王苗苗,劉陽陽,聞曉波,冉旭華
(黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)動物科技學(xué)院,黑龍江 大慶 163319)
病原體侵入動物體內(nèi),在其復(fù)制感染過程中,動物機體中存在多種模式識別受體(pattern recognition receptors,PRRs),來特異識別病原微生物的保守度高的病原相關(guān)分子模式(pathogen-associated molecular patter,PAMPs),主要包括位于細胞表面的膜結(jié)合型Toll樣受體(Toll like receptors,TLRs)、位于細胞膜的C凝集素受體(C-Lectin receptors,CLRs)、位于細胞質(zhì)的維甲酸誘導(dǎo)基因I樣受體(retinoic acid-inducible gene I(RIG-I)-like receptors,RLRs)等[1-2],其中維甲酸誘導(dǎo)基因I樣受體是識別病毒dsRNA的細胞質(zhì)傳感器[3-4]。迄今為止,已經(jīng)確定了黑色素瘤分化相關(guān)基因5(melanoma differentiation associated gene5, MDA5)、維甲酸誘導(dǎo)基因蛋白Ⅰ(retinoic acid-inducible gene I,RIG-I)、遺傳學(xué)和生理實驗室蛋白2(laboratory of genetics and physiology 2,LGP2)3個RLRs成員[5]。MDA5和RIG-I具有相似的結(jié)構(gòu),含有兩個N末端caspase活化和募集結(jié)構(gòu)域(CARD),中間區(qū)段的DExD/H框RNA解旋酶結(jié)構(gòu)域和C末端調(diào)節(jié)域(CTD)[6]。RIG-I的CARD結(jié)構(gòu)域能夠與線粒體抗病毒信號轉(zhuǎn)接蛋白(mitoehondrial antiviral signaling protein,MAVS)相互作用以激活TRAF3、TBK1/IKK-i級聯(lián)反應(yīng),進而磷酸化活化干擾素調(diào)節(jié)因子3(Interferon regulatory Factor 3,IRF3)[7],誘導(dǎo)I型干擾素分泌,從而激活宿主先天性免疫應(yīng)答,對抗病毒感染。IRF3和IRF7是調(diào)節(jié)IFN和干擾素刺激基因轉(zhuǎn)錄的調(diào)節(jié)因子,在I型IFN的表達和分泌上均發(fā)揮重要調(diào)節(jié)作用。因此,機體被RV感染后,病毒主要被RLRs受體所識別從而引發(fā)宿主免疫應(yīng)答[8]。
輪狀病毒(Rotavirus,RV)為非囊膜結(jié)構(gòu)的正二十面體病毒,由包含11個節(jié)段的基因組的線性雙鏈RNA組成[9]。該病毒是引起5歲以下嬰幼兒嚴重腹瀉的主要病原體之一[10],發(fā)病率高達30%~50%[11],每年引起約21.5萬人死亡[12],目前尚無特效治療藥,疫苗是重要的預(yù)防方式之一。以改良的“琴納原理”研制的部分減毒RV單價或重配人用疫苗在臨床試驗中免疫效果卻不理想[13-14],推測可能與宿主先天性免疫應(yīng)答抑制有關(guān)。為監(jiān)測RV感染后宿主RLRs免疫通路激活情況,本研究以牛RV UK株為研究對象,建立Q-PCR方法檢測相關(guān)因子轉(zhuǎn)錄水平動態(tài)變化情況。本試驗建立的檢測方法具有操作簡便、成本較低、準確性高等優(yōu)點。通過探討UK株RV對RLRs信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路部分關(guān)鍵因子的影響,為從mRNA水平上研究其與宿主先天性免疫功能關(guān)系提供簡便方法,也為研究現(xiàn)有疫苗免疫效果不理想的原因奠定基礎(chǔ)。
1.1 病毒、細胞及試劑 牛RV UK株、人結(jié)腸腺癌細胞Caco-2由本實驗室保存;DMEM培養(yǎng)基購自Life公司;胎牛血清購自浙江天杭生物科技有限公司;EDTA-胰酶購于北京索來寶科技有限公司;TRIzol購自Invitrogen公司;反轉(zhuǎn)錄試劑盒購自ThermFisher Scientific公司;SYBR?Premix Ex TaqⅡ購自Takara公司。
1.2 引物設(shè)計 參考NCBI GenBank上收錄的牛RV UK株VP6、人IRF3、人IRF7、RIG-I、MDA5基因序列,運用DNASTAR和Oligo 7軟件設(shè)計特異性引物檢測各目的基因,引物由北京六合華大基因科技股份有限公司合成。引物序列如表1所示。
表1 目的基因?qū)崟r定量PCR引物Table 1The primer of real time PCR for target genes
1.3 RV UK株感染Caco- 2細胞 取500 μL實驗室保存的UK株RV病毒液(MOI=2),加入1 μL胰酶(2.5 μg/μL)37℃孵育30 min,活化病毒。然后接種到Caco-2(人結(jié)腸腺癌細胞)細胞中,37℃培養(yǎng)箱放置1 h,期間每隔20 min晃動培養(yǎng)瓶以利于病毒更好吸附于細胞上;棄去病毒液,用無血清DMEM培養(yǎng)基清洗2次以去除未吸附上的病毒;加入含有0.5 μg/mL胰蛋白酶的DMEM培養(yǎng)基,分別培養(yǎng)6、12、24 h后收集細胞。
1.4 RNA的提取 采用TRIzol法提取感染細胞中的總RNA,具體操作按照說明書進行。最終用30~50 μL無核酶水溶解總RNA,-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.5 反轉(zhuǎn)錄 取3 μL RNA,1 μL Random Hexamer Primer,8 μL無核酶水于PCR管中混勻,65℃孵育5 min,迅速置于冰上冷卻;再加入4 μL 5×buffer,2 μL dNTP(10 mmol/L),1 μL RevertAid RT,1μL RiboLock RNaseInhibitor,42℃2 h,70℃10 min,終止反應(yīng),得到cDNA。
1.6 實時定量PCR 以反轉(zhuǎn)錄的cDNA為模板,PCR擴增UK株VP6、人IRF3、IRF7、RIG-I、MDA5。優(yōu)化后反應(yīng)體系為20 μL:2×SYBR Premix Ex TaqⅡ10 μL,上下游引物各1 μL,cDNA 1 μL,無核酶水補足20 μL。以感染RU UK株后6 h樣品組為相對對照組,每組設(shè)置3個重復(fù)。優(yōu)化后擴增程序為:95℃3 min;95℃10 s,60℃30 s,40個循環(huán);65~95℃獲得溶解曲線。
1.7 數(shù)據(jù)分析 運用SPSS 18.0軟件,由2-△△Cq法計算,采用t檢驗法統(tǒng)計分析感染RV KU株的Caco-2細胞VP6、IRF3、IRF7、RIG-I、MDA5基因轉(zhuǎn)錄水平的變化。
2.1 RV感染后在細胞中復(fù)制能力檢測UK株RV感染Caco-2細胞后6 h、12 h、24 h,收集細胞,提取病毒總RNA,反轉(zhuǎn)錄得cDNA,采用特異性引物進行Q-PCR,檢測UK VP6基因轉(zhuǎn)錄水平變化,圖1為VP6基因?qū)崟r定量PCR擴增曲線和溫度溶解曲線圖,圖2為VP6基因轉(zhuǎn)錄水平隨時間變化情況。由所得數(shù)據(jù)分析可知,隨感染時間延長,VP6基因轉(zhuǎn)錄水平逐漸上升,表明UK株RV病毒在Caco-2細胞中不斷復(fù)制擴增。
圖1 VP6實時定量PCR擴增曲線及溫度溶解曲線Fig.1The Amplification and melt curve of VP6 of Real-time PCR
圖 2VP6平均相對含量變化Fig.2The average relative content of UK rotavirus VP6
2.2 RLRs免疫通路關(guān)鍵因子轉(zhuǎn)錄水平監(jiān)測UK株RV感染Caco-2細胞后6 h、12 h、24 h,收集細胞,提取RNA,反轉(zhuǎn)錄得cDNA,采用特異性引物進行Q-PCR,檢測RIG-I、MDA5、IRF3、IRF7基因轉(zhuǎn)錄水平變化,圖3為各基因?qū)崟r定量PCR擴增曲線及溶解曲線圖,圖4為各基因轉(zhuǎn)錄水平隨時間變化情況。由數(shù)據(jù)分析可知,在感染6~24 h后,IRF3和IRF7基因轉(zhuǎn)錄水平顯著上升;感染后6~12 h,RIG-I和MDA5基因轉(zhuǎn)錄水平明顯上升,12~24 h則變化不明顯。
輪狀病毒為人獸共患的病原體,會引起嬰幼兒和多種幼齡動物的腸道疾病,危害嚴重,但RV導(dǎo)致機體腹瀉的具體機制尚未清楚,因此開發(fā)切實有效的疫苗來預(yù)防此病是當(dāng)前首要任務(wù)。當(dāng)前世界上有Merck公司開發(fā)的五價人-牛重配疫苗RotaTeq?目前在非洲、中美洲和亞洲某些國家等地所進行的臨床試驗數(shù)據(jù)表明:在某些地區(qū)的疫苗效力尚不足50%[15-16],Rotarix?疫苗也有類似現(xiàn)象[17-18],且有研究表明,Rotarix?和RotaTeq?可能會增加嬰幼兒腸套疊的風(fēng)險[19],推測可能與宿主先天性免疫應(yīng)答反應(yīng)有關(guān)。盡管近些年對RV的研究在逐漸增多,但對于RV的發(fā)病機制及其在感染機體后機體產(chǎn)生的免疫應(yīng)答過程尚不清楚。
圖 3 IRF3、IRF7、RIG-I和MDA5 mRNA實時定量PCR擴增曲線和溶解曲線Fig.3 The Amplification and melt curve of IRF3,IRF7,RIG-I and MDA5 of Real-time PCR
圖 4 IRF3、IRF7、RIG-I和MDA5平均相對含量變化Fig.4 The average relative content of IRF3,IRF7,RIG-I and MDA5
本試驗以UK株RV為研究對象,選用易于其增殖復(fù)制的人結(jié)腸腺癌細胞,其感染人源細胞Caco-2后6~24 h復(fù)制不斷增加,表明其在宿主細胞內(nèi)復(fù)制能力未受到明顯抑制。Mario等[20]將RV野生型毒株UK、SA11-4F、SA11-30-19和NSP1基因缺陷型毒株brvA、SA11-5S、SA11-30-1A分別感染恒河猴腎細胞MA104,發(fā)現(xiàn)野生型和NSP1基因缺陷型在MA104細胞上復(fù)制能力相當(dāng);而感染猴肺細胞FRhL2和人結(jié)腸細胞Caco-2,發(fā)現(xiàn)野生型RV復(fù)制能力明顯比NSP1基因缺陷型強,表明這幾個毒株感染MA104細胞后可能未激活細胞的免疫應(yīng)答或較弱的免疫應(yīng)答,而感染FRhL2和Caco-2后則可能激活細胞較強的免疫反應(yīng),該發(fā)現(xiàn)為減毒RV活疫苗的研發(fā)提供思路。RLRs是宿主識別病毒雙鏈RNA的重要細胞質(zhì)模式識別受體,能夠最終促進I型IFN的分泌,激活宿主先天性免疫應(yīng)答,對抗病毒感染。有研究表明RV感染后對RLRs信號通路具有抑制作用[21]。本研究通過建立QPCR方法,監(jiān)測RLRs信號通路關(guān)鍵因子RIG-I、MDA5、IRF3和IRF7在RV感染后各基因轉(zhuǎn)錄水平變化,結(jié)果表明,UK株RV感染后早期(6~12 h)被細胞質(zhì)模式識別受體RLRs所識別,活化下游信號分子,激活宿主先天性免疫應(yīng)答,各關(guān)鍵因子表達量均上調(diào),之后在感染后12~24 h,MDA5及RIG-I轉(zhuǎn)錄水平?jīng)]有明顯變化,可能由于RV不斷復(fù)制產(chǎn)生的拮抗宿主免疫的蛋白發(fā)揮作用,逃避了RLRs的識別,抑制了宿主免疫應(yīng)答,模式識別受體轉(zhuǎn)錄水平變化不明顯。該方法可為RV感染宿主細胞后監(jiān)測RLRs信號通路激活情況、先天性免疫應(yīng)答情況提供數(shù)據(jù)支持。