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        壯醫(yī)藥線點灸聯(lián)合甲氨蝶呤對佐劑關節(jié)炎大鼠NF-κB/IκB信號通路的影響

        2018-10-23 12:20:52蔣耀平肖敬趙先鋒謝議鳳蒙繼勇劉江張國峰
        中醫(yī)藥學報 2018年5期
        關鍵詞:血清

        蔣耀平,肖敬,趙先鋒,謝議鳳,蒙繼勇,劉江,張國峰

        (柳州市中醫(yī)醫(yī)院,廣西 柳州 545001)

        類風濕性關節(jié)炎(Rheumatoid arthritis RA)是一種復雜的異質性疾病,有時被歸類為具有共同臨床表現(xiàn)的綜合征[1]。它是最常見的免疫相關性慢性炎癥自身免疫性疾病[2-3]。關節(jié)滑膜細胞在RA的病理生理過程中扮演著關鍵性的角色,滑膜細胞分泌的多種細胞因子參與RA的整個病理過程,其中腫瘤壞死因子α(TNF-α)、白細胞介素1(IL-1)與關節(jié)滑膜炎癥、軟骨和骨降解的發(fā)生發(fā)展關系密切,導致患者關節(jié)畸形和關節(jié)強直[4]。而NF-κB的過度活化能夠引起前炎性細胞因子(TNF-α、IL-1β等)的合成與釋放。大量的前炎性細胞因子又反過來進一步活化NF-κB/IκB信號通路,導致更多致炎因子的生成,這種正反饋放大作用形成“瀑布效應”,使得炎癥反應進一步加劇[5]。因此,NF-κB/IκB信號通路在類風濕性關節(jié)炎的發(fā)生發(fā)展中扮演著重要的角色。

        目前,對RA的治療常用藥物主要包括非甾體抗炎藥、慢作用抗風濕藥、糖皮質激素和生物制劑等,但均存在不同程度的不良反應[6]。壯醫(yī)藥線點灸療法是采用經(jīng)過多種壯藥制備液浸泡過的直徑約為0.7 mm的苧麻線,將一端在燈火上點燃,使之形成圓珠狀炭火,將此炭火迅速而敏捷地直接灼灸在人體穴位上,用以治療疾病的一種外治方法[7]。自上世紀八十年代開始,隨著壯醫(yī)藥線點灸療法的挖掘研究不斷深入,其在多種疾病中的應用得到肯定。在治療類風濕性關節(jié)炎方面亦有多項文獻報道療效確切,但對于其作用機制的研究甚少。在前期的研究中,我們發(fā)現(xiàn)壯醫(yī)藥線點灸聯(lián)合甲氨蝶呤治療佐劑關節(jié)炎大鼠效果顯著,并發(fā)現(xiàn)可能與調(diào)控關節(jié)滑膜細胞凋亡有關。在本項研究中,我們通過建立大鼠關節(jié)炎模型,以壯醫(yī)藥線點灸聯(lián)合甲氨蝶呤為干預條件,探討NF-κB/IκB信號通路在其中所扮演的角色,為壯醫(yī)藥線點灸臨床治療類風濕性關節(jié)炎提供更加全面的理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 實驗試劑

        實驗所用試劑有:兔抗鼠多克隆抗體P65、I-kBα、TNF-α、IL-1β、COX-2和β-actin購于Proteintech(美國),兔抗山羊IgG/辣根酶標記購自北京中杉金橋生物科技有限公司。TNF-α、IL-1 酶聯(lián)免疫試劑盒(ELISA)試劑盒購自北京四正柏生物科技有限公司。逆轉錄試劑盒購自南京諾唯贊生物科技有限公司,qPCR Mix購自成都福際生物科技有限公司。干預的藥物甲氨蝶呤片(上海信誼藥廠有限公司),壯醫(yī)藥線規(guī)格有2號、3號藥線。

        1.2 實驗動物及分組

        選擇清潔級6~8周齡健康成年SD大鼠,按隨機數(shù)表分為空白對照組(NC)、關節(jié)炎模型組(RA)、甲氨蝶呤治療組(MTX)、甲氨蝶呤聯(lián)合壯醫(yī)藥線點灸治療組(CT),每組10只且性別比例相同。除空白對照組外,其余3組于嚴格無菌條件下,向每只大鼠右后足跖皮內(nèi)注射弗氏完全佐劑(CFA)0.1 mL致炎,誘導關節(jié)炎發(fā)生。待繼發(fā)性關節(jié)炎出現(xiàn),標志佐劑關節(jié)炎大鼠模型造模成功。

        1.3 干預方法

        1.3.1 甲氨蝶呤

        RA造模2周后,MTX組灌胃給藥甲氨蝶呤(1 mg·kg-1·d-1),連續(xù)給藥36 d;CT組連續(xù)36 d灌胃給藥甲氨蝶呤(1 mg·kg-1·d-1),同時壯醫(yī)藥線點灸干預。

        1.3.2 壯醫(yī)藥線點灸

        操作手法:采用2號或3號藥線,將呈珠狀炭火的線頭對準應灸部位或經(jīng)穴快速點灸,如雀啄食,一觸即起,此為一壯,一般一穴灸1~3壯。10 d為一療程,休息3天開始第2療程,觀察治療3療程。取穴方法:整體取穴:根據(jù)壯醫(yī)整體治療原則,每次取腎俞、脾俞、下關元、足三里(雙)、食背(雙)、趾背(雙)、勞宮、涌泉。局部取穴:根據(jù)壯醫(yī)“寒手熱背腫在梅,各疾施灸不離鄉(xiāng)”的原則,受累關節(jié)取梅花穴。

        1.4 關節(jié)炎指數(shù)測定

        關節(jié)炎評分標準參照文獻[6]:腳爪正常,無紅腫癥狀,為0分;趾關節(jié)出現(xiàn)輕度紅腫,為1分;趾關節(jié)和足趾出現(xiàn)紅腫,為2分;整個腳爪出現(xiàn)紅腫,為3分;踝關節(jié)紅腫,嚴重變形,不能負重,為4分。每隔3 d對每個大鼠進行關節(jié)炎評分,并計算關節(jié)炎指數(shù)。

        1.5 取材

        干預結束后各實驗組大鼠腹腔注射10%水合氯醛麻醉,腹主動脈取血,3 000 r/min離心10 min分離血清,-80℃冰箱保存?zhèn)溆?。處死大鼠,迅速取炎癥關節(jié)滑膜組織100 mg,平均分為2份,分別用于qPCR檢測和Western blotting檢測。

        1.6 ELISA檢測

        各實驗組大鼠血清中TNF-α和IL-1β的含量測定嚴格按照ELISA試劑盒提供的說明書進行。

        1.7 組織RNA提取和qPCR檢測

        液氮研磨法將組織研磨充分,TRIzol法提取RNA,檢測RNA濃度后按照試劑盒說明書將RNA逆轉錄成cDNA。內(nèi)參選擇β-actin。目的基因和內(nèi)參引物序列由上海生工生物工程有限公司設計并合成,詳見表1。cDNA與qPCR Mix嚴格按照生產(chǎn)商提供的說明書混合后使用qPCR儀(杭州安杰思醫(yī)學科技有限公司)進行擴增。PCR產(chǎn)物完整性評估使用溶解曲線,mRNA水平評估使用擴增循環(huán)值(CT),2-ΔΔCT用于計算mRNA的相對表達水平。

        表1 qPCR引物序列

        1.8 蛋白質印跡法檢測蛋白表達

        液氮研磨組織,加入組織裂解液勻漿提取組織蛋白,BCA法測定蛋白濃度,上樣緩沖液處理后,10%SDS-PAGE電泳,每孔上樣30 μg,PVDF膜轉膜,5%脫脂奶粉封閉1 h,一抗(1∶ 500稀釋)4℃孵育過夜,充分洗膜后室溫孵育二抗,再次充分洗膜后ECL孵育,并曝光。使用Image J圖像分析軟件進行條帶灰度分析,以β-actin為內(nèi)參計算樣本蛋白相對表達量。

        1.9 數(shù)據(jù)分析

        實驗數(shù)據(jù)以均數(shù)±標準誤(Means±S.E.M)表示,使用IBM SPSS Statistics 20進行統(tǒng)計分析,組間比較使用t檢驗,P<0.05為顯著性差異。

        2 結果

        2.1 各組大鼠不同時間點關節(jié)炎指數(shù)評分比較

        各組大鼠每3天評估一次關節(jié)炎指數(shù),結果如圖1所示,與正常對照組相比,RA組關節(jié)炎指數(shù)隨時間顯著增加(P<0.05);與RA組相比,MTX組大鼠關節(jié)炎指數(shù)隨時間顯著降低(P<0.05);CT組與MTX組相比,大鼠關節(jié)炎指數(shù)亦顯著降低(P<0.05)。

        注:*P<0.05 VS NC; #P<0.05 VS RA;▲P<0.05 VS MTX圖1 各實驗組大鼠不同時間點關節(jié)炎指數(shù)評分

        2.2 各實驗組大鼠血清中TNF-α、IL-1β含量測定

        采用ELISA方法檢測各實驗組大鼠血清中TNF-α、IL-1β的含量,結果如圖2所示:與NC組相比,RA組大鼠血清中TNF-α和IL-1β的含量顯著增高(P<0.05);甲氨蝶呤和壯醫(yī)藥線點灸聯(lián)合甲氨蝶呤干預后,大鼠血清中TNF-α和IL-1β的含量顯著降低(P<0.05 VS RA),其中壯醫(yī)藥線點灸聯(lián)合甲氨蝶呤干預降低更顯著(P<0.05 VS MTX)。提示甲氨蝶呤和壯醫(yī)藥線點灸聯(lián)合甲氨蝶呤干預能夠顯著抑制佐劑關節(jié)炎大鼠炎癥因子釋放。

        2.3 各實驗組大鼠關節(jié)滑膜組織中P65、I-kBα、TNF-α、IL-1β和COX-2基因表達情況

        使用qPCR方法檢測大鼠關節(jié)滑膜組織中P65、I-kBα、TNF-α、IL-1β和COX-2的mRNA的表達情況。各基因溶解曲線如圖3所示,可見引物特異性良好。由圖4和5可知,與NC相比,RA組大鼠關節(jié)滑膜組織中P65、TNF-α、IL-1β和COX-2 mRNA轉錄水平均顯著升高(P<0.05),I-kBα mRNA轉錄水平顯著降低(P<0.05);甲氨蝶呤和壯醫(yī)藥線點灸聯(lián)合甲氨蝶呤干預后P65、TNF-α、IL-1β和COX-2 mRNA轉錄水平均顯著降低(P<0.05 VS RA),其中CT組降低更為顯著(P<0.05 VS MTX),I-kBα mRNA轉錄水平均顯著升高(P<0.05 VS RA),其中CT組升高更為明顯(P<0.05 VS MTX)。提示壯醫(yī)藥線點灸聯(lián)合甲氨蝶呤干預具有顯著協(xié)同作用。

        2.4 各實驗組大鼠關節(jié)滑膜組織中P65、I-kBα、TNF-α、IL-1β和COX-2蛋白表達情況

        Western blotting法檢測大鼠關節(jié)滑膜組織中P65、I-kBα、TNF-α、IL-1β和COX-2的蛋白表達情況。結果如圖6所示:與NC相比,RA組大鼠關節(jié)滑膜組織中P65、TNF-α、IL-1β和COX-2 mRNA蛋白表達水平均顯著上調(diào)(P<0.05),I-kBα顯著下調(diào)(P<0.05);甲氨蝶呤和壯醫(yī)藥線點灸聯(lián)合甲氨蝶呤干預后P65、TNF-α、IL-1β和COX-2 mRNA蛋白表達水平均顯著下調(diào)(P<0.05 VS RA),其中CT組下調(diào)更為顯著(P<0.05 VS MTX),I-kBα蛋白表達水平均顯著上調(diào)(P<0.05 VS RA),其中CT組上調(diào)更為明顯(P<0.05 VS MTX)。提示壯醫(yī)藥線點灸聯(lián)合甲氨蝶呤干預具有顯著協(xié)同作用。

        注:*P<0.05 VS NC;▲P<0.05 VS RA;#P<0.05 VS MTX圖2 各實驗組大鼠血清中TNF-α、IL-1β的含量變化

        圖3 各基因溶解曲線

        圖4 各實驗組各基因擴增曲線

        注:*P<0.05 VS NC;▲P<0.05 VS RA;#P<0.05 VS MTX圖5 各實驗組P65、I-kBα、TNF-α、IL-1β和COX-2 mRNA相對表達水平

        注:*P<0.05 VS NC;▲P<0.05 VS RA;#P<0.05 VS MTX圖6 各實驗組P65、I-kBα、TNF-α、IL-1β和COX-2蛋白表達水平

        3 討論

        根據(jù)《全球疾病負擔》2010年的研究報告,因RA喪失勞動能力的人口從1990年的2 566 000人增加到了2010年的3 776 000人[8]。隨著全世界人口老齡化和死亡率下降,未來幾十年內(nèi),RA患者的數(shù)量將大幅度增加。臨床迫切需要更加有效的治療方法。

        目前對于RA的發(fā)病機制尚不完全清楚,遺傳、環(huán)境、感染等被認為是密切相關的致病因素。臨床常采用藥物干預控制RA癥狀,但很難根除。甲氨蝶呤是最近幾年來得到國際公認的、有效治療類風濕性關節(jié)炎的慢性藥,是治療類風濕性關節(jié)炎首選藥物[9]。作為一種葉酸還原酶抑制劑,除了能夠抑制細胞DNA合成,發(fā)揮抗腫瘤作用外,其還能夠發(fā)揮免疫和抗炎的作用[10]。甲氨蝶呤的不良反應主要有惡心、嘔吐、腹瀉、口腔糜爛、厭食等胃腸道癥狀,以及脫發(fā)、肺炎、轉氨酶升高、肝纖維化及血液學異常等,但大部分不良反應都較短暫而且較輕[11]。研究報道顯示,相比于單用甲氨蝶呤治療,甲氨蝶呤與其他藥物聯(lián)合治療RA療效更優(yōu),不良反應無明顯增加甚至減少[12-13]。在前期研究中,我們發(fā)現(xiàn)壯醫(yī)藥線點灸聯(lián)合甲氨蝶呤治療佐劑關節(jié)炎大鼠效果優(yōu)于兩者單獨使用,且與促進細胞凋亡有很大的內(nèi)在聯(lián)系,但對于其具體的作用機制仍不是很清楚。

        關節(jié)滑膜炎性細胞浸潤是類風濕關節(jié)炎的主要特征之一。浸潤細胞包括巨噬細胞、T細胞、B細胞、樹突狀細胞和中性粒細胞[14]。這些細胞分泌促炎因子和基質金屬蛋白酶(MMPs),造成炎癥入侵,導致關節(jié)軟骨等破壞[15]。關節(jié)滑膜周圍的巨噬細胞由血液中的單核細胞轉變,其過程受趨化因子的影響。一旦巨噬細胞被激活,分泌大量的炎性介質(包括IL-1α,IL-1β,IL-6,IL-10,IL-15,IL-17,TNF-α和粒細胞巨噬細胞集落刺激因子)、促炎因子、生長因子、趨化因子和基質金屬蛋白酶[16]。所有這些因素均可引起炎癥,并在滑膜和關節(jié)損傷中起主要作用[17]。在本項研究中,我們建立佐劑關節(jié)炎大鼠模型,ELISA法檢測關節(jié)炎大鼠血清中TNF-α和IL-1β的含量,發(fā)現(xiàn)相比于正常大鼠,關節(jié)炎大鼠血清中TNF-α和IL-1β的含量顯著增大,提示TNF-α和IL-1β與類風濕性關節(jié)炎的發(fā)生發(fā)展有著密切聯(lián)系。而壯醫(yī)藥線點灸聯(lián)合甲氨蝶呤進行干預治療后,關節(jié)炎模型大鼠血清中TNF-α和IL-1β的含量顯著降低,提示壯醫(yī)藥線點灸聯(lián)合甲氨蝶呤能夠抑制炎癥因子的釋放。在前期的研究中,觀察的30例壯醫(yī)藥線點灸治療類風濕性關節(jié)炎臨床患者,發(fā)現(xiàn)壯醫(yī)藥線點灸能夠顯著降低患者血清中TNF-α和IL-1β的水平[18],與本實驗研究結果一致。

        在哺乳動物細胞中,NF-κB是調(diào)控炎癥的主控器,包括 NF-κB1 (p50/p105), NF-κB2 (p52/p100), RelA (p65),c-Rel和RelB,調(diào)節(jié)著免疫、炎癥反應、細胞增殖和細胞凋亡[19-20]。NF-κB在多種自身免疫性疾病中被活化,包括RA[21]。在RA中,活化的NF-κB信號通路增強TNF-a、IL-Iβ、環(huán)氧化酶2(COX2)等基因的轉錄水平,同時增強的炎癥細胞因子表達又能夠促使NF-κB信號通路進一步活化[22]。本研究中關節(jié)炎模型大鼠關節(jié)滑膜組織中NF-κB p65表達顯著增加,IκB-α顯著下調(diào),與他人研究結果一致[23-24]。予以壯醫(yī)藥線點灸聯(lián)合甲氨蝶呤干預后,NF-κB p65及下游TNF-α、IL-Iβ和COX2表達顯著下降,IκB-α明顯增加。提示壯醫(yī)藥線點灸聯(lián)合甲氨蝶呤干預治療類風濕性關節(jié)炎的作用機制可能是通過抑制NF-κB的活化,進而抑制TNF-α、IL-Iβ等炎性因子的釋放和環(huán)氧化酶2(COX2)的表達,從而達到改善RA癥狀,達到治療目的的。

        綜上,本項研究通過建立佐劑大鼠關節(jié)炎模型,并予以壯醫(yī)藥線點灸聯(lián)合甲氨蝶呤干預,結果顯示其能夠顯著改善大鼠關節(jié)炎癥狀,且其作用機制可能是通過調(diào)控NF-κB/IκB信號通路,從而抑制炎癥因子釋放和環(huán)氧化酶的表達來實現(xiàn)的。壯醫(yī)藥線點灸聯(lián)合甲氨蝶呤治療RA效果明確,優(yōu)于各自單獨使用,且本項研究建立了較為完善的理論依據(jù),進一步的研究重點將集中在臨床治療實踐方面,為臨床普及進一步完善相關數(shù)據(jù)。

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