黃雅麗,田　琪,秦光華,安　然,馬風(fēng)云,*,敬如巖,陳博杰

1 山東農(nóng)業(yè)大學(xué)林學(xué)院,山東農(nóng)業(yè)大學(xué)生態(tài)與環(huán)境實驗室,泰安　271018 2 山東省林業(yè)科學(xué)研究院，濟南　250014

土壤微生物是維護森林生態(tài)系統(tǒng)的重要組成部分[1],是土壤中物質(zhì)轉(zhuǎn)化、養(yǎng)分循環(huán)過程的重要參與者與推動者,在形成土壤結(jié)構(gòu)、降解土壤有害物質(zhì)、提高植物養(yǎng)分等方面發(fā)揮著重要作用[2]。細菌是土壤微生物中種類最豐富、分布最廣泛的類群,在促進土壤有機殘體的分解及土壤潛在養(yǎng)分的轉(zhuǎn)化,提高土壤肥力等方面扮演著重要角色[3- 4]。土壤細菌群落多樣性是反映土壤質(zhì)量的一項重要指標(biāo)[5- 6]。因此,在森林生態(tài)系統(tǒng)中,通過對土壤中細菌群落結(jié)構(gòu)及多樣性進行研究,有利于探討土壤、植物和細菌三者之間的相互關(guān)系[7]。

傳統(tǒng)的研究土壤細菌群落結(jié)構(gòu)及多樣性的方法有稀釋平板法、Biolog微平板法。這些技術(shù)操作步驟繁雜、實驗耗費時間長、成本高、實驗檢測性低,不能很好的了解細菌群落結(jié)構(gòu)及多樣性特點。高通量測序技術(shù)又稱新一代測序技術(shù),該測序技術(shù)相對于傳統(tǒng)的測序技術(shù)而言,具有極大的優(yōu)勢,主要具有測序通量高、實驗過程簡化、速度快、準(zhǔn)確率高等特點,實驗結(jié)果更能全面的反應(yīng)環(huán)境中細菌群落結(jié)構(gòu)[8- 10]。近年來,隨著高通量測序技術(shù)的不斷發(fā)展,人們對土壤中微生物區(qū)系的研究日漸深入[11],這對進一步分析且高效、全面的認識土壤微生物提供了可能。

黃河三角洲地區(qū)生態(tài)系統(tǒng)類型獨特,屬于典型的鹽堿化地區(qū),生態(tài)環(huán)境脆弱,嚴(yán)重制約著當(dāng)?shù)亟?jīng)濟的發(fā)展。為改善當(dāng)?shù)厣鷳B(tài)環(huán)境,促進經(jīng)濟發(fā)展,黃河三角洲地區(qū)20世紀(jì)八十年代開始營建大面積的人工林[12]。該區(qū)人工林營建多選擇具有耐鹽性的樹種,如刺槐(Robiniapseudoacacia)、白蠟(Fraxinusvelutina)、榆樹(Ulmuspumila)、臭椿(Ailanthusaltissima)等。近年來學(xué)者對該地區(qū)人工林的碳儲量、生態(tài)效應(yīng)、造林技術(shù)與經(jīng)營管理模式等進行了大量研究。但對人工林土壤微生物群落研究的內(nèi)容仍然較少。本研究通過應(yīng)用Illmina Hiseq高通量測序技術(shù)對黃河三角洲刺槐純林、白蠟純林與刺槐白蠟混交林的土壤微生物群落結(jié)構(gòu)與多樣性等方面進行研究,對比分析刺槐白蠟混交對人工林土壤細菌群落的影響,以期為黃河三角洲人工林的栽培管理及地力維護提供參考。

1　材料與方法

1.1　研究區(qū)域與樣地概況

研究地點位于山東省東營市河口區(qū)(118°53′27″—118°55′41″E,37°59′14″—37°88′23″N)。東、北兩側(cè)臨渤海,屬暖溫帶半濕潤季風(fēng)氣候,年均氣溫12.94℃,全年最熱月7月,月均氣溫29.2℃,最冷月1月,月均氣溫4.4℃。年均無霜期為234 d,凍土期為44 d。全年降水分布不均,夏季降水占全年降水量的69.25%,冬季僅占全年的2.46%,年均降水量為690.6 mm。年均日照時間約為2728.5 h,年相對濕度平均為65%。土壤類型主要為濱海鹽土類、潮土類等[13],以NaCl為主,土壤表層鹽分含量為0.4%—3.0%,土壤質(zhì)地粘重,表現(xiàn)耕層板結(jié),透氣性差,肥力低。該區(qū)主要造林樹種有刺槐、白蠟、楊樹(Populs)、榆樹、臭椿、國槐(Sophorajaponica)等。樹下植被為狗牙根(Cynodondactylon)、飛蓬(Erigeronacer)、藜(Chenopodiumalbum)、牽牛(Pharbitisnil)等。

本文人工林研究選取黃河三角洲刺槐純林、白蠟純林與刺槐白蠟混交林3種人工林林型樣地,其基本情況見表1。

1.2　樣品采集與處理

1.2.1取樣方法

試驗始于2016年11月,分別設(shè)置面積為20 m×20 m標(biāo)準(zhǔn)樣地各3塊。取樣時在每個標(biāo)準(zhǔn)樣地內(nèi)呈梅花形分布設(shè)5個取樣點。去除表面雜草和浮土,挖取5—20 cm土層中的土壤,去除可見根后作為試驗土樣[14],同一樣地土樣充分混合。實驗共取回土樣9份,將每個標(biāo)準(zhǔn)地土樣分為兩部分,一部分土樣過0.20 mm篩,用于測定土壤理化性質(zhì)；一部分裝入已消毒的密封塑料袋中,液氮保存待測。

表1　林木生長狀況

1.2.2土壤理化性質(zhì)測定

土壤理化性質(zhì)測定采用常規(guī)方法：土壤含水量采用環(huán)刀法；土壤pH采用電位法(水土比為1∶2.5)；土壤電導(dǎo)率采用電導(dǎo)法(水土比為1∶5)；有機質(zhì)(organic matter, SOM)測定采用重鉻酸鉀氧化-外加熱法；速效氮(available nitrogen, AN)測定采用堿解擴散法；速效磷(available phosphorus, AP) 測定采用浸提鉬銻抗比色法；速效鉀(available K, AK)測定采用火焰光度法[12]。

1.2.3土壤微生物DNA提取、測序

土壤樣本基因組DNA應(yīng)用CTAB方法[15]提取,采用紫外分光光度計檢測DNA的純度和濃度,瓊脂糖凝膠檢測DNA樣品的完整性,取適量的樣品于離心管中,使用雙蒸水(ddH2O)稀釋樣品至1 ng/μL；之后PCR擴增采用16S V4區(qū)引物515F- 806R；等濃度PCR產(chǎn)物混樣,用2%的瓊脂糖凝膠電泳檢測,使用Thermo Scientific公司的GeneJET膠回收試劑盒回收產(chǎn)物對純化產(chǎn)物進行回收。使用New England Biolabs公司的NEB Next? UltraTMDNA Library Prep Kit for Illumina建庫試劑盒進行文庫的構(gòu)建,之后經(jīng)過Qubit定量和文庫檢測,合格后,使用MiSeq進行上機測序。

1.2.4數(shù)據(jù)結(jié)構(gòu)處理與分析

首先根據(jù)Barcode序列將Illumina MiSeq/HiSeq測序得到的下機數(shù)據(jù)(Raw Data)拆分為不同樣品數(shù)據(jù),截去Barcode序列和PCR擴增引物序列；使用FLASH將拆分的數(shù)據(jù)對每個樣品的reads進行拼接,得到的拼接序列為原始Tags數(shù)據(jù)(Raw Tags),經(jīng)更嚴(yán)格的過濾處理,得到高質(zhì)量的Tags數(shù)據(jù)(Clean Tags)。Raw Tags從連續(xù)低質(zhì)量值(默認質(zhì)量閾值為≤3)堿基數(shù)達到設(shè)定長度(默認長度值為3)的第一個低質(zhì)量堿基位點截斷；Tags經(jīng)過截取后得到的Tags數(shù)據(jù)集,進一步過濾掉其中連續(xù)高質(zhì)量堿基長度小于Tags長度75%的Tags；經(jīng)過以上處理后得到的Tags序列與數(shù)據(jù)庫(Gold database)進行比對[16],檢測嵌合體序列,并最終去除其中的嵌合體序列,得到最終的有效數(shù)據(jù)(Effective Tags)。

1.2.5物種注釋與豐度計算

用Uparse軟件根據(jù)序列相似性進行聚類對所有樣品的全部Effective Tags序列進行聚類,選擇97%作為相似性閥值將序列聚類成為OTUs,得到操作分類單(operationaltaxonomic unit, OTU)。Uparse構(gòu)建OTUs時選取代表性序列(依據(jù)其算法原則,篩選的是OTUs中出現(xiàn)頻數(shù)最高的序列),將代表性序列集合用RDP Classifier與GreenGene數(shù)據(jù)庫進行物種注釋分析,并結(jié)合物種組成信息結(jié)果,得到每個物種在該樣品中的豐度[17]。

1.2.6多樣性計算

選取相似度在97%條件下的OTU生成預(yù)期的稀釋曲線,并應(yīng)用軟件QIIME(Version 1.7.0)計算樣品的多樣性指標(biāo),包括物種數(shù)、Chao1指數(shù)、Shannon指數(shù)、Simpson指數(shù)。應(yīng)用SPSS 22.0軟件采用單因素方差分析(ANOVA)[18]得到各處理間數(shù)據(jù)相關(guān)性及細菌豐度差異,Duncan法檢測差異顯著性,顯著差異水平P<0.05,極顯著差異水平P<0.01。

2　結(jié)果與分析

2.1　測序數(shù)據(jù)分析

圖1　細菌稀釋曲線分析Fig.1　Rarefaction curve analysis of OTUs　CH：刺槐純林,Robinia pseudoacacia platation；BL：白蠟純林,Fraxinus velutina platations；FBC：刺槐白蠟混交林,Mixed forest of Robinia and Fraxinus

通過高通量測序,刺槐純林、白蠟純林、刺槐白蠟混交林3個樣品原始序列條數(shù)分別為31281、23281、54813,過濾掉低質(zhì)量的序列后,有效序列分別為30964、23146、53607。將這些序列在97%相似度聚類為用于物種分類的OTU,通過隨機抽樣的方法,以抽到的序列數(shù)與它們所代表的OTU數(shù)目構(gòu)建稀釋性曲線。從圖1可知,OTU數(shù)均隨序列的增加而增大,不同林分之間表現(xiàn)為刺槐白蠟混交林>刺槐純林>白蠟純林,且差異顯著。隨OTU數(shù)的增大,3種林分細菌稀釋曲線均基本趨于平緩,但仍未達到飽和,說明測序數(shù)據(jù)量漸進合理,更多的測序數(shù)據(jù)對發(fā)現(xiàn)新的OTU貢獻率較小。

2.2　細菌多樣性分析

分析表2得知,刺槐白蠟混交林土壤中細菌物種數(shù)、Chao1指數(shù)、Shannon指數(shù)分別為1934.5、2629.1、9.1,顯著高于刺槐純林、白蠟純林土壤,刺槐純林土壤細菌多樣性指數(shù)分別為混交林的91.48%、96.86%、95.84%；白蠟純林土壤細菌多樣性指數(shù)分別為混交林的81.23%、68.62%、91.46%；混交林土壤細菌各多樣性指數(shù)與刺槐純林、白蠟純林間均達顯著差異水平(P>0.05)。

表2　各樣地細菌群落的多樣性分析

CH：刺槐純林,Robiniapseudoacaciaplatation；BL：白蠟純林,Fraxinusvelutinaplatations；FBC：刺槐白蠟混交林,Mixed forest ofRobiniaandFraxinus;不同小寫字母表示處理間差異顯著(P<0.05)

2.3　土壤細菌群落相對豐度分析

從門水平上看,如圖2所示,在刺槐白蠟混交林與兩種純林土壤中共檢測36門細菌,其中刺槐白蠟混交林、刺槐純林、白蠟純林土壤分別檢測出29、25、26門。酸桿菌門(Acidobacteria)、變形菌門(Proteobacteria)、放線菌門(Actinobacteria)、硝化螺旋菌門(Nitrospirae)、綠彎菌門(Chloroflexi)、浮霉菌門(Planctomycetes)、芽單胞菌門(Gemmatimonadetes)、疣微菌門(Verrucomicrobia)8門細菌在刺槐白蠟混交林與兩種純林土壤中相對豐度均超過1%,為主要細菌群落。其中,白蠟純林、刺槐白蠟混交林土壤優(yōu)勢菌群(群落豐度>10%為優(yōu)勢菌群)分別為酸桿菌門、變形菌門、放線菌門,刺槐純林土壤優(yōu)勢菌群有酸桿菌門、變形菌門、放線菌門、硝化螺旋菌門4門菌群。酸桿菌門細菌在刺槐白蠟混交林土壤中相對豐度為28.72%,顯著高于刺槐純林土壤中相對豐度,但顯著低于白蠟純林土壤中相對豐度。變形菌門細菌在刺槐白蠟混交林土壤中相對豐度為24.40%,顯著高于白蠟純林土壤中相對豐度,但顯著低于刺槐純林土壤中相對豐度。放線菌門細菌在混交林土壤中相對豐度顯著高于兩個純林。硝化螺旋菌門僅在刺槐純林中為優(yōu)勢群落,相對豐度達11.85%,在刺槐白蠟混交林與白蠟純林土壤中相對豐度分別僅為4.76%、8.68%。綠彎菌門、浮霉菌門、芽單胞菌門、疣微菌門4門主要細菌在刺槐白蠟混交林及兩種純林土壤中相對豐度介于1.20%—7.77%,差異顯著(p>0.05)。另外,刺槐白蠟混交林土壤中含有1門獨特的細菌WPS- 2。

圖2　門水平土壤細菌群落結(jié)構(gòu)Fig.2　Soil bacterial community at the phylum levelsAcidobacteria：酸桿菌門,Proteobacteria：變形菌門,Actinobacteria：放線菌門,Nitrospirae：硝化螺旋菌門,Chloroflexi：綠彎菌門,Planctomycetes：浮霉菌門,Gemmatimonadetes：芽單胞菌門,Verrucomicrobia：疣微菌門,Bacteroidetes：擬桿菌門, Armatimonadetes：裝甲菌門,Cyanobacteria：藍細菌門,Crenarchaeota：泉古菌門,Euryarchaeota：古生菌門, Firmicutes：厚壁菌門,Chlorobi：綠菌門,Elusimicrobia：迷蹤菌門,Fibrobacteres：纖維桿菌門,Fusobacteria：梭桿菌門,Caldithrix：藍藻門,Tenericutes：柔膜菌門,(WS3,TM7,WYO,BRC1,NKB19,Thermi,SBR1093,GAL15,OP3,WS2,OD1,TM6,PAUC34F,NC10,WPS- 2)：未 定 菌,Others：其他

2.4　土壤理化性質(zhì)

表3中看出,刺槐白蠟混交林土壤含水量最高,刺槐純林、白蠟純林土壤含水量分別為混交林土壤的76.1%、68.1%；電導(dǎo)率以刺槐白蠟混交林土壤最低,與刺槐純林、白蠟純林土壤差異顯著,兩純林土壤之間差異不顯著?；旖涣峙c兩種純林土壤pH之間無顯著差異且均呈堿性狀態(tài)。刺槐白蠟混交林土壤有效磷含量為2.7 mg/kg,顯著高于白蠟純林土壤,但顯著低于刺槐純林土壤。混交林土壤速效鉀含量為208 mg/kg,顯著低于白蠟純林土壤,與刺槐純林土壤差異不顯著。堿解氮含量以刺槐白蠟混交林土壤最低,為37.1 mg/kg,與刺槐純林、白蠟純林土壤差異顯著(P<0.05)。刺槐白蠟混交林土壤有機質(zhì)含量仍最低,為33.6 g/kg,顯著低于兩種純林土壤,刺槐純林、白蠟純林土壤有機質(zhì)含量分別為混交林土壤的1.01倍和1.1倍。

2.5　細菌群落與土壤理化性質(zhì)關(guān)系

2.5.1細菌群落結(jié)構(gòu)與土壤理化性質(zhì)相關(guān)性

分析表4得知,土壤pH值與變形菌門、硝化螺旋菌門、綠彎菌門、浮霉菌門、芽單胞菌門、疣微菌門6種主要細菌豐度相關(guān)關(guān)系顯著,其中與芽單胞菌門呈極顯著正相關(guān)；有效磷與酸桿菌門、浮霉菌門2種主要細菌豐度呈顯著負相關(guān)；與變形菌門、硝化螺旋菌門、芽單胞菌門3種主要細菌豐度呈顯著正相關(guān)。速效鉀與酸桿菌門呈顯著正相關(guān)。另外放線菌門與土壤含水量、電導(dǎo)率、堿解氮、相關(guān)關(guān)系顯著,而與電導(dǎo)率呈極顯著負相關(guān)。

表3　不同林分土壤理化性質(zhì)

表4　主要細菌群落與土壤理化性質(zhì)相關(guān)關(guān)系(n=9)

*與** 分別表示達到5%和1%的顯著水平

2.5.2細菌多樣性與土壤理化性質(zhì)相關(guān)性

土壤細菌多樣性與土壤理化性質(zhì)相關(guān)性分析可以看出(表5),各多樣性指數(shù)與含水量、pH值、有效磷呈正相關(guān),與電導(dǎo)率、速效鉀、堿解氮和有機質(zhì)均呈負相關(guān)；其中,Shannon指數(shù)與土壤含水量呈現(xiàn)顯著正相關(guān)關(guān)系,相關(guān)系數(shù)為0.957；Chao1指數(shù)與速效鉀、有機質(zhì)含量呈現(xiàn)顯著負相關(guān)關(guān)系,相關(guān)系數(shù)分別為-0.997、-0.999。

表5　細菌多樣性與土壤理化性質(zhì)相關(guān)性分析(n=9)

*表示達到5%顯著水平

3　討論

3.1　樹種混交對土壤細菌群落的影響

很多實踐和研究都表明人工營造的純林在生物多樣性、穩(wěn)定性和生態(tài)功能等方面和混交林相比較都有很大的差異,所以目前人工林栽培提倡營造混交林?；旖涣趾图兞窒啾容^,本質(zhì)上改變了植被類型。有研究表明植被類型能影響土壤中細菌群落結(jié)構(gòu)及多樣性[19]。本試驗對林分5—20cm土層土壤細菌檢測顯示黃河三角洲刺槐白蠟混交林土壤優(yōu)勢菌群與純林間存在差異,變形菌門、放線菌門、酸桿菌門細菌相對豐度超過10%,是3種林分共有的優(yōu)勢菌群,硝化螺旋菌門為刺槐純林的優(yōu)勢菌群。另外,混交林土壤中各門細菌相對豐度與兩種純林間也存在顯著差異。鄒莉[20]等報道的落葉松、樟子松純林及混交林土壤微生物的群落分布特征有一定差異。王衛(wèi)霞[21]等的研究表明不同人工林間土壤微生物結(jié)構(gòu)均有明顯區(qū)別。這與本研究中發(fā)現(xiàn)不同樹種植被類型(混交林與純林間)對土壤細菌結(jié)構(gòu)有顯著影響的結(jié)果一致。造成混交林與純林土壤細菌群落結(jié)構(gòu)不同的原因可能是混交林與純林間樹種和配置方式不同,引起林內(nèi)凋落物成分、分解程度及土壤改良程度不同,同時其根系代謝及凋落物分解影響土壤細菌生長條件,如土壤pH、含水量、電導(dǎo)率、有效磷等[22-23]土壤理化性質(zhì)不同,導(dǎo)致土壤的細菌所處的環(huán)境及獲取的營養(yǎng)物質(zhì)不同,土壤中適宜生長的細菌群落也就不同。另外,Emile Benizri等[24]通過研究發(fā)現(xiàn): 微生物功能多樣性與林內(nèi)物種多樣性存在顯著相關(guān)關(guān)系,且生物多樣性在改善土壤環(huán)境及促進林分生態(tài)系統(tǒng)更加穩(wěn)定發(fā)揮重要作用[25]。試驗中林分混交豐富了土壤細菌群落,可能是其林下豐富的植被類型及植被不同生長習(xí)性導(dǎo)致的。因此,刺槐白蠟混交林與白蠟純林、刺槐純林間樹種組成不同,土壤細菌群落不同。樹種混交不僅從宏觀上改變了植被類型及林內(nèi)植被群落,也從微觀上改變了土壤的微生物群落,這也可能是混交林較純林穩(wěn)定的微觀原因之一。

本研究主要涉及了刺槐白蠟混交林及刺槐和白蠟純林對5—20 cm淺層土壤細菌群落影響,這一層次土壤細菌群落不僅受到該層林木根系的影響,也受到林分形成的小氣候環(huán)境、林下草本植被及凋落物的影響,是林分綜合環(huán)境影響的體現(xiàn)。本試驗沒有涉及到更深層次混交林根系對土壤細菌群落的影響,要全面反映混交林對土壤細菌群落的影響,還需要進一步深入研究混交林根系分布的不同層次對土壤細菌群落的影響。

3.2　細菌群落與土壤理化性質(zhì)

土壤細菌對土壤環(huán)境的變化敏感性較高,在不同的土壤環(huán)境下土壤養(yǎng)分的含量會直接影響土壤細菌群落[26],其中土壤酸堿程度對土壤細菌群落的影響最為顯著[27]。許多研究表明在酸性土壤中,芽單胞菌門生長不良,如在徐飛[28]等對三江平原土壤細菌的研究中(土壤pH為5.4—5.8,呈酸性)芽單胞菌門相對豐度小于1%。秦紅靈[29]等對紅壤坡地土壤細菌研究中(土壤pH為4.4—5.1,呈酸性)未檢測出芽單胞菌門。高圣超[30]等對東北黑土的研究中表明芽單胞菌門與土壤pH呈顯著正相關(guān),芽單胞菌門細菌偏好堿性的環(huán)境,堿性土壤有利于芽單胞菌的代謝活動。本試驗區(qū)地處黃河三角洲濱海鹽堿地,林分土壤pH值為8.01—8.79,呈堿性。堿性土壤中芽單胞菌門細菌相對豐度達2.5%—7.8%,為主要菌群,與酸性環(huán)境土壤相比芽單胞菌細菌相對豐度較高。這應(yīng)該是該試驗區(qū)堿性的土壤環(huán)境有利于嗜堿芽單胞菌門細菌的生長而使其相對豐度增大,成為主要菌群。

還有研究發(fā)現(xiàn)[31]酸桿菌門是嗜酸性細菌,在酸性土壤中生長較好。黃河三角洲3種林分土壤中酸桿菌細菌(豐度25.1%—49.2%)雖仍為優(yōu)勢菌群,但其豐度卻遠低于土壤呈酸性的鼎湖山森林土壤[32](酸桿菌門豐度53.3%—67.8%)和三江平原土壤[33](酸桿菌門豐度53%)。這可能是由于該試驗區(qū)的堿性環(huán)境遏制部分酸桿菌門細菌的生長；同時,堿性土壤促進部分嗜堿細菌的生長,增加土壤中細菌之間的競爭壓力,酸桿菌門細菌從土壤中獲取的營養(yǎng)物質(zhì)減少,因此酸桿菌門相對豐度較低。

很多研究表明土壤細菌多樣性與土壤鹽分的關(guān)系也比較密切,土壤鹽漬化會影響土壤中微生物的活動[34-35]。電導(dǎo)率是用來評價土壤鹽分含量綜合指標(biāo),土壤電導(dǎo)率越高表示土壤鹽分含量越大。本試驗刺槐白蠟混交林土壤電導(dǎo)率含量顯著低于刺槐純林與白蠟純林,白蠟刺槐混交林土壤細菌多樣性高于純林,表明刺槐白蠟混交不僅能夠降低土壤鹽分含量,還為細菌的生長提供了良好的環(huán)境,增加了土壤細菌多樣性。Fu Qinglin等[36]和林學(xué)政等[37]均發(fā)現(xiàn)隨著鹽濃度的升高,微生物群落多樣性逐漸降低。黃韶華[38]等對新疆荒漠區(qū)鹽土的研究中也發(fā)現(xiàn),土壤鹽分過高會顯著降低土壤微生物的數(shù)量,對土壤細菌的生長繁殖抑制最為明顯；鹽分含量越高,微生物的生長繁殖越弱。這與本研究中結(jié)果一致。這應(yīng)該是由于鹽分過高導(dǎo)致植物根系分泌物降低,而根系分泌物會改變根基環(huán)境,從而導(dǎo)致土壤中微生物的營養(yǎng)物質(zhì)減少,對土壤微生物的多樣性起到了抑制作用。黃河三角洲濱海鹽漬土壤鹽分含量較高,植被生長受到鹽堿的抑制。為更好的實現(xiàn)森林可持續(xù)經(jīng)營與發(fā)展,必須加強對土壤微生物的研究,在造林實踐中應(yīng)提倡營造混交林,特別是在土壤條件較差的濱海鹽堿地。

4　結(jié)論

黃河三角洲刺槐白蠟混交林土壤細菌豐度高于刺槐純林、白蠟純林土壤細菌。酸桿菌門、變形菌門、和放線菌門為白蠟純林、刺槐白蠟混交林的優(yōu)勢菌群,酸桿菌門細菌豐度最高；變形菌門、放線菌門、酸桿菌門、硝化螺旋菌門為刺槐純林土壤優(yōu)勢菌群,變形菌門細菌豐度最高。刺槐白蠟混交林和純林相比較改善了土壤的理化性質(zhì),混交林土壤質(zhì)量的改善又改變了土壤細菌的結(jié)構(gòu)和提高了細菌多樣性。本研究只是對純林與混交林在同一季節(jié)小空間內(nèi)土壤細菌多樣性特征進行了對比研究,而有關(guān)土壤微生物數(shù)量隨林分結(jié)構(gòu)、林齡等方面的變化有待深入研究。