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        乳與乳制品中雌激素含量測定方法

        2018-08-31 01:38:00張建榮通標標準技術(shù)服務(wù)上海有限公司
        上海計量測試 2018年4期

        張建榮 / 通標標準技術(shù)服務(wù)上海有限公司

        0 引言

        日常生活中,人們所食用的動物性食品,包括動物肌肉(豬、牛、雞肉)、動物肝臟、脂肪、雞蛋等,當然也包括牛奶和各種奶制品(奶粉、奶酪、奶油等),都是含有微量激素的食品。這些食品中所含雌激素主要是內(nèi)源性雌激素,主要包括雌酮、β-雌二醇、雌三醇,其中β-雌二醇的活性最強,對其檢測具有一定的代表性;另外還可能有人為添加的,屬于人工合成的外源性雌激素,最具代表性的是二苯乙烯類合成雌激素,主要有己烯雌酚,己二烯雌酚,己烷雌酚等,它們可以進入動物體內(nèi),通過干擾動物體內(nèi)源性雌激素的合成、分泌、轉(zhuǎn)運、結(jié)合、活性反應(yīng)、代謝、消解或產(chǎn)生類似生物體內(nèi)源性雌激素的作用[1]。

        由于有人將雌激素用于養(yǎng)殖業(yè)以促進動物生長,如果人們長期食用這種激素含量較高的動物產(chǎn)品,會導(dǎo)致產(chǎn)生諸如兒童性早熟、成年人癌癥等負面影響,因此應(yīng)嚴格控制食品中雌激素的含量[2]。

        而己烷雌酚、己烯雌酚、雙烯雌酚都屬于人工合成的雌性激素,是1,2-二苯乙烯類化合物,具有促進動物生長的特性。它能促進動物體內(nèi)蛋白質(zhì)的合成代謝,提高動物日增重量,提高飼料效率。因此,其一直作為生長促進劑用在豬、羊、牛、雞等畜禽的飼養(yǎng)過程中。但現(xiàn)已證實這些人工合成的雌性激素可在動物的肝臟、肌肉中殘留,從而能誘發(fā)動物和人的白血病、子宮癌等疾病[3]。因此,早在1988年1月1日歐盟就發(fā)出了禁止使用促生長人工合成激素,并對其按殘留指令(86/469/EEC)實行監(jiān)控。人工合成激素在歐、美等國家已被禁用。我國農(nóng)業(yè)部也于1988年6月30日發(fā)布了《獸藥管理條例實施細則》,并于1998年進行了修訂。然而,由于后來發(fā)現(xiàn)的多種可促進動物生長的代用物的效力都遠不如己烯雌酚,以致使己烷雌酚、己烯雌酚、雙烯雌酚特別是己烯雌酚等人工合成的雌性激素在動物生產(chǎn)過程中的使用禁而不止。因此建立準確可靠的動物源性食品中雌激素殘留檢測方法至關(guān)重要[4]。

        目前動物源食品中雌激素殘留的檢測,最廣泛使用的是氣相色譜法、液相色譜法、氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法、免疫分析法、生物傳感器法等[2]。由于動物性食品中雌激素殘留物水平很低,樣品基質(zhì)復(fù)雜,干擾物質(zhì)多,所以對于殘留分析技術(shù)的要求甚高。通過文獻查找發(fā)現(xiàn)液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用技術(shù)對復(fù)雜基體中微量待測物的測定比較有效。質(zhì)譜分析的基本原理是使所研究的混合物或單體形成離子,然后使形成的離子按質(zhì)量,確切地講按質(zhì)荷比M/Z進行分離。質(zhì)譜檢測器可以檢測多種樣品,且具有高靈敏度,可以獲得不同于常規(guī)HPLC檢測器的大量而豐富的結(jié)構(gòu)信息。然而,盡管質(zhì)譜常??梢缘玫交衔锓肿与x子及碎片的信息,但混合物的質(zhì)譜解析往往難以實現(xiàn)。液相色譜與質(zhì)譜聯(lián)用,可以首先將混合物分離為單一組分,之后再用質(zhì)譜檢測器進行檢測。如此過程不僅可以得到更有意義的質(zhì)譜數(shù)據(jù),而且可以在一定程度上排除基質(zhì)干擾,克服離子抑制現(xiàn)象,優(yōu)化質(zhì)譜檢測信號[5]。

        因此,本文將采用液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用的方法來測定激素殘留量,這種試驗方法準確度高,重現(xiàn)性好,操作快速簡便,一般可以滿足動物源食品中測定激素殘留量的需要。

        1 材料與方法

        1.1 主要儀器

        1.1.1 串聯(lián)四級桿液質(zhì)聯(lián)用儀:ABI API4000(配備ESI源)、Agilent 1200液相色譜系統(tǒng):液相系統(tǒng)包括自動進樣器和四元梯度泵。軟件使用Analyst 1.4.1版。

        1.2 試劑

        1.2.1 溶液

        1)0.2 mol/L醋酸銨緩沖液(pH 5.2±0.2):15.4 g 醋酸銨溶解于900 mL水中,用冰醋酸調(diào)節(jié)pH,使其至pH 5.2 ±0.2 ,用水定容至1 L,有效期為3個月。

        2)β-葡糖醛酸糖醛酸酶/芳香基硫酸酯酶(β-glucuronidase/arylsulfatase):4.5 U/mL β- 葡 糖 醛酸糖醛酸酶,14 U/mL芳香基硫酸酯酶[5]。

        3)洗脫液: 取70 mL二氯甲烷加30 mL甲醇,混勻。

        4)定容液:乙腈∶水(1∶1),溶解混勻。

        5)己烷雌酚、己烯雌酚、雙烯雌酚、雌二醇和雌酮單標標準儲備液(1.0 mg/mL):分別準確稱取10.0 mg標準品于10 mL容量瓶中,用甲醇溶解并定容,配成1.0 mg/mL的標準儲備液。根據(jù)需要再用甲醇將標準儲備液稀釋成適當濃度的標準工作溶液[5]。

        6)己烯雌酚-d8、雌二醇-13C2單標內(nèi)標儲備液(1.0 mg/mL):準確稱取10.0 mg同位素標準品于10 mL容量瓶中,用甲醇溶解并定容,配成1.0 mg/mL的標準儲備液。根據(jù)需要再用甲醇將標準儲備液稀釋成適當濃度的標準工作溶液。

        7)己烷雌酚、己烯雌酚、雙烯雌酚、雌二醇和雌酮單標標準工作液(1.0 μg/mL):分別取1.0 mg/mL的單標標準儲備液10 μL,稀釋定容至10 mL,于-4 ℃下低溫保存[5]。

        8)己烯雌酚-d8、雌二醇-13C2單標內(nèi)標工作液(1.0 μg/mL):取1.0 mg/mL的單標內(nèi)標標準儲備液10 μL,稀釋定容至10 mL,于-4 ℃下低溫保存[5]。

        1.3 實驗方法

        1.3.1 稱樣酶解

        各稱取5 g樣品(準確至0.01 g)于50 mL 具蓋離心管中,加入10 mL醋酸銨緩沖溶液(pH 5.2,0.02 moL/L),再加入25 μL酶液,漩渦混勻,于37 ℃恒溫水溫箱過夜,振蕩酶解12 h。

        1.3.2 提取

        將上述樣品取出放置至室溫后,分別加入20 μL內(nèi)標工作溶液,再加入30 mL乙腈提取液,振蕩提取5 min。于4 500 r/min離心5 min,吸取上清液于250 mL的梨形瓶中。

        1.3.3 濃縮

        打開旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,設(shè)置轉(zhuǎn)速115 r/min,水溫40 ℃,壓強90 mPa,去除乙腈近2 mL后,加10 mL蒸餾水,渦旋振蕩,溶液待凈化。

        1.3.4 固相萃取凈化

        活化:用6 mL二氯甲烷∶甲醇(7∶3,體積比)、6 mL甲醇、6 mL水活化ENVI-CARB固相萃取柱(500 mg/6 mL)。

        用6 mL二氯甲烷∶甲醇(7∶3,體積比)活化氨基柱。

        上樣:提取液以1滴/s的速度從ENVI-CARB柱流出。

        淋洗:先用3 mL水淋洗,減壓抽干;后用3 mL正己烷淋洗,抽干,將雜質(zhì)去除。

        洗脫:將活化好的氨基柱串接在ENVI-CARB固相萃取柱下方,用6 mL的二氯甲烷∶甲醇(7∶3,體積比)洗脫,去掉ENVI-CARB柱,再用3 mL的二氯甲烷∶甲醇(7∶3,體積比)洗脫氨基柱,收集洗脫液。

        1.3.5 濃縮

        將收集完的洗脫液在40 ℃水溫、微弱的氮氣流下吹干。

        1.3.6 定容

        用1 mL乙腈∶水(1∶1)溶解殘渣,渦旋振蕩1 min,再用1 mL針筒吸取溶解液,過有機相濾膜,裝入進樣小瓶中,供液質(zhì)聯(lián)用儀器測定。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 樣品前處理

        本實驗采用了β-葡糖醛酸糖醛酸酶酶解樣品,達到了將動物組織中蛋白質(zhì)消解,使被測物從細胞中的蛋白質(zhì)結(jié)合狀態(tài)下(非共價蛋白質(zhì)鍵合物)游離出來的目的。

        另外在提取過程中,通過反復(fù)試驗,最終采取乙腈作為提取液,而非一般所用的甲醇提取液。這是因為乳與乳制品中蛋白較多,如果提取過程中不能將大量蛋白去除,將在凈化過程中引起固相萃取小柱的堵塞,由于乙腈溶液沉淀蛋白質(zhì)的效果要優(yōu)于甲醇,因此采用乙腈提取可獲得滿意的效果。

        本文正是通過對不同基質(zhì)的樣品的加標回收來驗證采用β-葡糖醛酸糖醛酸酶酶解樣品和使用乙腈作為提取液的方法的顯著優(yōu)越性。

        由于樣品的基質(zhì)抑制效應(yīng)非常明顯,因此樣品的凈化步驟非常重要,樣品凈化程度好可大大提高檢測的靈敏度。通過本方法的驗證,本實驗所采用的凈化方式能提供一個可靠的凈化效果。

        2.2 檢測手段的選擇

        一般選擇氣相色譜法、氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法,只能分離分析極性小和對熱穩(wěn)定的化合物,而液相色譜法在通用性和靈敏度上不如液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法,其他方法有的試劑用量多,有的操作復(fù)雜、花費時間長,有的不宜準確定量[6]。

        而液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用技術(shù)解決了傳統(tǒng)液相檢測器靈敏度和選擇性不夠的缺點, 對復(fù)雜基體中微量待測物進行測定,可以做到在復(fù)雜樣本體系中進行目標化合物的快速定量,而且簡化了試驗步驟, 大大節(jié)省了工作量,提高了效率, 特別適合于親水性強、揮發(fā)性強的有機物, 熱不穩(wěn)定化合物及生物大分子的分離分析。同時該檢測方法的靈敏度與精密度均符合對雌激素殘留檢測的需求[7][8]。

        在分析過程中發(fā)現(xiàn),合成苯二烯類合成雌激素的響應(yīng)值較高,而雌二醇的響應(yīng)值最低,如果流動相只用乙腈和水,則雌二醇的最低檢出限很難達到1 μg/kg。由于分析雌激素的質(zhì)譜電離模式采用的是負模式,因此向流動相中添加適量的氨水,以促進化合物的離子化,從而達到了理想的豐度。

        2.3 儀器參數(shù)的優(yōu)化

        2.3.1 液相色譜測定條件[9]

        色譜柱:CNW Athena C18-WP 2.1 mm×150 mm,5 μm;流動相:A:水,B:乙腈+0.1% 氨水(加入氨水可促進離子化);洗脫梯度:見表1;流速:0.3 mL/min;進樣體積:30 μL。

        表1 雌激素梯度洗脫條件

        2.3.2 質(zhì)譜測定條件

        電離化方式:電噴霧離子化(ESI);掃描方式:負離子掃描;監(jiān)測方式:多反應(yīng)監(jiān)測(MRM);離子源溫度 :450 ℃;霧化氣壓強:60× 6.894 757 kPa;氣簾氣壓強:30× 6.894 757 kPa;輔助氣壓強:60×6.894 757 kPa;電噴霧電壓:-4 500 V;定性離子對、定量離子對、碰撞氣能量和去簇電壓,見表2。

        表2 目標物的母離子、子離子及EP、DP、CE、CXP電壓值

        2.4 方法的線性回歸曲線方程

        根據(jù)上述實驗條件,將己烷雌酚、己烯雌酚、雙烯雌酚、雌二醇和雌酮標準溶液系列等體積進樣,以目標物峰面積乘內(nèi)標物濃度和內(nèi)標的峰面積比值為縱坐標,以目標物濃度為橫坐標,繪制標準曲線,并計算相關(guān)系數(shù)。每個化合物的曲線方程及相關(guān)系數(shù)見表3,得到可接受的標準曲線相關(guān)系數(shù)的最低值為0.99。

        表3 化合物的曲線方程及相關(guān)系數(shù)

        2.5 方法的回收率和精密度

        以不含雌二醇、雌酮、己烷雌酚、己烯雌酚、雙烯雌酚和雌酮的牛奶、奶酪、煉乳、奶粉為空白樣品,分別按1.0、2.0、5.0 μg/kg三個水平做添加回收實驗和精密度實驗,每種基質(zhì)每個水平做6個平行實驗,其回收率和精密度數(shù)據(jù)見表4~7。

        表4 牛奶

        表5 奶酪

        從表4~7中看到,目標物的回收率及精密度結(jié)果均能夠滿足殘留分析檢測的需求。本實驗的測定低限均為1 μg/kg。在線性范圍內(nèi)可接受的回收率平均范圍為60%~105%,精密度(相對標準偏差)為≤20%。其中雌二醇回收率范圍在68.0%~102.0%,相對標準偏差在2.9%~14.3%;己烷雌酚的回收率范圍在67.5%~104.4%,相對標準偏差在6.42%~12.3%;己烯雌酚回收率范圍在59.2%~105.0%,相對標準偏差在5.07%~16.3%;雙烯雌酚的回收率范圍在67.4%~105.0%,相對標準偏差在3.72%~14.2%;雌酮的回收率范圍在67.4%~104.4%,相對標準偏差在3.72%~16.3%。

        表6 煉乳

        表7 奶粉

        2.6 定性測定

        每種被測組分選擇1個母離子,2個以上子離子。在相同實驗條件下,樣品中待測物質(zhì)保留時間,與混合標準溶液中對應(yīng)的相對保留時間偏差在±2.5%之內(nèi),各目標物的保留時間為雌二醇(5.22 min)、己烷雌酚(6.04 min)、己烯雌酚(6.36 min)、雙烯雌酚(6.49 min)、雌酮(3.71 min);與樣品譜圖中各組分定性離子的相對豐度進行比較,若偏差不超過表5規(guī)定的范圍,則可判定為樣品中存在對應(yīng)的待測物。

        表5 定性確證時相對離子豐度的最大允許偏差/%

        2.7 定量測定

        在最佳工作條件下,混合標準溶液分別進樣,以工作溶液濃度為橫坐標,峰面積為縱坐標,繪制標準工作曲線。采用內(nèi)標法進行定量測定,由于樣品的基質(zhì)抑制效應(yīng)非常明顯,因此同位素內(nèi)標方法是非常好的校正方法。其作用在于可監(jiān)測回收率、作為保留時間校正物或色譜參考物[10]。其中雌二醇以雌二醇同位素內(nèi)標,其他三個外源性激素以己烯雌酚同位素為內(nèi)標。樣品溶液中待測物的響應(yīng)值應(yīng)在工作曲線范圍內(nèi)。

        2.8 結(jié)果計算

        如樣品中含有雌二醇、己烷雌酚、己烯雌酚、雙烯雌酚、雌酮,即滿足定性標準條件,可用數(shù)據(jù)處理機,或按式(1)計算試樣中待測物的含量:

        式中:Xi—— 試樣中目標物的含量,μg/kg;

        c—— 從標準曲線得到的目標物溶液濃度,ng/mL;

        V—— 樣液最終定容體積, mL;

        m—— 最終樣液所代表的量,g

        3 結(jié)語

        本實驗結(jié)合液相色譜與質(zhì)譜檢測器聯(lián)用技術(shù)的特點,建立了有效的LC-MS/MS測定乳與乳制品中雌激素殘留量的方法。通過前處理將樣品濃縮提純,從而使檢測靈敏度提高,減小了干擾峰對目標峰的影響。經(jīng)過前處理的樣品在檢測器最佳色譜條件下對食品中殘留的雌二醇、己烯雌酚、雙烯雌酚、己烷雌酚、雌酮進行測定。經(jīng)實驗分析,該方法線性關(guān)系良好,最小檢出濃度、回收率及精密度等均符合標準方法的研制要求,因此本方法可行性較強,便于推廣使用。

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