈性的度量,tan θ越大,黏性越大,tan θ越小,彈性越大[27]。溶液在形成凝膠的過(guò)程中,G’和G’’一直在發(fā)生變化。形成凝膠之初,G’<G’’,溶液主要發(fā)生黏性形變,呈液態(tài);隨著交聯(lián)反應(yīng)的進(jìn)行,分子基團(tuán)逐步增大,G’顯著上升,直到G’=G’’,此時(shí)稱為膠凝點(diǎn),溶液形成半固體的凝膠態(tài);膠凝點(diǎn)之后,G’>G’’,半固體的樣品發(fā)生彈性形變,呈固態(tài)[28]。
如圖2C所示,與未超聲樣品相比,經(jīng)過(guò)600 W、30 min的超聲處理后,tan θ增大,黏性變大,說(shuō)明蛋白溶液表現(xiàn)出更加偏向液體的流變性,黏性越來(lái)越大,形成的凝膠彈性較差;同時(shí),與未超聲樣品相比,在同一振動(dòng)頻率下,600 W、30 min超聲處理組樣品的G’、G’’明顯降低,可能是600 W、30 min處理組樣品發(fā)生了一定的降解,蛋清溶液的粒度減小,此推測(cè)與動(dòng)靜態(tài)光散射結(jié)果符合,從而形成凝膠的交聯(lián)程度降低,凝膠性能下降。
如圖2A、C所示,隨著振動(dòng)頻率增加,200 W、10 min超聲處理組G’顯著下降,tan θ增大,說(shuō)明蛋白溶液形成的凝膠彈性降低,黏性增大,類似于600 W、30 min超聲處理的樣品,蛋白溶液也偏向液體的流變性,但由于超聲的強(qiáng)度此時(shí)并不高,可能是由于蛋清溶液的蛋白質(zhì)種類繁多且組成復(fù)雜,導(dǎo)致200 W、10 min的超聲處理后蛋清液的部分蛋白質(zhì)更偏向于溶液的黏性。說(shuō)明蛋清作為混合蛋白源,蛋清中的蛋白質(zhì)種類和組成在超聲處理下發(fā)生的變化也會(huì)影響蛋清溶液的流變性。
圖2 超聲處理的蛋清樣品的流變性變化Fig.2 Variation in rheological properties of egg white samples after ultrasonic treatment
通過(guò)SDS-PAGE分析超聲對(duì)蛋清蛋白條帶的影響(圖3),發(fā)現(xiàn)蛋白樣品經(jīng)過(guò)超聲處理之后,蛋白質(zhì)條帶沒(méi)有明顯的變化,說(shuō)明超聲對(duì)蛋白質(zhì)的一級(jí)結(jié)構(gòu)并不造成影響。
圖3 超聲處理的蛋清樣品的SDS-PAGE圖Fig.3 SDS-PAGE patterns of egg white samples after ultrasonic treatment
圖4 超聲處理的蛋清樣品圓二色光譜Fig.4 Circular dichroism spectra of egg white samples after ultrasonic treatment
利用圓二色光譜分析超聲對(duì)蛋清蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)的影響,由圖4可知,未超聲樣品在195 nm波長(zhǎng)處有正峰,在219~221 nm波長(zhǎng)處有負(fù)峰,說(shuō)明未超聲樣品的二級(jí)結(jié)構(gòu)以β-折疊為主。超聲處理后,光譜曲線與X坐標(biāo)軸的交點(diǎn)沒(méi)有明顯遷移,大部分在192 nm波長(zhǎng)處有一個(gè)正峰,在208 nm和222 nm波長(zhǎng)處有負(fù)峰,表明超聲處理后,蛋清樣品的二級(jí)結(jié)構(gòu)主要以β-螺旋結(jié)構(gòu)為主,但部分超聲的蛋清溶液仍表現(xiàn)以β-折疊結(jié)構(gòu)為主的特征峰。蛋清溶液的蛋白質(zhì)分子主要是β-折疊結(jié)構(gòu),在超聲處理下,隨超聲時(shí)間的延長(zhǎng),蛋清溶液的β-螺旋結(jié)構(gòu)和β-折疊結(jié)構(gòu)出現(xiàn)了無(wú)規(guī)則變化。說(shuō)明超聲處理下,部分蛋清溶液的蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu)發(fā)生改變。
分析超聲對(duì)蛋清蛋白三級(jí)結(jié)構(gòu)的影響,如圖5A~C所示,在200 W和400 W的超聲處理下,蛋清溶液的熒光強(qiáng)度均降低(圖5A),暴露在溶液中的芳香族氨基酸殘基減少(圖5C),而游離巰基含量在超聲10 min和20 min顯著減少(P<0.05)(圖5D),超聲30 min無(wú)顯著性變化(P>0.05),疏水基團(tuán)增加(圖5B)??赡苁怯捎诔暤目昭ㄗ饔脤?dǎo)致蛋白質(zhì)發(fā)生碰撞后相互作用,蛋白質(zhì)發(fā)生卷曲、折疊,使部分生色基團(tuán)被包裹在蛋白分子內(nèi)部,導(dǎo)致熒光強(qiáng)度部分猝滅,蛋白質(zhì)發(fā)生折疊時(shí),蛋白質(zhì)部分聚集,蛋白質(zhì)分子間的芳香族氨基酸殘基、疏水基團(tuán)和游離巰基被部分掩埋,巰基形成了二硫鍵,因此暴露在溶液中的芳香族氨基酸殘基和游離巰基含量下降;而疏水基團(tuán)增加可能是由于蛋白質(zhì)發(fā)生聚集時(shí),分子間相互作用,暴露出分子內(nèi)的疏水基團(tuán)。
如圖5A~C所示,在600 W的超聲作用下,相對(duì)于未處理的蛋清樣品,超聲10 min的熒光強(qiáng)度明顯降低,超聲20 min和30 min的熒光強(qiáng)度(圖5A)和暴露在溶液中的芳香族氨基酸殘基(圖5C)、疏水基團(tuán)增加(圖5B),游離巰基含量顯著增加(P<0.05)(圖5D),可能是蛋白質(zhì)分子相互作用,暴露出不同的生色基團(tuán)。相比于超聲20 min和30 min的樣品,超聲10 min的樣品的熒光強(qiáng)度反而低于未處理樣品,可能是由于蛋清溶液是混合蛋白源,分子結(jié)構(gòu)復(fù)雜、熒光生色基團(tuán)分布不均、蛋白質(zhì)分子伸展和折疊方式不同,在超聲處理下都會(huì)引起蛋白熒光強(qiáng)度的差異[29],蛋白質(zhì)部分展開(kāi)時(shí),蛋白質(zhì)分子結(jié)構(gòu)由緊密變得松散,暴露在溶液中的芳香族氨基酸殘基越來(lái)越多,蛋白質(zhì)的分子間疏水作用也被破壞,分子內(nèi)部暴露出了更多的疏水基團(tuán),包埋在蛋白質(zhì)內(nèi)部的巰基暴露到分子表面,同時(shí)分子間或分子內(nèi)的二硫鍵被打斷,形成了新的巰基。
圖5 超聲處理的蛋清樣品三級(jí)結(jié)構(gòu)變化Fig.5 Change in tertiary structure of egg white samples after ultrasonic treatment
由圖6A可知,在超聲200 W時(shí),和超聲0 min相比,超聲處理使蛋清凝膠保水性顯著增加(P<0.05),但超聲10 min和20 min之間無(wú)顯著性變化(P>0.05)。在超聲400 W時(shí),超聲10 min保水性無(wú)顯著性變化(P>0.05),超聲20 min和30 min的凝膠保水性顯著增強(qiáng)(P<0.05)。在超聲600 W時(shí),和超聲0 min相比,超聲10、20、30 min均使蛋清凝膠保水性顯著增強(qiáng)(P<0.05),但超聲10、20 min和30 min處理組之間蛋清凝膠保水性無(wú)顯著性變化(P>0.05)。保水性增強(qiáng)可能是因?yàn)槌暡ǖ目昭ㄐ?yīng)使蛋清溶液的蛋白質(zhì)發(fā)生了一定的折疊和聚集,從而蛋清凝膠形成的空間網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)更加均一、穩(wěn)定,對(duì)水分子的綁定更加堅(jiān)固[30]。Zhang Ziye等[31]發(fā)現(xiàn)肌纖維蛋白凝膠在經(jīng)過(guò)超聲處理之后,保水性會(huì)增加,因?yàn)槌曋蟮鞍踪|(zhì)溶液更加均一,空隙變小,更容易防止水分子逸出,和本研究結(jié)論一致。
由圖6B可知,在200 W和400 W超聲處理下,隨著超聲時(shí)間的延長(zhǎng),蛋清的凝膠強(qiáng)度顯著增強(qiáng)(P<0.05),可能是由蛋白質(zhì)分子間或分子內(nèi)發(fā)生了一定的交聯(lián)反應(yīng),蛋白質(zhì)發(fā)生了一定的折疊和聚集,這能導(dǎo)致蛋白質(zhì)聚集體的相對(duì)分子質(zhì)量增大,而暴露在溶液中的游離巰基含量減少,二硫鍵增多,導(dǎo)致分子間或分子內(nèi)發(fā)生交聯(lián)的機(jī)會(huì)增多,因此蛋清溶液的凝膠強(qiáng)度增強(qiáng)。相反,在600 W、30 min的超聲處理下,蛋清溶液的凝膠強(qiáng)度顯著降低(P<0.05),可能是長(zhǎng)時(shí)間的超聲處理使蛋清溶液的蛋白質(zhì)逐漸展開(kāi),并發(fā)生了一定的降解,使蛋白質(zhì)分子間不容易發(fā)生交聯(lián)反應(yīng)。Zhang Peipei等[32]在轉(zhuǎn)谷氨酰胺酶催化大豆分離蛋白的實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),隨著超聲功率的增大,蛋白質(zhì)的凝膠強(qiáng)度增加,說(shuō)明超聲有利于大豆分離蛋白的交聯(lián)反應(yīng),并能增加氨基酸之間的非共價(jià)作用和增強(qiáng)蛋白質(zhì)凝膠三維網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定性。但本研究發(fā)現(xiàn),與未處理樣品相比,在超聲600 W、30 min的條件下,蛋清蛋白的凝膠強(qiáng)度反而降低了。由此可見(jiàn),蛋白種類不同,超聲處理對(duì)蛋白凝膠結(jié)構(gòu)的影響也不同。
圖6 超聲處理對(duì)蛋清凝膠特性的影響Fig.6 Effect of ultrasonic treatment on egg white gel properties
超聲可以改變蛋清溶液的粒徑分布,使部分蛋白質(zhì)分子粒徑變大,部分蛋白質(zhì)分子粒徑變小。200 W、10 min和600 W、30 min的超聲處理下,蛋清溶液偏向于液體的流變性。在200 W和400 W的超聲處理下,蛋清溶液的蛋白質(zhì)發(fā)生了折疊和聚集,也有小部分發(fā)生了降解;在600 W的超聲處理下,蛋清溶液的蛋白質(zhì)發(fā)生了部分的降解,也有小部分發(fā)生了聚集。在200、400 W和600 W 3 種功率的超聲處理下,與超聲0 min相比,蛋清凝膠的保水性均增強(qiáng)。200 W和400 W的超聲處理有利于增強(qiáng)蛋清的凝膠強(qiáng)度,使凝膠更加堅(jiān)固和致密;600 W、30 min的超聲處理會(huì)使蛋清的凝膠強(qiáng)度降低,從而使凝膠的穩(wěn)定性降低。
本研究說(shuō)明一定強(qiáng)度的超聲處理可以改善蛋白質(zhì)的凝膠特性,但需要限制超聲處理的強(qiáng)度,高功率和長(zhǎng)時(shí)間的作用下,蛋白質(zhì)的凝膠特性可能會(huì)降低。前人研究超聲對(duì)蛋白質(zhì)凝膠特性的影響,主要致力于對(duì)單一蛋白影響的研究,如大豆7S蛋白、羅非魚(yú)分離蛋白等,而在食品加工過(guò)程中,蛋白質(zhì)發(fā)揮凝膠特性通常是在復(fù)雜的食物基質(zhì)條件下;因此,研究超聲對(duì)單一蛋白凝膠特性的影響具有一定的局限性。本研究以蛋清蛋白這一混合蛋白源為研究對(duì)象,對(duì)其在超聲前后的理化性質(zhì)、流變特性及功能特性進(jìn)行了詳細(xì)的探討,研究結(jié)果可為進(jìn)一步改善蛋清制品凝膠特性、充分開(kāi)發(fā)利用我國(guó)蛋清資源提供參考。