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        電針對Beagle犬展神經(jīng)損傷后小膠質細胞活化狀態(tài)的影響

        2018-11-06 05:41:42王蕾張毅王旭東葉子
        關鍵詞:膠質電針神經(jīng)

        王蕾 張毅 王旭東 葉子

        (南通大學第二附屬醫(yī)院:1急診中心; 2神經(jīng)外科; 3中醫(yī)科,江蘇 南通 226001)

        顱內感染、腫瘤、顱腦外傷、眼部病變等常出現(xiàn)導致展神經(jīng)損傷,損傷后局部微環(huán)境代謝復雜,而神經(jīng)細胞高度分化、再生能力低,影響了患者的生活質量[1]。迄今尚缺乏促進其功能修復的有效措施,顯微外科手術修復不盡滿意,相關的基礎研究目前也存在異議。針對病因治療外,電針刺激是一種較好的康復治療方法[2]。小膠質細胞是中樞神經(jīng)系統(tǒng)的免疫吞噬細胞,在傷害性應激狀態(tài)下迅速反應,釋放大量的細胞因子,而研究得出炎癥反應是影響神經(jīng)損傷后功能恢復的關鍵[3]。小膠質細胞在不同的微環(huán)境中可以出現(xiàn)不同的細胞表型:M1型與M2型。在神經(jīng)細胞損傷后可激化為M1型,誘導免疫炎癥反應,但過多的炎癥反應因子同時也會導致正常細胞的損傷及凋亡[4]。M2型小膠質細胞主要抑制機體過度的免疫反應,促進炎癥修復,保證神經(jīng)修復與再生[5]。故抑制炎癥刺激對神經(jīng)細胞的過度打擊,調控小膠質細胞M1型與M2型動態(tài)平衡成為神經(jīng)功能保護作用機制的焦點?;谝陨媳尘?,本實驗以電針刺激為核心,利用小膠質細胞為切入點,采用Western Blot技術明確展神經(jīng)中M1、M2型標志分子的表達,進一步探討電針刺激展神經(jīng)修復的機制。

        材料與方法

        一、實驗對象

        選用健康Beagle犬(6月齡,n=36),雌雄各半,體重(15.0±0.5) kg,由南通大學醫(yī)學院動物實驗中心提供,許可證號SCXK(蘇):2008-0010。實驗動物飼養(yǎng)于單獨的犬房,可自由走動,保證適宜的溫度進行飼養(yǎng),飼養(yǎng)2 w進行實驗。隨機分為3組,每組12只:假手術組(A)、損傷組(B)和電針處理組(C)。實驗動物治療4 w取材進行Western Blot檢測展神經(jīng)小膠質細胞M1、M2型標志分子的表達水平。動物的處理遵守國家健康協(xié)會制定的實驗動物使用指南。實驗分組:假手術組(A):Beagle犬麻醉后,僅暴露分離展神經(jīng),術中不進行神經(jīng)損傷處理,縫合切口皮膚,在電針刺激時進行束縛,連續(xù)2 w,每次持續(xù)15 min。損傷組(B):Beagle犬麻醉后,制作展神經(jīng)損傷模型,在電針刺激時進行束縛,連續(xù)2 w,每次持續(xù)15 min。電針處理組(C):12只Beagle犬展神經(jīng)損傷模型建立后進行電針刺激,每次持續(xù)15 min連續(xù)2 w。參數(shù)設置:刺激脈沖頻率 5 Hz,時程 0.1 ms,刺激強度 1.0 V。

        二、實驗方法

        1. 展神經(jīng)損傷動物模型制作:術前12 h禁食后注射3%戊巴比妥鈉(1 mL/kg)靜脈麻醉。將Beagle犬置于手術臺進行側臥位,固定試驗動物頭顱,耳緣牽向尾側固定,麻醉充分開顱后皮瓣翻向外側切除大腦半球,保留中腦組織,經(jīng)顳肌附著處縱向切開。經(jīng)顳底入路開顱,骨窗盡量靠近顱底,擴大骨窗范圍從眶后到顴弓前,并沿顳骨窗下緣切開硬腦膜沿斜坡向上外方做一創(chuàng)口約3.5 cm×3.5 cm。經(jīng)巖顳韌帶下方進入海綿竇充分暴露深部的展神經(jīng)。用有齒止血鉗擠壓夾閉展神經(jīng)30 s后直視鉗壓處組織菲薄,切斷展神經(jīng)軸突但維持神經(jīng)鞘膜完性,以犬眼球呈內斜視表明造模成功。

        2. 電針刺激:C組展神經(jīng)損傷模型制完成后將2個電極(5F導管)分別置入神經(jīng)損傷處兩側。向外方牽拉上下眼瞼,在瞼板與球結膜交界處充分暴露外直肌,將電極均插入外直肌,植入深度約3.0 mm,間距約4.0 mm,縫合切口固定電極。游離端自眼眶后下方引出固定,形成回路,術后連續(xù)2 w給予電針刺激,每次持續(xù)15 min。參數(shù)設置:脈沖頻率為5 Hz,時程 0.1 ms,強度1.0 V。A及B組僅束縛,不刺激。

        3. Western Blot檢測小膠質細胞的M1、M2分子表達:取上述Beagle犬各分組每組12只,用10%水合氯醛進行深度麻醉后,迅速用手術剪剪下展神經(jīng)節(jié)段,在低溫無菌冰盤上進行操作,分離出少許神經(jīng)組織置于1 mL勻漿器球狀部位,盡量充分剪碎組織。加入含苯甲基磺酰氟(phenylmethanesulfonyl fluoride, PMSF)的400 μL單去污劑裂解液裂進行勻漿。裂解30 min后在4 ℃下12 000 rpm離心10 min,取上清分裝置于-20 ℃保存。提取小膠質細胞的總蛋白,通過NanoDrop定量,取40 μg蛋白進行SDS-聚丙烯酰胺凝膠(sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel, SDS-PAGE)電泳,將蛋白以恒定電流30 mA,電轉90 min轉移到聚偏二氟乙烯(polyvinylidene fluoride, PVDF)膜上,TBST洗膜3次,然后5%TBST脫脂奶粉的以60 rpm的速度封閉60 min,加入一抗4 ℃冰箱孵育過夜(一抗的濃度:白細胞介素1β(interleukin 1β,IL-1β)為1 ∶ 200,誘導性一氧化氮合酶(inducible nitric oxide synthase, iNOS)為1 ∶ 3 000,精氨酸(arginase)為1 ∶ 1 000,腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(brain derived neurotrophic factor, BDNF)為1 ∶ 200,一抗孵育完成后TBST漂洗3次,再移至新雜交袋中,與熒光標記二抗(1 ∶ 20 000)常溫孵育60 min,TBST充分清洗后以增強化學發(fā)光法(enhanced chemiluminescence, ECL)顯影并拍照,進行條帶灰度分析。

        三、統(tǒng)計分析

        結 果

        一、Beagle犬展神經(jīng)電刺激損傷模型建立

        Beagle犬展神經(jīng)暴露清楚(箭頭所示),術后均生存良好,無感染、角膜潰瘍等并發(fā)癥,展神經(jīng)損傷后,犬眼球呈內斜視(圖1、2)。

        二、Western Blot 結果

        將三組實驗動物治療4 w取材進行Western Blot檢測展神經(jīng)小膠質細胞M1、M2型標志分子的表達水平。

        B組的iNOS的表達較A組比較增加(P<0.05),C組的iNOS與A組無統(tǒng)計學差異(P>0.05);其中與B組相比,C組iNOS降低(P<0.05);同時B、C組的IL-1β的表達較A組比較均增加(P<0.05),其中與B組相比,C組IL-1β降低(P<0.05)。而與A組相比,B、C組Arginase表達均增加(P<0.05),其中C組的Arginase較B組表達增加(P<0.05),BDNF在B、C組的表達均增加(P<0.05),C組的BDNF較B組表達增加(圖3)。

        圖1 Beagle犬展神經(jīng)

        Fig 1 Nerve of Beagle dog model

        圖2 展神經(jīng)損傷后眼球位置

        Fig 2 The position of the eyeball after nerve injury

        圖3 電針刺激對小膠質細胞M1、M2型標志分子表達

        Fig 3 Expression of M1 and M2 marker molecules on microglia stimulated by electroacupuncture

        表1 電針刺激對小膠質細胞M1、M2型標志分子表達比較

        Tab 1 Comparison of electroacupuncture stimulation on expression of M1 and M2 type markers in microglia

        GroupiNOSIL-1βArginaseBDNF Group A0.11±0.930.02±1.290.25±1.140.05±1.08 Group B0.31±0.89a0.09±1.15a0.38±1.03a0.49±0.78a Group C0.14±1.01b0.05±0.91ab0.67±0.89ab0.82±0.68ab

        Note:aP<0.05,vsGroup A;bP<0.05,vsGroup B.

        討 論

        外展神經(jīng)損傷病因較為復雜,由多種因素導致支配神經(jīng)受損引起眼球運動受限。目前的顯微外科手術治療展神經(jīng)損傷的臨床療效有了較高的進步,但對于嚴重神經(jīng)損傷的功能恢復仍不是滿意的解決方案。而針刺的基礎研究及臨床試驗均發(fā)現(xiàn),電針刺激神經(jīng)損傷有效地提高受損神經(jīng)功能恢復率[6]。通過減輕損傷細胞炎癥反應、抑制神經(jīng)細胞凋亡、改善代謝微環(huán)境,調節(jié)炎性因子釋放,從而促進神經(jīng)再生、阻斷炎癥級聯(lián)反應[7]。目前較多學者在針刺治療周圍神經(jīng)損傷的研究主要集中在面神經(jīng)和坐骨神經(jīng)損傷修復,在動眼神經(jīng)損傷修復亦有相關研究。同時利用電針刺激外展神經(jīng)麻痹亦取得了較好的療效,但關于針刺促進外展神經(jīng)修復機制研究較少。

        當內環(huán)境細胞因子水平的改變、侵染病原體的類型、刺激的強度與時間等應激狀態(tài)出現(xiàn),小膠質細胞最先啟動免疫反應。通過產(chǎn)生一系列的免疫受體:①Toll樣受體(toll like receptors, TLRs)能夠使缺血性損傷惡化,但是缺血性損傷前TLRs短暫激活卻能降低繼發(fā)損傷[8];②核苷酸結合寡聚化結構域(nucleotide-binding oligomerization domains, NODs)、NOD樣受體和多種清道夫受體等,對于神經(jīng)元凋亡及認知功能產(chǎn)生影響,目前主要研究于阿爾茨海默病(Alzheimer disease, AD),同時產(chǎn)生多種炎性因子TNF-α、IL-6、IL-1β、IFN-γ和多種趨化因子[9],表現(xiàn)為M1型。有研究表明M1型小膠質細胞關鍵性標記物為iNOS。iNOS能夠利用精氨酸產(chǎn)生NO,與過氧化物反應形成過氧亞硝基陰離子,產(chǎn)生細胞毒性[10]。在消滅病原體的同時,還通過氧化應激反應釋放氮基團與活性氧自由基對神經(jīng)元起到強烈的神經(jīng)毒性作用[11]。而IL-1β與IL-1受體結合后,激活NF-κB通路促進炎癥發(fā)生[12]。M2型小膠質細胞能誘發(fā)一系列的抗氧化反應,上調血紅素氧合酶-1(heme oxygenase-1, HO-1)表達,抑制缺血后活性氧產(chǎn)生[13]。M2型小膠質細胞還能夠通過IL-10發(fā)揮負反饋作用,抑制促炎因子IL-1β、IL-6和TNF-α產(chǎn)生,上調神經(jīng)生長因子(nerve growth factor, NGF)表達,抑制Caspase-3活性,減少神經(jīng)元死亡[14]。新生神經(jīng)元的存活易受微環(huán)境的影響。小膠質細胞能夠通過P2X4R釋放BDNF,促進新生神經(jīng)元存活[15]。Arginase和Ym1能預防細胞外基質降解[16]。M2型小膠質細胞能夠去除異常的突觸,促進功能性突觸形成而發(fā)揮神經(jīng)保護作用[17]。

        我們課題組在前期研究中已經(jīng)成功建立Beagle犬展神經(jīng)損傷的動物模型,通過顳底入路,術后試驗動物生存較滿意,無嚴重感染、癲癇等危重并發(fā)癥,除展神經(jīng)損傷所致的眼球運動障礙外,未觀察到合并其它神經(jīng)功能障礙表現(xiàn)[18]。建模成功后用電針刺激展神經(jīng),術后4 w開始Beagle犬的瞳孔中心至外眥內側緣距離明顯縮小,外直肌功能開始恢復,認為電針刺激可以明顯促進損傷的展神經(jīng)恢復[19],我們猜測4 w是展神經(jīng)小膠質細胞從M1型轉化為M2型進行活化的關鍵時刻。通過Western Blot檢測,我們發(fā)現(xiàn)C組M1型標志分子iNOS和IL-1β的表達較B組顯著降低,表明電針刺激能夠抑制小膠質細胞活化為M1型。而C組Arginase和BDNF表達較B組增多,電針刺激能夠顯著升高M2型轉化。

        綜上所述,我們的研究從切斷展神經(jīng)軸突作為損傷因素,通過觀察電針刺激后其對小膠質細胞表型的影響。但是試驗中我們保持神經(jīng)鞘膜完性,保留了神經(jīng)電活動的傳導連續(xù)性,而小膠質細胞的活化狀態(tài)是受多種因素綜合影響的,包括應激因素的種類、程度、時間等,包括活化過程依賴的細胞種類,接受神經(jīng)元損傷程度的信號程度等,值得我們繼續(xù)深入研究。

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