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        無患子皂苷對3種植物病原菌的抑菌活性1)

        2018-06-15 01:44:12赫文琦魏松坡賈黎明
        關(guān)鍵詞:患子皂苷病菌

        赫文琦 魏松坡 賈黎明

        (省部共建森林培育與保護(hù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室(北京林業(yè)大學(xué)),北京,100083)

        無患子(Sapindusmukorossi)是無患子科(Sapindaceae)無患子屬(Sapindus)的1種落葉喬木,俗稱肥皂樹、洗手果等,主產(chǎn)于我國及東南亞各國,在長江流域、南部各省及海南島均有分布和栽培,北可及河南北部。無患子的果皮、種子、根、皮、葉是重要的天然表面活性劑、生物柴油、中藥等的原料,具有重要的多功能開發(fā)價值。目前對無患子的研究主要集中在種質(zhì)資源評價、栽培技術(shù)、化學(xué)成分的分析及有效成分皂苷的提取與分離[1-8]。同時研究表明,無患子皂苷還具有抗病毒、降血壓、抗真菌、殺蟲等多種藥理作用[9-15]。

        但是,現(xiàn)階段針對無患子皂苷抑制細(xì)菌和真菌活性的研究還較少,且大多都集中在人體的病原菌方面[8-10]。而對于林業(yè)和農(nóng)業(yè)生產(chǎn)來說,綠色、安全、低毒的病害防治藥劑為業(yè)界求之若鶩。無患子果皮化學(xué)組分的抑菌性,為動植物細(xì)菌、真菌病害防治開辟了一條植物源抑菌新道路。無患子果皮提取物作為一種植物源殺菌劑在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)上起到了一定的作用[16],而在林業(yè)生產(chǎn)上的作用,已有一定開發(fā),但尚未成熟。本研究選用獼猴桃腐爛病菌(Neofusicoccumparvum)、桉樹潰瘍病菌(Lasiodiplodiatheobromae)和歐美楊樹潰瘍病細(xì)菌(Lonsdaleaquercinasubsp.populi)進(jìn)行抑菌試驗(yàn),研究無患子皂苷的抑菌作用,以期為植物源抑菌劑的開發(fā)提供參考。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        無患子果皮水提濃縮液獲得的皂苷液,由福建省源華林業(yè)生物科技有限公司提供。

        桉樹潰瘍病病菌、獼猴桃腐爛病菌、歐美楊樹潰瘍病菌的菌種由北京林業(yè)大學(xué)森林保護(hù)實(shí)驗(yàn)室提供。PDA培養(yǎng)基(馬鈴薯、葡萄糖、瓊脂、水);LB培養(yǎng)基(胰蛋白胨、酵母提取物、氯化鈉、瓊脂)。

        1.2 方法

        1.2.1 無患子皂苷提取液質(zhì)量濃度的測定

        將5 mL皂苷液旋蒸成糊狀,用蒸餾水將其洗滌出,再用水飽和正丁醇進(jìn)行反復(fù)萃取,每次正丁醇的用量為10 mL,向萃取后的溶液中加入20 mL甲醇。用35%的鹽酸進(jìn)行2 h的水解,再次進(jìn)行旋蒸后,乙酸乙酯萃取3次(20、10、10 mL),再加入甲醇定容至10 mL,設(shè)置3個重復(fù)。

        配制0.10 g·L-1齊墩果酸-甲醇對照液10 mL,備用;配制5%香草醛-冰醋酸液10 mL,備用。用微量加樣器取對照液0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7 mL,分別置于7支具塞試管中,水浴揮干溶劑,先后依次加入香草醛-冰醋酸液0.2 mL、高氯酸0.8 mL,充分搖勻后于70 ℃水浴加熱15 min,取出后立即冰水冷卻2 min,加入5 mL冰醋酸,搖勻,在547 nm處測吸光度,以不加對照液為空白組[17]。分析得出標(biāo)準(zhǔn)曲線后,將處理過的無患子水提液稀釋100倍,吸取0.3 mL液體按上述過程操作測得其吸光度,通過其與齊墩果酸相對應(yīng)的無患子總皂苷的換算系數(shù)[18],計(jì)算無患子皂苷液的質(zhì)量濃度。

        1.2.2 真菌抑菌活性試驗(yàn)

        菌株培養(yǎng):用滅菌的接種針挑取2種菌物的菌絲,接種在PDA培養(yǎng)基上,在28 ℃的條件下培養(yǎng)48 h。

        抑菌平板的制作:①皂苷液涂布抑菌。稱取200 g馬鈴薯,洗凈去皮切碎,加水1 000 mL煮沸30 min,紗布過濾,再加20 g葡萄糖和10 g瓊脂,充分溶解后補(bǔ)足水分至1 000 mL,高壓蒸汽(121 ℃)滅菌20 min,將其趁熱倒入經(jīng)過高壓滅菌的培養(yǎng)皿中,凝固后備用。將無患子皂苷液分成3個質(zhì)量濃度,C1=44.56 g·L-1、C2=22.28 g·L-1、C3=11.14 g·L-1,用針式過濾器進(jìn)行過濾滅菌,以無菌水作為空白對照,共4個處理,每一個處理設(shè)置5個重復(fù)。將4種處理液用滅菌的涂布器均勻涂布在PDA培養(yǎng)基的表面。②皂苷液培養(yǎng)基混合抑菌。將無患子皂苷液分成3個質(zhì)量濃度,C1=44.56 g·L-1、C2=22.28 g·L-1、C3=11.14 g·L-1,過濾滅菌,按V(皂苷液)∶V(PDA培養(yǎng)基)=1∶4配制帶毒平板培養(yǎng)基[19],以無菌水作為空白對照,共4個處理,每一個處理設(shè)置5個重復(fù)。

        抑菌試驗(yàn):在2種方法制作的有毒培養(yǎng)基上分別接種桉樹潰瘍病病菌、獼猴桃腐爛病菌2種真菌的菌絲,將2種抑菌平板在培養(yǎng)箱內(nèi)28 ℃培養(yǎng)3 d,每天觀察結(jié)果并測量菌落的直徑。

        抑菌率=((對照抑菌圈直徑-試驗(yàn)抑菌圈直徑)/對照抑菌圈直徑)×100%。

        1.2.3 細(xì)菌抑菌活性試驗(yàn)

        菌株的培養(yǎng):用接種環(huán)挑取所用菌種,用平板劃線法接種在LB培養(yǎng)基上,30 ℃培養(yǎng)3 d。

        無患子皂苷液抑菌試驗(yàn):①牛津杯法。稱取胰蛋白胨10 g,酵母提取物5 g,氯化鈉10 g,瓊脂10 g,配置成1 000 mL的蒸餾水體系,充分溶解后將pH調(diào)節(jié)至7.2,高壓蒸汽(121 ℃)滅菌20 min,將其趁熱倒入經(jīng)過高壓滅菌的培養(yǎng)皿中,凝固后備用。將無患子皂苷液分成5個質(zhì)量濃度,C1=44.56 g·L-1、C2=22.28 g·L-1、C3=11.14 g·L-1、C4=5.57 g·L-1、C5=2.79 g·L-1,并過濾滅菌,以無菌水作為空白對照,共6個處理。每一個培養(yǎng)基加入0.1 mL菌懸液,并均勻涂布,細(xì)菌懸液菌數(shù)為1.0×1010個·mL-1。將滅菌牛津杯用無菌鑷子夾出,先置于酒精燈火焰上迅速過一下火,再垂直放置于培養(yǎng)基表面,輕輕按壓,使杯底與培養(yǎng)基之間無縫隙。每個平板放置2個牛津杯(外徑為8 mm),每種處理設(shè)置3個平板,即每種處理6個重復(fù),向每個牛津杯注入150 μL的處理液[20]。在培養(yǎng)箱中30 ℃培養(yǎng),每天觀察結(jié)果,測量并計(jì)算抑菌圈大小和抑菌率。

        抑菌圈=試驗(yàn)抑菌圈直徑-對照抑菌圈直徑;

        抑菌率=((試驗(yàn)抑菌圈直徑-對照抑菌圈直徑)/試驗(yàn)抑菌圈直徑)×100%。

        ②皂苷液培養(yǎng)基混合抑菌:將無患子皂苷液分成3個質(zhì)量濃度,C1=44.56 g·L-1、C2=22.28 g·L-1、C3=11.14 g·L-1,過濾滅菌,以無菌水作為空白對照,共4個處理。按V(皂苷液)∶V(LB培養(yǎng)基)=1∶4配制有毒培養(yǎng)基。用滅菌后的接種環(huán)挑取歐美楊樹潰瘍病細(xì)菌,將其接種在4種培養(yǎng)基上,每一個處理設(shè)置5個重復(fù)。并將接種好的抑菌平板放置在的培養(yǎng)箱中30 ℃倒扣培養(yǎng),每天觀察試驗(yàn)結(jié)果,記錄菌落數(shù)目。

        1.2.4 數(shù)據(jù)處理

        采用Excel 2013和SPSS 19.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理和分析。用單因素方差分析(one-way ANOVA)比較3種病原菌在不同處理下、不同時間內(nèi)的菌圈直徑數(shù)據(jù),設(shè)定影響因子為皂苷液質(zhì)量濃度。同因素不同水平間的差異顯著性采用鄧肯多重極差檢驗(yàn)法(Duncan)和最小顯著差數(shù)法(LSD)在0.05和0.01水平上進(jìn)行檢驗(yàn)。分析前,數(shù)據(jù)經(jīng)Kolmogorov-Smirnov test和Levene test檢驗(yàn),滿足正態(tài)性。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 齊墩果酸標(biāo)準(zhǔn)曲線

        以吸光度為縱坐標(biāo),齊墩果酸的質(zhì)量(mg)為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。經(jīng)回歸分析,得回歸方程為y=8.372 6x+0.005 6,R2=0.990 9,線性關(guān)系較好,測得公司提供的無患子皂苷液吸光度是0.492,通過換算得到其質(zhì)量濃度C=(44.56±0.76)g·L-1。

        2.2 對真菌活性的抑制

        2.2.1 涂布抑菌

        從表1可以看出,2種真菌生長速度較快,都可以在培養(yǎng)基上正常生長,各個質(zhì)量濃度的皂苷液和空白對照間不存在顯著差異,說明用無患子皂苷液涂布法對2種真菌不存在抑制作用。

        表1 無患子皂苷液涂布對真菌菌落的抑制效果

        注:表中數(shù)據(jù)為平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤(n=5),培養(yǎng)基的直徑為9.0 cm。

        2.2.2 皂苷液PDA培養(yǎng)基混合抑菌

        從表2和圖1可以看出,不同處理的菌落直徑差異極顯著,說明皂苷液培養(yǎng)基混合法對2種真菌存在抑制作用,且隨著皂苷液質(zhì)量濃度的提高,抑制作用也提高。當(dāng)皂苷液質(zhì)量濃度為11.14 g·L-1時,桉樹潰瘍病菌落直徑第1天、第2天、第3天分別為0.82、4.23、7.56 cm,抑菌率分別為76.4%、52.2%、16.0%。當(dāng)皂苷液質(zhì)量濃度達(dá)到22.28 g·L-1時,抑菌率達(dá)到了100%。獼猴桃腐爛病也表現(xiàn)出相同的規(guī)律。

        表2 皂苷液PDA培養(yǎng)基混合處理對真菌菌落的抑制效果

        皂苷提取液/g·L-1獼猴桃腐爛病菌第1天菌落直徑/cm抑菌率/%第2天菌落直徑/cm抑菌率/%第3天菌落直徑/cm抑菌率/%44.560C100.00C100.00C100.022.280C100.00C100.00C100.011.14(0.50±0.04)B80.5(2.52±0.33)B64.1(4.98±0.26)B43.8CK(2.57±0.07)A0(7.02±0.21)A0(8.86±0.09)A0

        注:表中菌落直徑的數(shù)據(jù)為平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤(n=5),數(shù)據(jù)后同列不同大寫字母表示差異極顯著(P<0.01)。培養(yǎng)基的直徑為9.0 cm。

        N.獼猴桃腐爛病(Neofusicoccumparvum);L.桉樹潰瘍病病菌(Lasiodiplodiatheobromae);1~4.皂苷液質(zhì)量濃度分別為0、11.14、22.28、44.56 g·L-1。

        圖1皂苷液PDA培養(yǎng)基混合抑菌(培養(yǎng)第2天)

        2.3 對細(xì)菌活性的抑制

        2.3.1 牛津杯法

        從表3可以看出,隨著皂苷液質(zhì)量濃度的提高,抑菌圈直徑差異極顯著,說明牛津杯法對歐美楊樹潰瘍病菌存在抑制作用。皂苷質(zhì)量濃度為2.79、5.58 g·L-1時抑菌率為0;當(dāng)質(zhì)量濃度上升至11.14、22.28、44.56 g·L-1時,抑菌率分別達(dá)到了15.8%、27.9%、38.9%。

        2.3.2 皂苷液LB培養(yǎng)基混合抑菌

        歐美楊樹潰瘍病細(xì)菌在空白對照培養(yǎng)基上生長良好,而在混有質(zhì)量濃度為44.56、22.28、11.14 g·L-1的皂苷液的抑菌平板上均不能生長,抑菌率達(dá)到了100%(表4、圖2)。

        表3 皂苷提取液對歐美楊樹潰瘍病菌的抑制作用

        注:抑菌圈直徑是培養(yǎng)第4天的觀察結(jié)果,數(shù)值為平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤(n=6),數(shù)據(jù)后同列不同大寫字母表示差異極顯著(P<0.01)。

        表4皂苷液LB混合培養(yǎng)基對歐美楊樹潰瘍病細(xì)菌的抑制作用

        皂苷提取液/g·L-1菌落/個抑菌率/%44.56 010022.28010011.140100CK≥100

        注:菌落數(shù)是培養(yǎng)第4天觀察的結(jié)果。

        A-D.皂苷液質(zhì)量濃度分別為0、11.14、22.28、44.56 g·L-1。

        圖2皂苷液LB混合培養(yǎng)基對歐美楊樹潰瘍病細(xì)菌的抑制情況(培養(yǎng)第4天)

        3 討論

        無患子皂苷含有羥基和羧基,為極性分子,分子質(zhì)量較小,均在1 000左右,因此,皂苷可能通過細(xì)胞壁和細(xì)胞膜阻礙微生物的核酸復(fù)制或轉(zhuǎn)錄過程以及蛋白質(zhì)的翻譯過程,由此抑制微生物的生長繁殖[21],而真菌和細(xì)菌的細(xì)胞結(jié)構(gòu)差異大,所以無患子皂苷液對它們的抑制作用存在差異。本試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)無患子皂苷液對細(xì)菌病害的抑制作用強(qiáng)于真菌性病害,這與趙志敏等[22]得出的結(jié)論:無患子皂苷對真菌(白色念珠菌(Moniliaalbican)和黑曲霉菌(Aspergillusniger))的抑菌性優(yōu)于細(xì)菌(大腸桿菌(Escherichiacoli)、綠膿桿菌(Pseudomonasaeruginosa)和金黃色葡萄球菌(Staphyloccocusaureus))不同,這可能在于選取的真菌種類不同而導(dǎo)致其結(jié)構(gòu)和耐藥性存在差異。

        朱朝陽等[21]發(fā)現(xiàn),無患子皂苷液對大腸桿菌(Escherichiacoli)有抑制作用,而歐美楊樹潰瘍病菌與大腸桿菌都屬于腸桿菌科,在結(jié)構(gòu)和代謝水平上有一定的相似性,所以無患子皂苷液對它們均存在抑制作用。且歐美楊樹潰瘍病菌與大腸桿菌都是革蘭氏陰性菌,印證了趙志敏等[22]的結(jié)論:無患子的皂苷對革蘭氏陰性菌(大腸桿菌、綠膿桿菌)的抑菌性優(yōu)于革蘭氏陽性菌(金黃色葡萄球菌)。牛津杯法抑菌,抗菌藥物在瓊脂內(nèi)向四周擴(kuò)散,其質(zhì)量濃度呈梯度遞減。相比于牛津杯法抑菌,混合皂苷液和LB制成的有毒培養(yǎng)基,皂苷液的質(zhì)量濃度更穩(wěn)定,皂苷的含量更多,所以在相同的質(zhì)量濃度下對歐美楊樹潰瘍病菌的抑制作用較好。

        皂苷液涂布法對2種真菌不存在抑制作用,將皂苷液與PDA混合制作成的有毒培養(yǎng)基對2種真菌均存在較強(qiáng)的抑制作用,推測這與皂苷液的含量有關(guān),即混合制成的培養(yǎng)基中皂苷含量更多,對細(xì)胞的殺傷作用更強(qiáng)。

        目前,在不規(guī)范使用化學(xué)殺菌劑的今天,已經(jīng)造成了對環(huán)境的破壞,也導(dǎo)致了病原菌產(chǎn)生了抗藥性。因植物源的抑菌作用機(jī)制不同于抗生素,不易使病菌產(chǎn)生耐藥性,且綠色、環(huán)保,日益倍受關(guān)注。依據(jù)本研究的結(jié)果,推測可以用噴灑皂苷液制劑對歐美楊樹潰瘍病菌進(jìn)行防治,利用膏狀皂苷制劑涂抹在歐美楊樹潰瘍病菌、桉樹潰瘍病菌、獼猴桃腐爛病菌導(dǎo)致的患病處進(jìn)行治療。目前關(guān)于無患子皂苷在抑菌方面的研究較少,本試驗(yàn)只對無患子皂苷提取液的抑菌作用做了初步研究,下一步將研究皂苷的抑菌機(jī)理,以便能為無患子植物源抑菌劑的開發(fā)奠定基礎(chǔ)。因此,積極探討無患子皂苷的抑菌作用,以指導(dǎo)合理使用植物源抑菌劑和化學(xué)殺菌劑協(xié)同使用,對減少耐藥病菌、合理保護(hù)環(huán)境,有著積極的現(xiàn)實(shí)意義。

        4 結(jié)論

        用無患子皂苷液涂布制成的有毒培養(yǎng)基對桉樹潰瘍病病菌、獼猴桃腐爛病菌2種真菌不存在抑制作用,而利用皂苷液與培養(yǎng)基混合制成的有毒培養(yǎng)基,隨著皂苷液質(zhì)量濃度的增大,對2種真菌的抑制作用增強(qiáng),當(dāng)皂苷質(zhì)量濃度達(dá)到44.56、22.28 g·L-1時,對2種真菌的抑制率分別達(dá)到了100%。細(xì)菌對皂苷液的敏感性強(qiáng)于真菌,隨著皂苷液質(zhì)量濃度的增大,牛津杯法抑菌對歐美楊樹潰瘍病細(xì)菌的抑制作用增強(qiáng),皂苷質(zhì)量濃度為44.56 g·L-1時,抑菌率達(dá)到了38.9%;皂苷質(zhì)量濃度在44.56、22.28、11.14 g·L-1時,皂苷液培養(yǎng)基與混合培養(yǎng)基的抑菌率均達(dá)到了100%。無患子皂苷對細(xì)菌病害的抑制作用強(qiáng)于真菌性病害,且皂苷液與培養(yǎng)基混合配置的方法抑菌效果更好。本試驗(yàn)可為探索抑菌機(jī)理、開發(fā)植物源抑菌劑提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。

        參 考 文 獻(xiàn)

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