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        人類MTHFR基因多態(tài)性快速檢測方法

        2018-11-07 06:46:26吳凱魏趙延李思慧林偉強
        生物化工 2018年5期
        關鍵詞:探針多態(tài)性質粒

        吳凱,魏趙延,李思慧,林偉強

        (江蘇正大天創(chuàng)生物工程有限公司,江蘇泰州 225300)

        葉酸是一種水溶性的B族維生素(維生素B9),為具有生物活性的葉酸鹽(folate)的前體,其在體內的活性形式是5-甲基四氫葉酸,能傳遞一碳基團(甲基或甲酰)給脫氧尿苷酸,使之變?yōu)槊撗跣剀账?,進而合成DNA,是合成核酸、細胞生長和組織修復所必需的物質,更是胚胎發(fā)育過程中不可缺少的營養(yǎng)素。近年來大量研究已經(jīng)證實,葉酸是胎兒生長發(fā)育不可缺少的營養(yǎng)素,有助于預防神經(jīng)管缺陷,包括脊柱裂和無腦兒等非常嚴重的出生缺陷的發(fā)生。葉酸的臨床功能除了預防胎兒神經(jīng)管缺陷外,還能降低孕婦妊娠高血壓、自發(fā)性流產(chǎn)和胎兒宮內發(fā)育遲緩、早產(chǎn)以及新生兒低體重、唇腭裂、心臟缺陷等發(fā)病率。

        亞甲基四氫葉酸還原酶(Methylene Tetrahydrofolate Reductase,MTHFR)是細胞內葉酸平衡和代謝的關鍵酶,在嘌呤和胸腺嘧啶存在的條件下不可逆催化5-甲酸基四氫葉酸合成5-甲基四氫葉酸,后者參與DNA的合成與甲基化作用。MTHFR基因常見的突變有兩種[1]:677位點C/T多態(tài)性與1 298位點A/C多態(tài)性。其中,C677T位點是到目前為止發(fā)現(xiàn)的MTHFR最為常見的突變位點,在中國的發(fā)生率為45.2%。研究表明[2-4],677位點由C突變?yōu)門后,其編碼的丙氨酸被纈氨酸替代,導致MTHFR酶的熱穩(wěn)定性與酶活性降低,進而會使同型半胱氨酸(Hcy)代謝受阻,在體內積聚引起高同型半管氨酸血癥。高同型半管氨酸血癥與多發(fā)性流產(chǎn)、子癇前期、胎盤早剝、胎兒生長受限、胎兒畸形、死胎有關,且與早產(chǎn)密切相關。另外,1 298位點A變?yōu)镃后,谷氨酸被丙氨酸取代,同樣使MTHFR的酶活性下降,引起血漿同型半胱氨酸水平的升高和葉酸水平的降低,該位點在中國突變的頻率高達18.6%。

        本研究通過建立一種簡單、準確的快速檢測MTHFR基因多態(tài)性的試劑盒,為臨床指導孕婦服用葉酸提供實驗依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 研究對象

        收集來自泰州婦幼保健院的孕婦隨機靜脈血標本100例,孕周2~36周。用真空采血管空腹采集各研究對象肘靜脈血3 mL,EDTA-K2抗凝,樣本置4 ℃保存。

        1.2 儀器與試劑

        7500實時熒光定量PCR儀(美國賽默飛世爾公司);ST16R臺式高速冷凍離心機(美國賽默飛世爾公司);NanoDrop微量分光光度計(美國賽默飛世爾公司);血液DNA提取試劑盒(康為世紀生物科技有限公司);GoldStarTaqMan Mixture(康為世紀生物科技有限公司)。

        1.3 方法

        1.3.1 引物、探針設計

        通 過 NCBI數(shù) 據(jù) 庫(www.ncbi.nlm.nih.gov) 獲得MTHFR基因的全長編碼序列(GenBank:NM_005957.4),并進一步找到對應的基因組序列,用primerexpress 3.0軟件設計ARMS引物和探針,并根據(jù)人類基因組中相對保守的基因GAPDH基因的保守區(qū)域設計引物及熒光探針作為內標,引物及熒光探針由上海生工公司合成。檢測引物以及測序的引物序列見表1。

        1.3.2 樣本擴增及測序

        構建MTHFR-677和1298位點的PCR擴增總體系為 50μL,包括 GoldStar TaqMan Mixture 25μL,上、下游引物各1μL,基因組DNA 2μL,ddH2O補足至 50μL;PCR 循環(huán)參數(shù):95 ℃ 10 min;95 ℃ 15 s,58 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,共 35 個循環(huán)。取 10μL PCR 擴增產(chǎn)物送上海生工公司進行序列測定。根據(jù)測序結果,挑選出MTHFR基因677和1 298位點野生型和突變型樣本進行熒光定量PCR擴增。

        表1 MTHFR多態(tài)性位點及參考品品構建所用引物探針

        1.3.3 陽性參考品的構建

        實驗中的陽性參考品質粒由上海捷瑞生物科技有限公司合成。將含有5 μg質粒MTHFR-677-C、質粒MTHFR-677-T、質粒GAPDH、質粒MTHFR-1298-A、質粒MTHFR-1298-C、質粒HBV溶于200 μL純化水中,并進行梯度稀釋至10-5。將100μL 10-5質粒MTHFR-677-C、100 μL純化水、100 μL 10-5質粒GAPDH進行混合成為MTHFR-677-CC型陽性參考品。將100 μL 10-5質粒MTHFR-677-T、100 μL純化水、100 μL 10-5質粒GAPDH進行混合成為MTHFR-677-TT型陽性參考品。100 μL 10-5質粒MTHFR-677-C、100 μL 10-5質 粒 MTHFR-677-T、100 μL 10-5質 粒GAPDH進行混合成為MTHFR-677-CT型陽性參考品。 將 100 μL 10-5質 粒 MTHFR-1298-A、100 μL純化水、100 μL 10-5質粒GAPDH進行混合成為MTHFR-1298-AA型陽性參考品。將100 μL 10-5質粒 MTHFR-1298-C、100 μL純化水、100 μL 10-5質粒GAPDH進行混合成為MTHFR-1298-CC型陽性參考品。將100 μL 10-5質粒MTHFR-1298-A、100 μL 10-5質粒 MTHFR-1298-C、100 μL 10-5質粒GAPDH進行混合成為MTHFR-1298-AC型陽性參考品,陽性參考品的濃度為83 ng/μL。

        1.3.4 熒光定量PCR擴增和結果判讀

        PCR反應總體積為25 μL,包括2×TaqMan Mixture 12.5 μL,上、下游引物(ARMS引物、下游引物、內標正向引物、內標反向引物)各1 μ L,10 μmol/L檢測探針各0.5 μL,內標探針0.5 μL,基因組DNA 2 μL,并用 ddH2O 補足體積至 25 μL。檢測MTHFR-677位點和MTHFR-1298位點分別在2個PCR管中進行。PCR循環(huán)參數(shù):95 ℃ 10 min;95 ℃115 s,60 ℃ 60 s,共40個循環(huán)。用7500 實時熒光定量PCR儀在60℃時收集熒光信號,熒光檢測通道設置時,2管均選擇FAM、VIC和ROX通道,淬滅基團選擇“NFQ-MGB”。結果判讀:記錄每個檢測通道的Ct值,當反應的內參通道(ROX)有擴增曲線,且Ct<30,但2管的FAM通道或者VIC通道均沒有擴增曲線,可能為樣本DNA存在PCR抑制劑,應重新取樣提取基因組DNA。樣品管進行分析,按表2對MTHFR基因多態(tài)性進行判定。

        表2 結果判定表

        2 實驗與結果

        2.1 重復性實驗

        分 別 取 MTHFR-677-CC、MTHFR-677-TT、MTHFR-677-CT、MTHFR-1298-AA、MTHFR-1298-AC、MTHFR-1298-CC按照最佳反應體系,分別進行批內重復性實驗,在同1天,同1批次每種型、每個濃度樣本各做10次檢測,批次1、批次2和批次3各重復檢測1次,計算Ct值的變異系數(shù)。

        重復性檢測結果見表3,4。結果表明,MTHFR-677位點和1298位點重復性檢測的CV值均處于較低水平。

        表3 MTHFR-677位點重復性檢測結果

        表4 MTHFR-1298位點重復性檢測結果

        2.2 最低檢出限檢測及結果

        以質粒陽性參考品為模板,進行10倍連續(xù)稀釋,分別取2 μL作為模板,用實時熒光定量PCR儀按照1.4.3的方法進行檢測,確定該方法的最低檢出限。結果顯示,采用本方法測得的DNA濃度最低檢出限8.3×10-3ng/μL。詳見圖 1。

        圖1 最低檢出限檢測結果

        2.3 特異性檢測結果

        利用NCBI數(shù)據(jù)庫的對實驗設計的引物探針進行系列比對表明,實驗設計的引物探針特異性良好。677位點引物與1298位點質粒標準品交叉檢測無熒光信號產(chǎn)生,同樣1298位點引物檢測677位點質粒標準品無熒光信號產(chǎn)生。陰性對照(ddH2O)無熒光信號產(chǎn)生,整體特異良好。

        2.4 臨床樣本檢測

        按照血液DNA提取試劑盒說明書操作提取各研究對象的基因組DNA,取1 μL樣本用NanoDrop微量分光光度計檢測濃度及純度,濃度低于10 ng/mL或吸光度(A260/280)<1.7的樣本需重新提取至合格為止。從合格的樣本中隨機選取50例樣本,并用本公司構建標準品的引物進行核酸擴增,PCR產(chǎn)物送上海生工公司用對MTHFR的677和1298位點進行多態(tài)性分析,其中MTHFR的677位點測序檢測為C表明樣本為野生型,為T則為突變型,同時存在C/T的雙峰則為雜合型;MTHFR的1298位點測序檢測為A表明樣本為野生型,為C則為突變型,同時存在C/A的雙峰則為雜合型。以評價本實驗建立的方法與測序法結果的一致性。熒光PCR檢測結果示:MTHFR-677-CC 16例,MTHFR-677-CT 30例,MTHFR-677-TT 4例,MTHFR-1298-AA 33 例,MTHFR-1298-AC 15例,MTHFR-1298-CC 2例。

        3 討論

        本研究建立人MTHFR基因多態(tài)性的檢測方法結合了ARMS引物和TaqMan探針各自的優(yōu)點,可以實現(xiàn)對突變樣本在的快速檢測和結果判斷。提供2管反應同時檢測人類 MTHFR基因C677T位點和A1298C位點多態(tài)性的試劑盒,從對樣本核酸的提取到給出檢測結果,只需要2~3小時,同時還具有結果判讀簡單、檢測通量大、檢測成本低的優(yōu)點。試劑盒驗證了最低檢出限,特異性和重復性等性能指標,結果表明建立的方法能檢測8.3×10-3ng/μL濃度的質粒標準品。特異性實驗表明MTHFR-677和1298位點各自的PCR 擴增體系檢測對方的質粒標準品無交叉反應,整個實驗體系不存在非特異性擴增的問題。精密度試驗結果表明其Ct的CV<5%,表明重復性良好。

        王蘇梅等[5]報道應用TaqMan探針實時PCR檢測人MTHFR基因C677T多態(tài)性的方法,其方法是將MTHFR基因多態(tài)性位點設計在MGB探針的正中間,利用探針的特異性實現(xiàn)MTHFR基因多態(tài)性的識別;然而本實驗結果表明,兩者存在交叉檢測,極易導致試驗結果的不準確,另外一次只能檢測一個位點。

        王佳等[6]使用擴增阻滯突變系統(tǒng)快速檢測MTHFR基因多態(tài)性,但其采用的方法仍然需要通過瓊脂糖凝膠電泳來鑒定PCR結果,該方法的明顯缺點是存在電泳導致的PCR擴增產(chǎn)物污染。測序法是檢測MTHFR基因多態(tài)性的金標準,但是操作耗時長且靈敏度低,難以實現(xiàn)大規(guī)模推廣,與測序法相比本實驗建立的方法優(yōu)勢明顯,探針靈敏度高、準確性強,2~3個小時內即可得出結果,因此可以大規(guī)模運用和推廣。當然,本實驗尚存在不足之處,雖然本實驗過程不存在PCR開蓋污染的可能,但是更安全的做法是在PCR擴增體系中添加UNG酶(尿嘧啶-N-糖基化酶)和dUDP,以完全消除PCR擴增產(chǎn)物對后續(xù)PCR擴增產(chǎn)生污染的可能。

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