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        不同干燥方法對甜藤莖中成分含量的影響

        2018-06-13 11:47:58苑靜王紹云
        中國調(diào)味品 2018年6期
        關(guān)鍵詞:藤莖陰干曬干

        苑靜,王紹云

        (凱里學院,貴州 凱里 556011)

        甜藤為茜草科雞矢藤屬多年生蔓性草質(zhì)藤本植物[Paederiascandens(Lour.)Meer.],又稱雞矢藤、牛皮凍、臭藤、五香藤、母狗藤等,其廣泛分布于東亞、南亞、東南亞地區(qū),在我國主要分布于長江流域及其南部地區(qū)[1]。甜藤揉爛時稍有雞屎味,但做成食品后,卻是清香四溢,鮮美可口。貴州野生甜藤資源豐富,貴州黔東南侗族人民用它作為食品的增甜劑和膨松劑,制成傳統(tǒng)的特色美食甜藤粑和侗果,將野生甜藤莖搗爛,放入水中浸泡過濾,用其濾液為原料加工制作而成。甜藤粑和侗果一般在清明時節(jié)制作,口感香甜柔軟,開胃潤腸,食而不膩,久置不硬,保質(zhì)時間較長[2]。

        近年來,對甜藤植物的研究主要集中在其化學成分和臨床應(yīng)用等方面,研究發(fā)現(xiàn)甜藤中富含總氨基酸、總糖類化合物及多種生物活性物質(zhì),具有預防心血管疾病、調(diào)節(jié)免疫、抗衰老等功效,其獨特的保健價值也逐漸得到人們的認可[3]。經(jīng)查閱文獻發(fā)現(xiàn),研究不同的制備方法對甜藤莖中含量的影響比較少,本文采用紫外可見分光光度法檢測陰干、曬干、烘干的甜藤莖中有益成分含量,研究不同的干燥方法對甜藤莖中有益成分含量的影響,為甜藤的加工保存提供理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        將貴州省黔東南州凱里市下司鎮(zhèn)采摘的甜藤莖,挑選出無蟲蛀、無斑點的部位清洗,將分別用陰干、曬干、烘干方法干燥后的甜藤莖用粉碎機分別制成粉末,待用。

        1.2 儀器

        WK-1000A小型高速粉碎機 青州市精誠醫(yī)藥裝備制造有限公司;AR-2140型電子分析天平 奧豪斯國際貿(mào)易公司;SHZ-D Ⅲ型循環(huán)水式真空泵、KQ-B型干燥器 鞏義市英峪予華儀器有限責任公司;TD5M型低速離心機 長沙湘智離心機儀器有限公司;UV-2550型紫外-可見分光光譜儀 日本島津公司。

        1.3 試劑

        60% C2H5OH水溶液、5% NaNO2溶液、10% Al(NO3)3溶液、4% NaOH溶液、磷酸鹽緩沖溶液、2%茚三酮溶液、100 μg/mL蘆丁標準溶液(取蘆丁標準品0.0025 g 置于25 mL的容量瓶中,用60% C2H5OH溶解,定容至刻度)、50 μg/mL谷氨酸標準溶液(精密稱取0.0050 g谷氨酸標準品,用10 mL 0.02 mol/L的NaOH溶解,定容至100 mL)、8% HCl溶液、0.1 mg/mL維生素C標準溶液(取谷氨酸標準品0.0050 g 于50 mL燒杯中,加8% HCl溶液攪拌至溶解,轉(zhuǎn)移至50 mL容量瓶中,用8% HCl溶液定容)。

        1.4 方法

        1.4.1 黃酮的提取及含量測定

        準確稱取陰干、曬干、烘干(60 ℃)的甜藤粉樣品于3個錐形瓶中,按物料比1∶30加入提取劑(60% C2H5OH),浸泡50 min,水浴溫度45 ℃,超聲提取40 min,離心沉淀(4000 r/s,10 min)后,真空抽濾,分別取濾液于50 mL容量瓶中,用60% C2H5OH定容至刻度制得甜藤莖提取液備用,測黃酮含量[4]。

        取蘆丁標準溶液2 mL于10 mL的容量瓶中,加入0.30 mL 5% NaNO2溶液,搖勻,靜置6 min后加入0.30 mL 10% Al(NO3)3溶液,搖勻,靜置;6 min后再加入4.00 mL 4% NaOH溶液,混合均勻,用60% C2H5OH溶液定容,搖勻,靜置12 min后,以蒸餾水為參比,在紫外可見分光光度計上掃描,在506 nm處有最大吸收峰[5,6]。

        取蘆丁標準溶液0,2.00,2.50,3.00,3.50,4.00 mL分別置于10 mL的容量瓶中,按照測最大吸收峰的方法配制溶液,在波長506 nm處測定其吸光度值。以蘆丁標準溶液的濃度為橫坐標、吸光度為縱坐標,繪制標準曲線。

        移取甜藤莖黃酮提取液各2 mL分別置于編號為陰-1、陰-2、陰-3、曬-1、曬-2、曬-3、烘-1、烘-2、烘-3,容積為10 mL的9個容量瓶中,按照測最大吸收峰的方法配制溶液,在波長506 nm處測定樣品吸光度值,計算黃酮含量。

        黃酮含量=C×V2×V總×10-6V1×m樣×100%。

        式中:C為所測得的樣品濃度(μg/mL);V1為所取樣品濾液體積(mL);V2為稀釋后樣品的體積(mL);V總為樣品液的總體積(mL);m樣為所稱取的樣品質(zhì)量(g)。

        1.4.2 維生素C的提取及含量測定

        精密稱取烘干、陰干、曬干的甜藤粉末1.041,1.0005,2.0018 g分別置于250 mL錐形瓶中(按料液比1∶20)用水浸泡0.5 h,于65 ℃水浴中超聲40 min,離心沉淀10 min,真空抽濾收集濾液分別轉(zhuǎn)移到25 mL容量瓶中,加入1 mL 8% HCl,再用蒸餾水定容至刻度,制得甜藤莖提取液,搖勻備用,測維生素C含量。

        移取維生素C標準溶液1.50 mL,8% HCl溶液1.00 mL,稀釋定容至25.00 mL棕色容量瓶中。用蒸餾水作參比溶液,在200~400 nm波長范圍內(nèi)用紫外可見分光光譜儀掃描,確定最大吸收波長為243 nm。

        準確移取維生素C標準溶液0.5,1.0,1.5,2.0,2.5 mL于5個25.00 mL棕色容量瓶中,用蒸餾水定容,得5個濃度的維生素C標準溶液。以蒸餾水作參比,在243 nm處測定吸光度值,得維生素C標準曲線[7,8]。

        移取甜藤莖維生素C提取液0.20 mL于3個25.00 mL棕色容量瓶中,加入1 mL 8% HCl,用蒸餾水定容至刻度,用紫外可見分光光度計平行測定3次,通過維生素C標準曲線查得樣品維生素C濃度,計算其含量(同1.4.1黃酮含量計算方法)。

        1.4.3 氨基酸的提取及含量測定

        準確稱取事先干燥粉碎好的甜藤樣品各1.0000 g,并編號為“陰干、曬干、烘干”。按物料比1∶20加入提取劑(水),浸泡35 min,超聲提取40 min,水浴溫度45 ℃,離心沉淀(4000 r/s,10 min)后真空抽濾,取濾液于編號為“陰干、曬干、烘干”的50 mL容量瓶中,用蒸餾水定容至刻度制得甜藤莖提取液,備用,測氨基酸含量。

        精密移取谷氨酸標準溶液和氨基酸樣品液各5 mL于25 mL的容量瓶中,分別加1.0 mL 2%的茚三酮溶液、3.0 mL磷酸鹽緩沖溶液,置于沸水浴中加熱15 min,取出流水冷卻,用蒸餾水定容到刻度線,以試劑空白作參比,用紫外可見分光光度計在波長范圍為400~600 nm下進行掃描,在566 nm處有最大吸收峰。

        分別精密移取50 μg/mL的谷氨酸標準溶液0,2,4,6,8,10 mL于6個25 mL的容量瓶中,按照測最大吸收峰的方法配制溶液,測吸光度。以谷氨酸標準溶液的濃度為橫坐標、吸光度為縱坐標,繪制標準曲線。

        分別精密移取甜藤莖提取液各0.2 mL置于9個編號為陰-1、陰-2、陰-3、曬-1、曬-2、曬-3、烘-1、烘-2、烘-3,容積為25 mL的容量瓶中,按照測最大吸收峰的方法配制溶液,測吸光度,計算其含量(同1.4.1黃酮含量計算方法)。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 黃酮、氨基酸和維生素C標準曲線

        黃酮含量在濃度為20.0~50.0 μg/mL時具有良好的線性關(guān)系(見圖1),所得線性方程為:y=0.01116x+0.01233,R2=0.99985;維生素C在2.000~12.000 μg/mL的濃度范圍內(nèi)與吸光度呈良好的線性關(guān)系(見圖2),所得線性回歸方程為:y=0.0503x+0.0208,相關(guān)系數(shù)R2=0.9997;氨基酸在5.000~20.000 μg/mL的濃度范圍內(nèi)吸光度和濃度具有良好的線性關(guān)系(見圖3),所得線性方程為:y=0.03032x-0.01173,R2=0.99960。

        圖1 黃酮標準曲線Fig.1 Standard curve of flavonoid

        圖2 維生素C標準曲線Fig.2 Standard curve of vitamin C

        圖3 氨基酸標準曲線Fig.3 Standard curve of amino acid

        2.2 黃酮、氨基酸和維生素C含量

        表1 甜藤莖提取液中黃酮含量Table 1 The content of flavonoids in Paederia scandens(Lour.)Meer. stem

        由表1可知,對于3種干燥方法制備的甜藤莖提取液中,用陰干方法制備的原料,黃酮平均含量(0.914%)最高,其次是烘干和曬干的原料,二者相差不大。3種干燥方法中陰干處理原料的溫度相對最低,烘干和曬干溫度相對較高,說明溫度對原料中黃酮含量的影響較大,最有利的保存方法是陰干。

        表2 甜藤莖提取液中維生素C含量Table 2 The content of vitamin C in Paederia scandens(Lour.)Meer. stem

        由表2可知,對于3種干燥方法制備的甜藤莖提取液中,用陰干方法制備的原料,維生素C平均含量(1.432%)最高,其次是烘干(1.341%),曬干的原料維生素C含量(0.5314%)損失最大,高低含量相差2.69倍,曬干不利于維生素C的保存,說明3種處理原料的方法中陰干有利于有益成分的保存。

        表3 甜藤莖提取液中氨基酸含量Table 3 The content of amino acid in Paederia scandens(Lour.)Meer. stem

        由表3可知,對于3種干燥方法制備的甜藤莖提取液中,用陰干方法制備的原料,氨基酸平均含量(10.131%)最高,其次是曬干(9.574%),烘干原料中氨基酸含量(9.161%)損失最大,高低含量相差近1%,烘干不利于氨基酸的保存,說明3種處理原料的方法中有利于有益成分的保存順序為陰干、曬干、烘干,最好的原料處理方法是陰干。

        從以上3種成分含量的測試數(shù)據(jù)中發(fā)現(xiàn),用陰干方法制備的原料有利于黃酮、維生素C和氨基酸有益成分的保存。

        2.3 甜藤莖提取液中黃酮、氨基酸和維生素C含量的精密度試驗

        移取甜藤莖提取液各2 mL分別置于編號為陰-1、陰-2、陰-3、陰-4、陰-5、曬-1、曬-2、曬-3、曬-4、曬-5、烘-1、烘-2、烘-3、烘-4、烘-5,容積為10 mL的15個容量瓶中,按照1.4中方法配制溶液,測定其吸光度,做精密度試驗,數(shù)據(jù)見表4~表6。

        表4 甜藤莖提取液中黃酮含量精密度試驗Table 4 The precision test of flavonoids in Paederia scandens(Lour.)Meer. stem

        由表4可知,相對標準偏差RSD數(shù)據(jù)均小于2.00%,測試方法的精密度較高。

        表5 甜藤莖提取液中維生素C含量精密度試驗Table 5 The precision test of vitamin C in Paederia scandens(Lour.)Meer. stem

        由表5可知,相對標準偏差RSD數(shù)據(jù)均小于2.00%,測試方法的精密度較高。

        表6 甜藤莖提取液中氨基酸含量精密度試驗Table 6 The precision test of amino acid in Paederia scandens(Lour.)Meer. stem

        由表6可知,相對標準偏差RSD數(shù)據(jù)均小于2.00%,測試方法的精密度較高。

        2.4 甜藤莖提取液中黃酮、氨基酸和維生素C含量的加標回收試驗

        2.4.1 黃酮含量的加標回收試驗

        移取甜藤莖提取液各2 mL分別置于編號為陰-1、陰-2、陰-3、陰-4、陰-5、曬-1、曬-2、曬-3、曬-4、曬-5、烘-1、烘-2、烘-3、烘-4、烘-5,容積為10 mL的15個容量瓶中,分別加入0.1 mL蘆丁標準溶液,按照1.4中方法配制溶液測定其吸光度,做黃酮含量的加標回收試驗,見表7。

        表7 甜藤莖提取液中黃酮含量的加標回收試驗Table 7 The content adding standard recovery test of flavonoids in Paederia scandens(Lour.)Meer. stem

        由表7可知,陰干、曬干、烘干甜藤提取液中黃酮回收率分別為98.552%,100.012%,99.738%(n=5),RSD分別為1.48%,1.30%,0.84%(n=5),準確度滿足測定要求。

        2.4.2 維生素C含量的加標回收試驗

        在供試品溶液中加入維生素C標準品,按照1.4中方法配制溶液,測定其吸光度,做維生素C含量的加標回收試驗,見表8。

        表8 甜藤莖提取液中維生素C含量的加標回收試驗Table 8 The content adding standard recovery test of vitamin C in Paederia scandens(Lour.)Meer. stem

        由表8可知,陰干、曬干、烘干甜藤提取液中維生素C回收率分別為100.59%,100.72%,100.77%(n=5),RSD分別為0.81%,0.60%,1.01%(n=5),準確度滿足測定要求。

        2.4.3 氨基酸含量的加標回收試驗

        在供試品溶液中加入氨基酸標準品量為5 μg,按照1.4中方法配制溶液,測定其吸光度,做氨基酸含量的加標回收試驗,見表9。

        表9 甜藤莖提取液中氨基酸含量的加標回收試驗Table 9 The content adding standard recovery test of amino acid in Paederia scandens(Lour.)Meer. stem

        續(xù) 表

        由表9可知,陰干、曬干、烘干甜藤提取液中氨基酸回收率分別為100.724%,100.030%,99.794%(n=5),RSD分別為0.99%,1.16%,1.10%(n=5),準確度滿足測定要求。

        3 結(jié)論

        研究結(jié)果顯示:干燥方法不同,甜藤提取液中各成分含量不同。陰干、烘干和曬干甜藤莖中的黃酮含量分別是0.914%,0.752%,0.716%;氨基酸含量分別是10.131%,9.161%,9.574%;維生素C含量分別是1.432%,1.341%,0.5314%。從以上3種成分含量的測試數(shù)據(jù)中發(fā)現(xiàn),用陰干方法制備的原料有利于黃酮、維生素C和氨基酸有益成分的保存。

        根據(jù)精密度和加標試驗驗證,采用紫外可見分光光度法研究陰干、曬干和烘干3種不同的干燥方法對甜藤莖中3種成分含量的影響,結(jié)果準確可靠,為甜藤的加工保存提供了一定的理論依據(jù)。

        參考文獻:

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