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        大鼠心臟移植物排斥反應(yīng)時(shí)心肌瞬時(shí)外向鉀電流與心肌細(xì)胞動(dòng)作電位變化的研究

        2018-11-01 08:12:32賈一新焦玉清羅文琦王宏娟
        心肺血管病雜志 2018年1期
        關(guān)鍵詞:肌細(xì)胞動(dòng)作電位移植術(shù)

        賈一新 孟 旭 焦玉清 韓 薇 李 巖 羅文琦 王宏娟

        心臟移植(heart transplantation,HTx)是治療終末期心臟病的有效方法。排斥反應(yīng)(acute rejection,AR)是影響HTx近遠(yuǎn)期療效的重要因素[1-2]。早期診斷和治療AR是心臟移植患者長(zhǎng)期存活的重要保障。利用心電生理發(fā)現(xiàn)和診斷排斥反應(yīng)已經(jīng)有較多的研究:排斥反應(yīng)發(fā)生時(shí),心室電壓減低[3-4],心肌阻抗增加[5],靜息電位降低[6],心肌內(nèi)心電圖(intramyocardial electrograms, IMEG)QRS波幅降低,心室刺激反應(yīng)的T波降支最大斜率(the maximum slope of the descending T wave of the ventricular evoked response,VER T slope)降低[7]等。這些研究揭示了排斥反應(yīng)發(fā)生時(shí),心肌細(xì)胞電生理信息的改變,但其中的機(jī)制并不清楚。動(dòng)作電位(action potential,AP)的形態(tài)和時(shí)長(zhǎng)反應(yīng)了心肌細(xì)胞受到刺激后的電生理特性,而瞬時(shí)外向鉀電流(transient outward potassium current,Ito)是AP復(fù)極I期的主要成分,Ito電流密度及動(dòng)力學(xué)特征的改變可以顯著地改變心肌的電生理特征,間接影響其后其它電流的激活和失活過(guò)程,對(duì)動(dòng)作電位的時(shí)程和形態(tài)有較大影響[8-9]。目前已有研究證實(shí),在許多心血管疾病中表現(xiàn)出Ito電流和通道表達(dá)的改變,然而,在心臟移植排斥反應(yīng)中AP與Ito電流密度的變化并不清楚,以及其與上述排斥反應(yīng)心電生理特征是否相關(guān)也未有研究,因此,本研究以大鼠異位心臟移植模型為樣本,擬研究心臟移植物排斥反應(yīng)時(shí)心肌細(xì)胞AP與Ito電流密度的變化。

        資料與方法

        1.實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 雄性,8周齡,Brown Norway(BN)大鼠,共60只,體質(zhì)量230g左右;雄性8周齡,Lewis大鼠,20只,體質(zhì)量230g左右。40只,BN大鼠作為供體,20只BN大鼠和20只Lewis大鼠作為受體。所有動(dòng)物由首都醫(yī)科大學(xué)附屬北京安貞醫(yī)院動(dòng)物室提供并喂養(yǎng),遵循動(dòng)物福利原則,并得到倫理委員會(huì)批準(zhǔn)。

        2.異位心臟移植 采用改良大鼠腹部心臟移植動(dòng)物模型手術(shù)方法[10-11]。心臟移植物冷缺血時(shí)間<45m。每日經(jīng)腹部觸摸檢查移植心臟存活情況,如有移植物丟失,再進(jìn)行補(bǔ)充,確保研究組例數(shù)。

        3.實(shí)驗(yàn)分組 對(duì)照組與實(shí)驗(yàn)組各20只,均分為四組,每組5只。四組動(dòng)物分別在移植后第2、4天處死,迅速獲取心臟移植物,一組行病理檢查,一組行電生理檢查。

        4.病理檢查 于術(shù)后第2、4天,處死各亞組大鼠,獲取移植心臟。以蘇木素-伊紅(HE)染色,參考ISHLT排斥反應(yīng)分級(jí)方法[12],在光鏡下以半定量評(píng)分的方式評(píng)估移植心臟心肌細(xì)胞損傷和炎癥細(xì)胞侵潤(rùn)情況[13-14]。ISHLT grade 0記為0分; ISHLT grade 1A記為1分; ISHLT grade 1B記為2分;ISHLT grade 2記為3分; ISHLT grade 3A記為4分; ISHLT grade 3B記為5分; ISHLT grade 4記為6分。

        5.電生理檢查 (1)移植物心室肌細(xì)胞制備 取出供心,離體心臟放入盛有4℃ Buffer B的10cm小皿中,清洗心臟,迅速去除脂肪和心包膜,游離主動(dòng)脈,剪開(kāi)右心房。打開(kāi)恒流泵,主動(dòng)脈逆行插管連于Langendorff灌流裝置(圖1)上,心臟內(nèi)血液清除干凈后改為Buffer A灌流,繼而酶液灌流。心室肌組織剪成盡量小的組織塊,用吸管輕輕吹打,使細(xì)胞從心肌碎塊上分離,獲得單個(gè)心室肌細(xì)胞。細(xì)胞復(fù)鈣完成,膜片鉗實(shí)驗(yàn)中選擇桿狀,外形完整,透光度好,橫紋清晰無(wú)顆粒的細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)研究(圖2)。

        (2)全細(xì)胞膜片鉗記錄 實(shí)驗(yàn)在室溫(20~25℃)下進(jìn)行,細(xì)胞孵育0.5h后將小皿中的上清液緩慢倒出,分別加入相應(yīng)的細(xì)胞外液,同時(shí)要配合使用對(duì)應(yīng)的電極內(nèi)液。小皿固定于倒置顯微鏡載物臺(tái)上,固定浴液電極。盡量減低噪音的干擾。顯微鏡下選取外形完整,形狀規(guī)則,邊緣整齊,表面光滑無(wú)顆粒,橫紋清晰,無(wú)收縮的長(zhǎng)桿狀細(xì)胞。設(shè)定到電流鉗模式給與一定時(shí)間和強(qiáng)度的電流描記各細(xì)胞組全細(xì)胞動(dòng)作電位的變化。設(shè)定到電壓鉗模式給與一定時(shí)間和強(qiáng)度的電壓刺激描記各細(xì)胞組鉀、鈉、鈣等通道電流的變化。膜片鉗放大器系統(tǒng)通過(guò)A/D和D/A數(shù)據(jù)轉(zhuǎn)換器與計(jì)算機(jī)進(jìn)行連接,PatchMaster軟件控制相關(guān)的刺激信號(hào)以及電流、電壓信號(hào)的采集(圖3)。玻璃微電極拉制儀拉制玻璃毛胚成尖端直徑1~1.5μm的玻璃微電極。打開(kāi)監(jiān)測(cè)窗口,出現(xiàn)測(cè)試脈沖電流方波信號(hào)(圖4)。充灌好電極內(nèi)液的玻璃微電極正壓入水,電阻為4~5ΜΩ,電極接觸細(xì)胞前補(bǔ)償液接電位。用三維操縱儀調(diào)節(jié)電極尖端的位置使其移向細(xì)胞表面,輕壓細(xì)胞微變形,1mL注射器負(fù)壓吸引封接心肌細(xì)胞,形成高阻封接(Giga seal),封接電阻1GΩ以上,脈沖信號(hào)消失,完成封接,進(jìn)行電極電容補(bǔ)償。觀察1~2min,如果不能自行破膜,1mL注射器負(fù)壓吸引。漏電流提示失敗,退出玻璃微電極,退出前先解除微電極管內(nèi)負(fù)壓狀態(tài)。若破膜成功,則會(huì)出現(xiàn)充放電現(xiàn)象,形成全細(xì)胞的記錄模式,此時(shí)要對(duì)全細(xì)胞膜電容進(jìn)行補(bǔ)償。補(bǔ)償完成后給與相應(yīng)的電信號(hào)刺激,進(jìn)行信號(hào)采集。信號(hào)經(jīng)四階貝塞爾的低通濾波器,截止頻率為1kHz,采樣頻率為10kHz。

        圖1 Langendorff灌流裝置的示意圖;圖2 分離得到的大鼠移植心臟心室肌的細(xì)胞

        圖3 全細(xì)胞膜片鉗記錄示意圖;圖4 玻璃微電極負(fù)壓吸引封接心肌細(xì)胞

        (3)記錄方法 鉗制模式:將PatchMaster膜片鉗系統(tǒng)Recording Mode調(diào)至Whole Cell模式,封接破膜后給予相應(yīng)的電壓刺激,記錄細(xì)胞的鉀、鈉和鈣離子通道電流;同樣的方法封接破膜后,將Recording Mode調(diào)至C-Clamp模式,I-membrane數(shù)值設(shè)為0,給予相應(yīng)的電流刺激,記錄細(xì)胞的動(dòng)作電位。

        1)瞬時(shí)外向鉀電流 記錄Ito時(shí)細(xì)胞外液中加入CdCl20.1mmol/L以阻斷鈣電流,加入CdCl21mmol/L以阻斷鈣激活氯電流。

        記錄Ito的I-V曲線(xiàn)時(shí)Vh為-90mV,先給予一個(gè)50ms至-40mV的去極化刺激以滅活I(lǐng)Na。Vt從-40mV開(kāi)始,以10mV階躍刺激至60mV,時(shí)程400ms,采樣頻率10kHz。以測(cè)試電壓60mV的Ito峰值電流密度在用藥后的變化作為觀察指標(biāo)。

        記錄Ito穩(wěn)態(tài)失活的刺激方案:維持電壓-90mV,給予300ms從-120mV至60mV階躍10mV的前刺激,然后測(cè)試電壓鉗制在60mV 300ms記錄Ito電流,并比較用藥后變化。

        記錄Ito失活后時(shí)間依賴(lài)性恢復(fù)的刺激程序:采用雙脈沖刺激,維持電壓-90mV,繼而先后給予兩個(gè)去極化到60mV持續(xù)200ms的去極化刺激P1、P2,其時(shí)間間隔Δt依次增大分別設(shè)為1,5,10,15,20,25,30,35,40,45,50,55,60,65,70,75,80,85,90(ms)。記錄P2對(duì)應(yīng)的峰電流I。以I/Imax對(duì)Δt做出穩(wěn)態(tài)失活后恢復(fù)曲線(xiàn)。

        2)內(nèi)向整流鉀電流 記錄Ik1時(shí),在細(xì)胞外液中加入CdCl20.1mmol/L以阻斷鈣電流。記錄Ik1的I-V曲線(xiàn)的刺激方案為Vh-80mV,Vt從-150mV開(kāi)始,以10mV階躍刺激至 10mV,鉗制時(shí)間400ms,采樣頻率2kHz。

        3)動(dòng)作電位 采用電流鉗方式。形成高阻封接并破膜后,給予5ms,以100pA階躍,自100pA階躍至3nA的電流刺激,頻率為20kHz,其后以2nA,5ms的電刺激觀測(cè)動(dòng)作電位電壓的變化。

        6.統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 本實(shí)驗(yàn)獲得的原始電流數(shù)據(jù)均采用PatchMaster及Igor軟件進(jìn)行分析和測(cè)量,使用GraphPad Prism 5對(duì)測(cè)量后的數(shù)據(jù)進(jìn)行擬合和作圖。采用SPSS 19.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理。計(jì)量數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,組間比較應(yīng)用非配對(duì)t檢驗(yàn)或方差分析。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        結(jié) 果

        1.動(dòng)物模型建立結(jié)果見(jiàn)表1。

        表1 動(dòng)物模型建立結(jié)

        2.術(shù)后第2天、第4天對(duì)照組移植心臟HE染色檢查,未發(fā)現(xiàn)明顯的炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),無(wú)心肌細(xì)胞壞死(圖5~8)。術(shù)后第2天,實(shí)驗(yàn)組移植心臟組織學(xué)檢查可見(jiàn)血管周?chē)烷g質(zhì)內(nèi)淋巴細(xì)胞漿細(xì)胞浸潤(rùn),排斥反應(yīng)半定量評(píng)分(1.75±0.5)分。術(shù)后第4天,實(shí)驗(yàn)組移植心臟組織學(xué)檢查可見(jiàn)廣泛的炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),并可見(jiàn)灶性及多灶性心肌細(xì)胞壞死,排斥反應(yīng)半定量評(píng)分(4.2±0.45)分(圖9~12)。

        圖5~6 對(duì)照組大鼠移植術(shù)后第2天移植心臟HE染色;圖7~8:對(duì)照組大鼠移植術(shù)后第4天移植心臟HE染色

        圖9~10 實(shí)驗(yàn)組術(shù)后第2天,移植心臟組織學(xué)檢查,可見(jiàn)血管周?chē)烷g質(zhì)內(nèi)淋巴細(xì)胞漿細(xì)胞浸潤(rùn);圖11~12:實(shí)驗(yàn)組術(shù) 后第4天,移植心臟組織學(xué)檢查,可見(jiàn)廣泛的炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),并可見(jiàn)灶性及多灶性心肌細(xì)胞壞死

        3.瞬時(shí)外向鉀電流 移植術(shù)后第2天,兩組心室肌細(xì)胞的Ito密度在-40~60mV測(cè)試電壓下差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;術(shù)后第4天,與對(duì)照組比較,在各測(cè)試電壓下實(shí)驗(yàn)組移植心臟心室肌細(xì)胞Ito密度均顯著下降(P<0.05,表2~3,圖13)。

        表2 術(shù)后第2天兩組Ito密度

        表3 術(shù)后第4天兩組Ito密度

        4.內(nèi)向整流鉀電流 移植術(shù)后第2天,兩組心室肌細(xì)胞的Ik1密度在-150~ 50mV測(cè)試電壓下差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,術(shù)后第4天,與同基因組比較,在-150~-60mV、60mV測(cè)試電壓下同種異基因組移植心臟心室肌細(xì)胞Ik1密度顯著下降(P<0.05,表4~5,圖14~15)。

        圖13 大鼠移植心臟心室肌細(xì)胞瞬時(shí)外向鉀電流的電流密度-電壓曲線(xiàn)圖 A:移植術(shù)后第2天;B:移植后第4天

        圖14 移植后第2天心室肌細(xì)胞IK-1電流電流密度-電壓曲線(xiàn)圖;圖15 移植后第4天心室肌細(xì)胞IK-1電流密度-電壓曲線(xiàn)圖

        APD/ms移植后第2天移植后第4天同基因組同種異基因組P值同基因組同種異基因組P值A(chǔ)PD5011.33±1.85721.46±2.5160.013616.00±2.68719.17±1.7770.3272APD9049.28±5.62188.08±6.4450.001659.34±5.183104.0±9.5230.0064

        表4 術(shù)后第2天兩組Ik1密度

        5.動(dòng)作電位 移植術(shù)后第2天,與對(duì)照組比較,實(shí)驗(yàn)組移植心臟心室肌細(xì)胞動(dòng)作電位時(shí)程顯著延長(zhǎng)[APD50分別為(11.33±1.857)vs. (21.46±2.516),P=0.0136;APD90分別為(49.28±5.621)vs. (88.08±6.445),P=0.0016]。移植術(shù)后第4天,實(shí)驗(yàn)組心臟心室肌細(xì)胞動(dòng)作電位時(shí)程顯著延長(zhǎng)[APD90分別為(59.34±5.183)vs. (104.0±9.523),P=0.0064](表6)。

        表5 術(shù)后第4天兩組Ik1密度

        討 論

        動(dòng)作電位是細(xì)胞處于興奮狀態(tài)的標(biāo)志,實(shí)驗(yàn)顯示心肌細(xì)胞動(dòng)作電位在同種異基因大鼠腹部心臟移植術(shù)后顯著延長(zhǎng),提示心肌細(xì)胞動(dòng)作電位的延長(zhǎng)可能是心肌細(xì)胞電生理改變的基本電生理機(jī)制。Ito是動(dòng)作電位發(fā)生時(shí)的第一個(gè)復(fù)極電流[15],在心肌細(xì)胞去極化時(shí)快速激活、失活,形成動(dòng)作電位快速?gòu)?fù)極1期和平臺(tái)2期起始部[16]。Ito具有電壓、時(shí)間及頻率依賴(lài)性,其大小決定了動(dòng)作電位1相的電位幅度,其活性還影響了電壓門(mén)控鈣通道的激活和平臺(tái)期內(nèi)向電流與外向電流的平衡,從而介導(dǎo)了復(fù)極2期的波幅及持續(xù)時(shí)間。在大鼠、犬及人類(lèi),Ito是控制心室肌細(xì)胞動(dòng)作電位時(shí)程的主要電流。在病理情況下,Ito大小、生理特性發(fā)生改變,導(dǎo)致心室肌Ito跨室壁的電壓梯度發(fā)生變化,導(dǎo)致了心肌復(fù)極化的改變,誘導(dǎo)心肌電重構(gòu),從而導(dǎo)致心臟電生理學(xué)特性的變化。目前已有研究證實(shí),在許多心血管疾病中表現(xiàn)出Ito電流和通道表達(dá)的改變。心肌缺血時(shí),由于缺血缺氧心肌局部代謝產(chǎn)物的堆積,正常的微環(huán)境發(fā)生變化,如 pH 值下降等。研究發(fā)現(xiàn)心室肌細(xì)胞膜上的Ito在缺血、缺氧、pH值改變時(shí)明顯地受到抑制,這可能是心肌梗死后Ito電流密度降低的誘因。體外試驗(yàn)亦證實(shí)缺氧環(huán)境、pH值的微小變化均會(huì)使心肌細(xì)胞的Ito明顯減低,進(jìn)而影響心肌 APD和心肌細(xì)胞內(nèi)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)。我們實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),與同基因大鼠移植心臟心室肌細(xì)胞相比,異基因大鼠心臟移植術(shù)后第4天,Ito密度顯著降低,與實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)的動(dòng)作電位時(shí)程延長(zhǎng)一致,因此推測(cè)在心臟移植術(shù)后急性排斥反應(yīng)時(shí),心室肌細(xì)胞動(dòng)作電位時(shí)程的延長(zhǎng)與Ito的降低有密切關(guān)系。有研究證實(shí),Ito通過(guò)影響ICa,L、ICa,NCX來(lái)調(diào)節(jié)心肌的興奮收縮偶聯(lián)[17-19]。因此,Ito在心臟移植排斥反應(yīng)時(shí)的變化最終導(dǎo)致了心臟收縮、舒張功能的受損。同時(shí)本實(shí)驗(yàn)還發(fā)現(xiàn)同種異基因組大鼠心室肌細(xì)胞內(nèi)向整流鉀電流(Ik1)在術(shù)后第4天顯著降低,Ik1是決定工作心肌細(xì)胞膜靜息電位的主要離子流,在動(dòng)作電位3相快速?gòu)?fù)極化過(guò)程中起著重要作用[20]。這種電流的特點(diǎn)是膜電位負(fù)于靜息電位時(shí),表現(xiàn)為鉀離子內(nèi)流,當(dāng)細(xì)胞膜輕度去極化時(shí)鉀離子外流,而進(jìn)一步去極化時(shí),鉀離子外流反而減少甚至消失,具有明顯的內(nèi)向整流性質(zhì),所以被命名為內(nèi)向整流鉀電流,其典型的I-V曲線(xiàn)成“N”形。Ik1的降低可導(dǎo)致細(xì)胞膜3相復(fù)極化速率減慢,使得動(dòng)作電位時(shí)程延長(zhǎng)。

        我們實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)在同種異基因組大鼠心臟移植術(shù)后第2天動(dòng)作電位幅度顯著延長(zhǎng),而Ito、Ik1變化均不明顯,這說(shuō)明可能還存在其他的因素影響動(dòng)作電位。為明確動(dòng)作電位在心臟移植排斥反應(yīng)時(shí)的變化,尚需進(jìn)一步的實(shí)驗(yàn)研究。深入了解心肌細(xì)胞電生理變化機(jī)制,可進(jìn)一步提高心臟移植急性排斥反應(yīng)的診斷和治療。

        本實(shí)驗(yàn)的局限在于我們僅研究了排斥反應(yīng)心臟移植物心室肌細(xì)胞的AP、Ito和Ik1,另外還有其他與一些離子通道影響動(dòng)作電位時(shí)程,如Ca2+電流,也會(huì)影響動(dòng)作電位時(shí)程,在心臟排斥反應(yīng)發(fā)生時(shí),Ca2+電流或其他離子電流是否影響動(dòng)作電位的時(shí)程和形態(tài),尚需進(jìn)一步的實(shí)驗(yàn)研究。

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