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        酶法制備玉米芯阿魏酰低聚糖的工藝條件優(yōu)化

        2018-10-13 08:38:30孫元琳白宇仁王曉聞周素梅
        食品研究與開發(fā) 2018年20期

        孫元琳,白宇仁,王曉聞,周素梅

        (1.運城學(xué)院生命科學(xué)系,山西運城044000;2.山西農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,山西太谷030801;3.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品加工研究所,北京100193)

        玉米芯是玉米加工產(chǎn)業(yè)的重要副產(chǎn)物之一。玉米芯作為一種農(nóng)業(yè)廢棄物,曾經(jīng)絕大多被燒掉或簡單處理當(dāng)做動物飼料食用,造成很大程度的資源浪費[1]。玉米芯不溶性膳食纖維含量較高,主要為阿拉伯木聚糖[2]。此外,玉米芯中還含有豐富的酚酸類物質(zhì)。Torre P等[3]研究表明,玉米芯中含有的酚酸物質(zhì)主要是阿魏酸和對香豆酸。玉米芯中的阿魏酸含量(1.4%)高于麥麩(0.4%~0.7%)、蔗渣(1%)、小麥秸稈(1.2%)等,是大多數(shù)農(nóng)業(yè)副產(chǎn)品中最有潛力的阿魏酸資源[4]。

        阿魏酰低聚糖(feruloylated oligosaccharides,F(xiàn)Os)又稱為阿魏酸糖酯,低聚糖阿魏酸酯,由結(jié)合態(tài)阿魏酸與糖羥基通過酯鍵連接而成,具有抗氧化、抗衰老、促進(jìn)益生菌增殖、增強(qiáng)機(jī)體免疫功能等生理活性[5]。目前,通過對禾本科植物不溶性膳食纖維進(jìn)行可控性酶解,可以獲得阿魏酰低聚糖。Smith M M等[6]最早采用纖維素酶處理小麥麥麩得到阿魏酰低聚糖。胡楠楠等[7]采用木聚糖酶水解米糠制備出阿魏酰低聚糖。而關(guān)于從玉米芯中制備阿魏酰低聚糖卻鮮有報道。本試驗旨在通過生物酶法制備玉米芯阿魏酰低聚糖,并結(jié)合響應(yīng)面分析探討其最佳工藝條件,為玉米資源的綜合利用和有效增值提供科學(xué)依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 試驗材料與儀器

        玉米芯:市售;木聚糖酶(2.5 U/mg):諾維信(中國)生物技術(shù)有限公司;木糖標(biāo)準(zhǔn)品(xylose,Xyl):美國Sigma公司;低聚木糖標(biāo)準(zhǔn)品(xylooligosaccharide,XOS):山東龍力生物科技股份有限公司;耐高溫α-淀粉酶(酶活≥4 U/mg)、中性蛋白酶(酶活≥60 U/mg)、糖化酶(酶活≥100 U/mg):北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司;3-(N-瑪琳代)丙磺酸[3-(N-Malin substituted)propane sulfonic acid,MOPS]、二苯胺、冰乙酸、乙酸乙酯、丙酮、氨水均為分析純。

        RE-52A型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器:上海亞榮生化儀器廠;Cary5000紫外-可見-近紅外分光光度計:美國安捷倫(Agilent)公司;THZ-82型水浴恒溫振蕩器:江蘇榮華儀器制造有限公司。

        1.2 試驗方法

        1.2.1 玉米芯阿魏酰低聚糖酶法制備工藝流程

        玉米芯→粉碎過篩→高壓蒸汽處理(121℃,45min)→依次加入耐高溫α-淀粉酶,糖化酶和蛋白酶(調(diào)節(jié)相應(yīng)的pH值和溫度)酶水解→攪拌→高溫滅酶(100℃,10 min)→離心(3 000 r/min,15 min)→取沉淀物→蒸餾水洗滌→無水乙醇洗滌→真空干燥(45℃)→玉米芯不溶性膳食纖維。

        玉米芯不溶性膳食纖維→加入醋酸-醋酸鈉緩沖溶液和木聚糖酶→酶解→滅酶(100℃,10 min)→離心(3 000 r/min,15 min)→取上清液→抽濾→濃縮→阿魏酰低聚糖酶解液。

        1.2.2 酶解液FOs含量測定

        取酶解液0.5mL,與4.5mLMOPS緩沖液(100mmol/L,pH6.0)充分混合,分別在286 nm和325 nm波長處測定酶解液的吸光度值(A286和A325),按下式計算酶解液中阿魏酰低聚糖含量[8]。

        式中:ε286=141 76 L/(mol·cm),ε325=103 50 L/(mol·cm),ε′286=124 65L/(mol·cm),ε′325=19345L/(mol·cm)。

        1.2.3 薄層層析

        精確吸取6 μL標(biāo)準(zhǔn)樣液(1%木糖、1%低聚木糖)和酶解液點于GF254硅膠板上,放入層析缸中進(jìn)行展開,展開劑為乙酸乙酯∶甲醇∶蒸餾水∶氨水=5∶9∶1∶1.5(體積比)。展開結(jié)束后,用噴霧器朝薄層板上均勻噴灑苯胺-二苯胺-磷酸-丙酮試劑,105℃條件下顯色10 min[9]。通過觀察標(biāo)準(zhǔn)品與酶解液的斑點顏色和位置,對酶解液中低聚糖聚合度進(jìn)行分析。

        1.2.4 單因素試驗與響應(yīng)面優(yōu)化試驗

        設(shè)定底物濃度50 g/L、酶解時間18 h、pH5.0、酶解溫度 50℃,加酶量分別控制為 21.4、42.8、64.2、85.6、107、128.4 mg/L;設(shè)定木聚糖酶添加量 85.6 mg/L、pH5.0、酶解溫度50℃、底物濃度50 g/L,酶解時間分別控制為 6、9、12、15、18、21 h;設(shè)定木聚糖酶添加量85.6 mg/L、pH5.0、酶解溫度 50℃、酶解時間 18 h,底物濃度分別控制為 30、50、70、90、110、130 g/L;設(shè)定木聚糖酶添加量85.6 mg/L、底物濃度50 g/L、pH5.0、酶解時間 18 h,酶解溫度分別控制為 35、40、45、50、55、60 ℃;設(shè)定木聚糖酶添加量85.6 mg/L、底物濃度50 g/L、酶解時間18 h、酶解溫度50℃,pH值分別控制為3、3.5、4、4.5、5、5.5。

        根據(jù)單因素試驗結(jié)果,以加酶量、酶解時間、底物濃度、酶解溫度、pH值為試驗因素,并以-1、0、1為自變量的低、中、高水平,以FOs含量為響應(yīng)值,設(shè)計五因素三水平試驗。因素與水平設(shè)計如表1所示。

        1.3 數(shù)據(jù)分析方法

        各指標(biāo)均做3次重復(fù),運用Excel軟件對試驗數(shù)據(jù)進(jìn)行處理,采用SigmaPlot10.0軟件進(jìn)行繪圖,響應(yīng)面分析由Design Expert 8.0.6軟件完成。

        表1 響應(yīng)面分析因素及水平Table 1 Factor and level used in response surface methodology

        2 結(jié)果與分析

        2.1 單因素試驗

        2.1.1 木聚糖酶添加量對FOs含量的影響

        木聚糖酶添加量對FOs含量的影響見圖1、圖2。

        圖1 木聚糖酶添加量對FOs含量的影響Fig.1 Effects of xylanse amount on the production of FOs

        圖2 不同木聚糖酶添加量酶解液的薄層層析圖Fig.2 TLC of enzymatic hydrolysate of different xylanase amount

        從圖1可以看出,隨著反應(yīng)體系中木聚糖酶添加量的增大,F(xiàn)Os的含量呈現(xiàn)上升趨勢,當(dāng)酶量達(dá)到85.6 mg/L,F(xiàn)Os的含量增長緩慢。原因在于,當(dāng)?shù)孜餄舛炔蛔兊那闆r下,F(xiàn)Os的含量會隨著木聚糖酶添加量的增加而增加,但是,較高的酶添加量會造成酶的浪費損失和反應(yīng)過度導(dǎo)致阿魏酰低聚糖的分解。當(dāng)酶添加量達(dá)到一定程度后,阿魏酰低聚糖的溶出達(dá)到平衡狀態(tài),再增加酶量,底物已經(jīng)充分反應(yīng)而不利于阿魏酰低聚糖的溶出。結(jié)合薄層層析圖來看,隨著酶量的增加,薄板的顏色逐漸加深,說明酶解液中FOs含量逐漸升高。加酶量85.6 mg/L時薄板上出現(xiàn)了明顯的木糖組分但顏色較淺。加酶量107 mg/L、128.4 mg/L木糖組分顏色較深,說明其中木糖含量高、酶解過度。結(jié)合FOs含量變化和酶解液中低聚糖聚合度,同時考慮節(jié)約成本,選取的加酶量進(jìn)一步優(yōu)化的范圍為64.2 mg/L~107 mg/L。

        2.1.2 底物濃度對FOs含量的影響

        底物濃度對FOs含量的影響見圖3。

        圖3 底物濃度對FOs含量的影響Fig.3 Effects of substrate concentration on the production of FOs

        從圖3可以看出,隨著反應(yīng)體系中底物濃度的增加,F(xiàn)Os的含量呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢。原因在于,隨著底物濃度的升高,底物中可被利用的阿拉伯木聚糖含量升高,酶與底物可以充分接觸反應(yīng),使反應(yīng)體系中FOs大量溶出;但當(dāng)?shù)孜锾砑恿砍^一定限度時,反應(yīng)體系會變得非常黏稠,酶與底物結(jié)合受限甚至底物會抑制酶的部分活性,底物中阿拉伯木聚糖不能充分水解,故FOs的含量降低[10]。由此初步確定酶法制備FOs的優(yōu)化范圍為90 g/L~130 g/L。

        2.1.3 酶解時間對FOs含量的影響

        酶解時間對FOs含量的影響見圖4。

        圖4 酶解時間對FOs含量的影響Fig.4 Effects of time on the production of FOs

        由圖4可知,隨著酶解時間的進(jìn)行,F(xiàn)Os含量呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢。原因在于,酶與底物充分反應(yīng)需要一定的時間,達(dá)到最適時間時,F(xiàn)Os含量達(dá)到最高值0.252 5 mmol/L。超過最適時間后,F(xiàn)Os會進(jìn)一步分解產(chǎn)生木糖,導(dǎo)致FOs含量下降。故確定酶法制備FOs的進(jìn)一步優(yōu)化范圍為12 h~18 h。

        2.1.4 pH值對FOs含量的影響

        pH值對FOs含量的影響見圖5。

        每種酶都有其最適宜的pH值,在最佳pH值條件下,酶與底物可以充分反應(yīng)結(jié)合,此時酶活力最高[11]。在非最佳pH值條件下,酶活性會降低甚至失活,相應(yīng)的FOs含量也會降低。如圖5所示,在pH3.5條件下,F(xiàn)Os含量最高,說明木聚糖酶在pH3.5時活力最強(qiáng),條件最適宜。由此,確定進(jìn)一步優(yōu)化的范圍為pH3~4。

        2.1.5 酶解溫度對FOs含量的影響

        酶解溫度對FOs含量的影響見圖6。

        圖6 酶解溫度對FOs含量的影響Fig.6 Effects of temperature on the production of FOs

        從圖6可以看出,當(dāng)酶解溫度小于55℃時,隨著溫度的升高,F(xiàn)Os的含量上升,55℃以后,隨著溫度的上升,F(xiàn)Os的含量降低。原因在于溫度升高,分子熱運動速度會加快,滲透、溶解、擴(kuò)散速度相應(yīng)提高,酶與底物可以充分接觸,故FOs含量升高[12]。但在酶解反應(yīng)過程中,酶存在最適溫度,當(dāng)超過其最適溫度時,酶活性會降低甚至喪失,使FOs的含量降低。由此,確定進(jìn)一步優(yōu)化的溫度范圍為50℃~60℃。

        2.2 響應(yīng)面試驗分析

        在上述單因素試驗的基礎(chǔ)上,利用Box-Behnken程序分別考察影響玉米芯阿魏酰低聚糖酶解工藝的5個主要因素,即加酶量(A)、酶解時間(B)、底物濃度(C)、pH值(D)、酶解溫度(E),設(shè)計五因素三水平響應(yīng)面優(yōu)化試驗。以阿魏酰低聚糖含量為響應(yīng)值,利用Design-Expert8.0.6軟件進(jìn)行優(yōu)化分析,試實驗設(shè)計與結(jié)果見表2,方差分析見表3,各響應(yīng)面結(jié)果見圖7(不顯著圖略)。

        表2 響應(yīng)面分析試驗設(shè)計與結(jié)果Table 2 Design and results of response surface experiments

        續(xù)表2 響應(yīng)面分析試驗設(shè)計與結(jié)果Continue table 2 Design and results of response surface experiments

        表3 方差分析結(jié)果Table 3 The results of variance analysis

        對表2試驗結(jié)果進(jìn)行多元回歸擬合,得到A(木聚糖酶添加量)、B(酶解時間)、C(底物濃度)、D(pH)、E(酶解溫度)多項回歸方程為

        圖7 以阿魏酰低聚糖含量為指標(biāo)的響應(yīng)面圖Fig.7 Response surface plots on the production of FOs

        由表3可知回歸模型極顯著(P<0.000 1),而模型失擬項不顯著(P>0.05),表明模型選擇合適。同時,該回歸模型系數(shù)R2和調(diào)整R2分別是0.990 8和0.983 5,說明該模型的擬合程度較好,因此利用該模型預(yù)測玉米芯阿魏酰低聚糖酶解工藝是切實可行的。由顯著性和F值可知,玉米芯阿魏酰低聚糖酶解工藝的影響因素主次順序為酶解溫度>酶解時間>pH值>加酶量>底物濃度。

        響應(yīng)面曲線梯度反映各因素對阿魏酰低聚糖含量的影響大小,曲線越陡表明該因素對阿魏酰低聚糖含量影響越大。由圖7可知,加酶量和底物濃度、加酶量和pH值、pH值和酶解溫度之間都存在顯著的交互作用(P<0.05)。其中,pH值和酶解溫度交互最為顯著,隨著這兩個因素的增大FOs含量有明顯的增加。這與表3回歸分析結(jié)果相符。

        運用響應(yīng)面Design Expert 8.0.6軟件,結(jié)合回歸模型和響應(yīng)面圖分析得到玉米芯阿魏酰低聚糖最佳酶解工藝條件為:加酶量89.64 mg/L、酶解時間16.41 h、底物濃度111.40 g/L、pH3.65、酶解溫度53.09℃,預(yù)測玉米芯阿魏酰低聚糖的含量為0.771 54 mmol/L。根據(jù)實際情況調(diào)整為加酶量89.7 mg/L、酶解時間16 h、底物濃度111 g/L、pH3.65、酶解溫度53℃,得到玉米芯阿魏酰低聚糖的含量為0.764 8 mmol/L,與預(yù)測值的相對誤差為0.87%,表明在該試驗?zāi)P拖碌玫降淖罴压に嚄l件具有較高的可靠性。

        3 結(jié)論

        通過單因素試驗和響應(yīng)面優(yōu)化試驗,得到酶法制備玉米芯阿魏酰低聚糖的最佳工藝條件為:加酶量89.7 mg/L、酶解時間 16 h、底物濃度 111 g/L、pH3.65、酶解溫度53℃。在此優(yōu)化條件下FOs的含量可達(dá)到0.764 8 mmol/L。

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