(山東省食品藥品檢驗(yàn)研究院,山東濟(jì)南250101)
近年來,隨著人們生活水平的不斷提高,各種美食豐富了人們的餐桌,潛伏的食品安全問題也隨之出現(xiàn)。其中,最值得關(guān)注的問題就是肉摻假問題,市場上許多不法商家以未經(jīng)檢驗(yàn)的貂肉冒充羊肉、牛肉摻入肉卷等事件層出不窮[1],對(duì)日常監(jiān)管和檢測能力都提出了新的挑戰(zhàn)。當(dāng)前,分子生物學(xué)是檢測動(dòng)物源性成分的重要手段[2],聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(Polymerase Chain Reaction,PCR)技術(shù)是通過熱循環(huán)對(duì)目的基因進(jìn)行擴(kuò)增,經(jīng)過瓊脂糖凝膠電泳分析,肉眼估算產(chǎn)物大小的一種檢測方法,這種檢測手段耗時(shí)較長,且溴化乙錠作為熒光染色劑具有一定的致癌性[3],容易造成人為操作的誤差和環(huán)境污染。因此,熒光PCR技術(shù)憑借其省時(shí)、特異性強(qiáng)、靈敏度高、無污染等特點(diǎn),被質(zhì)檢部門廣泛的運(yùn)用到日常檢驗(yàn)工作當(dāng)中,成為打擊不法商販,進(jìn)而維護(hù)消費(fèi)者合法權(quán)益的強(qiáng)有力手段[4]。
在利用熒光PCR技術(shù)對(duì)樣品進(jìn)行檢測時(shí),通常需要選取含有目的基因的陽性物質(zhì)作為試驗(yàn)對(duì)照,以確保試驗(yàn)結(jié)果的準(zhǔn)確性,由于有些陽性材料難獲取且有證標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)具有價(jià)格昂貴、制作工藝復(fù)雜、有效期短等問題,影響了日常檢驗(yàn)工作的開展[5]。為了解決陽性物質(zhì)匱乏這一問題,眾多檢測機(jī)構(gòu)都在研究用陽性質(zhì)粒分子代替基體標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),用于動(dòng)物源性成分的檢測。2002年,日本科學(xué)家Kuribara等首次提出陽性質(zhì)粒分子這一概念[6],陽性質(zhì)粒分子就是重組質(zhì)粒分子,具有易構(gòu)建、純度高、繁殖快、成本低等優(yōu)點(diǎn),這種新型標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)陽性質(zhì)粒分子的出現(xiàn),為動(dòng)物源性成分的安全監(jiān)管提供了陽性材料,緩解了由于標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)缺乏造成的監(jiān)管壓力。
為了解決摻假問題對(duì)食品業(yè)的影響,商品化食品檢測試劑盒作為一種新型快檢方法被廣泛應(yīng)用到PCR分析當(dāng)中,具有操作簡便、方法可靠、成本可控等特點(diǎn),適合現(xiàn)場的快速檢測[7]。越來越多的機(jī)構(gòu)投入到試劑盒的研發(fā)與生產(chǎn)中,也造成試劑盒質(zhì)量良莠不齊的現(xiàn)象越來越明顯,使得試劑盒的檢驗(yàn)質(zhì)量得不到保證。針對(duì)以上問題,本研究構(gòu)建了水貂、紫貂兩種成分的陽性質(zhì)粒分子,并對(duì)其靈敏度和特異性進(jìn)行了驗(yàn)證,同時(shí)對(duì)比了3家公司引物、探針對(duì)熒光PCR反應(yīng)效率的影響,擬研究出一種經(jīng)濟(jì)、高效的實(shí)時(shí)熒光PCR反應(yīng)體系,對(duì)于食品中動(dòng)物源性成分準(zhǔn)確可靠的鑒定具有重要意義和應(yīng)用前景。
根據(jù)設(shè)計(jì)的PCR引物,選擇水貂線粒體細(xì)胞色素b基因、紫貂16s rRNA基因引物對(duì)基因組DNA進(jìn)行擴(kuò)增,得到擴(kuò)增序列,鏈接pUC57載體,構(gòu)建相應(yīng)陽性質(zhì)粒DNA分子,序列合成由濟(jì)南博尚生物技術(shù)有限公司完成。
Premix Ex Taq HS 酶(0.05 U/μL):Trkara公司;水貂、紫貂的引物和探針(見表1)分別由生工生物工程(上海)股份有限公司(Sangon)、濟(jì)南博尚生物技術(shù)有限公司(Biosune)、寶日醫(yī)生物技術(shù)(北京)有限公司(Trkara)三家公司合成。
表1 實(shí)時(shí)熒光PCR檢測引物、探針Table 1 Specific primers and probes sequences in RT-PCR
QuantStudio7 Flex實(shí)時(shí)熒光PCR儀:美國ABI公司;NanoDrop 2000c生物紫外可見分光光度計(jì):美國Thermo公司;5424R高速冷凍離心機(jī):德國Eppendorf公司;UV3 HEPA PCR反應(yīng)工作臺(tái):美國思博明科學(xué)器材公司。
實(shí)時(shí)熒光PCR反應(yīng)體系:Premix Ex Taq HS酶12.5μL,上下游引物(10μmol/L)各1μL,探針(5μmol/L)1 μL,樣品 DNA(10 μg/mL~100 μg/mL)2.0 μL,加蒸餾水補(bǔ)足至25μL。實(shí)時(shí)熒光PCR反應(yīng)參數(shù)為:95℃/10 s,1個(gè)循環(huán);95℃/5 s,52℃/10 s,72℃/34 s,40個(gè)循環(huán)。試驗(yàn)結(jié)果用QuantStudio7Flex實(shí)時(shí)熒光PCR儀進(jìn)行分析,根據(jù)SN/T 3730.1-2013《食品及飼料中常見畜類品種的鑒定方法第1部分:貂成分檢測實(shí)時(shí)熒光PCR法》[8]對(duì)結(jié)果的表述,當(dāng)Ct值≤35時(shí)判定擴(kuò)增結(jié)果為陽性。
2.1.1 特異性檢測
按照1.4的PCR反應(yīng)體系,分別以水貂、紫貂陽性質(zhì)粒分子為模板進(jìn)行熒光PCR擴(kuò)增,同時(shí)以水貂、紫貂提取的DNA作為陽性對(duì)照,以豬肉提取的DNA作為陰性對(duì)照,以滅菌水作為空白對(duì)照,對(duì)所構(gòu)建的水貂、紫貂陽性質(zhì)粒分子的PCR反應(yīng)體系進(jìn)行特異性驗(yàn)證。檢測結(jié)果表明,兩種質(zhì)粒分子和陽性對(duì)照均在40個(gè)循環(huán)內(nèi)出現(xiàn)顯著擴(kuò)增,陰性對(duì)照沒有信號(hào),表明構(gòu)建的兩種質(zhì)粒具有良好的特異性,可以代替基因組作為陽性對(duì)照來使用(圖1)。
圖1 陽性質(zhì)粒分子實(shí)時(shí)熒光PCR特異性檢測結(jié)果Fig.1 Real-time fluoresce quantitative specificity curve of positive plasmid molecule
2.1.2 靈敏度驗(yàn)證
將水貂、紫貂陽性質(zhì)粒分子進(jìn)行10倍濃度梯度稀釋,從 100 ng/μL 稀釋至 10-5ng/μL,用梯度稀釋后的質(zhì)粒做模板進(jìn)行熒光PCR擴(kuò)增,分別對(duì)靈敏度進(jìn)行驗(yàn)證,結(jié)果見圖2。
圖2 陽性質(zhì)粒分子實(shí)時(shí)熒光PCR特異性檢測結(jié)果Fig.2 Real-time fluoresce quantitative sensitivity curve of positive plasmid molecule
通常認(rèn)為,當(dāng)Ct值≤35時(shí),可判定被檢樣品為陽性,以能夠檢出樣品的最低濃度作為相應(yīng)的檢出下限,由此可見,水貂、紫貂質(zhì)粒分子的靈敏度檢出下限分別為10-4、10-3ng/μL,均具有較高的檢測靈敏度。
2.1.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
以X軸代表質(zhì)??截悢?shù)的對(duì)數(shù),Y軸代表Ct值,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(見圖3)[9]。
圖3 陽性質(zhì)粒分子實(shí)時(shí)熒光PCR標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.3 Real-time fluoresce quantitative standard curve of positive plasmid molecule
根據(jù)圖3標(biāo)準(zhǔn)曲線可知,當(dāng)質(zhì)粒濃度從100 ng/μL~10-2ng/μL時(shí),隨質(zhì)粒稀釋度的增加,對(duì)應(yīng)的Ct值也逐漸增大,且具有一定的梯度關(guān)系。兩個(gè)標(biāo)準(zhǔn)曲線的擴(kuò)增效率分別為103.211%、98.834%,且相關(guān)系數(shù)R2均大于0.99,說明在模板濃度范圍內(nèi)都具有很好的線性關(guān)系,可以用于樣品的定量分析。
將水貂、紫貂陽性質(zhì)粒分子進(jìn)行10倍梯度稀釋,從 100 ng/μL 稀釋至 10-5ng/μL,選取 Sangon、Biosune、Trkara三家公司合成的引物、探針對(duì)各濃度模板分別進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光PCR反應(yīng),對(duì)其反應(yīng)效果進(jìn)行比較分析,結(jié)果見圖4~圖5。
檢測結(jié)果表明,使用3家公司合成的引物、探針對(duì)各濃度模板進(jìn)行擴(kuò)增時(shí)均可得到標(biāo)準(zhǔn)的S型擴(kuò)增曲線,所有擴(kuò)增曲線拐點(diǎn)清楚,指數(shù)增長期明顯,基線平穩(wěn)無上揚(yáng)[10],且擴(kuò)增曲線的重復(fù)性比較好,基線起峰范圍適當(dāng),Ct值隨模板濃度下降而下降[11],不同的引物、探針?biāo)玫降臋z出限略有不同。
如圖4 所示,利用 Sangon、Biosune、Trkara合成的引物、探針分別進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光PCR反應(yīng),水貂陽性質(zhì)粒的靈敏度檢出限分別為 10-4、10-4、10-3ng/μL。顯然,Sangon與Biosune合成引物、探針的靈敏度檢出限與Trkara相比要高一個(gè)濃度梯度,且重復(fù)性和反應(yīng)效率都略優(yōu)于Trkara公司的DNA聚合酶。
由圖5 可知,利用 Sangon、Biosune、Trkara合成的引物、探針分別進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光PCR反應(yīng),紫貂陽性質(zhì)粒的靈敏度檢出限分別為 10-3、10-2、10-1ng/μL??梢姡琒angon公司合成引物、探針的靈敏度最高,且反應(yīng)效率高于其他兩家公司。
圖4 3家公司引物、探針實(shí)時(shí)熒光PCR反應(yīng)效果比較(水貂)Fig.4 Comparation of the effective of real-time fluorescence PCR reaction of primers and probes of three companies(mink)
圖5 3家公司引物、探針實(shí)時(shí)熒光PCR反應(yīng)效果比較(紫貂)Fig.5 Comparation of the effective of real-time fluorescence PCR reaction of primers and probes of three companies(Martes zibellina)
引物、探針的正確選擇是PCR反應(yīng)成功的前提,高質(zhì)量的引物、探針對(duì)PCR擴(kuò)增效率具有很大的影響[12]。完成水貂、紫貂兩種陽性質(zhì)粒分子的構(gòu)建,發(fā)現(xiàn)這兩種質(zhì)粒分子均具有靈敏度高、特異性強(qiáng)等特點(diǎn),同時(shí)對(duì)PCR反應(yīng)的關(guān)鍵技術(shù)指標(biāo)-引物、探針進(jìn)行驗(yàn)證,發(fā)現(xiàn)Sangon公司合成的引物、探針的靈敏度略優(yōu)于Biosune與TaKaRa公司。為進(jìn)行熒光PCR反應(yīng)時(shí)引物、探針的選擇提供一定的技術(shù)依據(jù),為廣大食品企業(yè)及有關(guān)監(jiān)管部門監(jiān)測評(píng)價(jià)和控制動(dòng)物制品的品質(zhì)提供新的思路和有效手段,對(duì)于食品中動(dòng)物源性成分日常鑒定和風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估具有重要的應(yīng)用價(jià)值。
[1]李欣楠,關(guān)一夫.摻假肉檢驗(yàn)技術(shù)現(xiàn)狀[J].食品研究與開發(fā),2016,37(5):189-193
[2]侯東軍,韓合敬,郝智慧,等.三重?zé)晒釶CR法鑒定食品中牛、豬、鴨3種動(dòng)物源性成分[J].畜牧與獸醫(yī),2016,48(4):45-48
[3]Kitpipit T,Sittichan K,Thanakiatkrai P.Direct-multiplex PCR assay for meat species identification in food products[J].Food Chemistry,2014(163):77-82
[4]郭鳳柳,熊蕊,劉曉慧,等.應(yīng)用PCR技術(shù)檢測摻假肉類[J].食品安全質(zhì)量檢測學(xué)報(bào),2014,5(2):541-545
[5]Taverniers I,Van Bockstaele E,De Loose M.Cloned plasmid DNA fragments as calibrators for controlling GMOs:different real-time duplex quantitative PCR methods[J].Anal Bioanal Chem,2004,378:1198-1207
[6]Kuribara H,Shindo Y,Matsuoka T,et al.Novel reference molecules for quantitation of genetically modified maize and soybean[J].J AOAC Int,2002,85(5):1077-1089
[7]蔡珊珊.商品化食品安全檢測試劑盒評(píng)價(jià)制度研究[D].福州:福建農(nóng)林大學(xué),2013
[8]中華人民共和國國家質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)檢疫總局.SN/T 3730.3-2013食品及飼料中常見畜類品種的鑒定方法第1部分:貂成分檢測實(shí)時(shí)熒光PCR法[S].北京:中國標(biāo)準(zhǔn)出版社,2014:1-5
[9]關(guān)棣鍇,胡文忠,樸永哲,等.單核細(xì)胞增生性李斯特氏菌熒光定量PCR快速檢測方法的建立及初步應(yīng)用[J].食品工業(yè)科技,2014,35(20):49-52
[10]高東,孫宏偉,劉雪清,等.水稻MOC1 mRNA TaqMan實(shí)時(shí)熒光定量RT-PCR檢測方法的建立[J].分子植物育種,2008,6(6):1197-1203
[11]劉烜,鄭文杰,趙衛(wèi)東,等.飼料中六種動(dòng)物源性成分多重PCR快速檢測方法[J].食品研究與開發(fā),2009,30(3):141-143
[12]Qu W,Shen Z,Zhao D,et al.MFEprimer:multiple factor evaluation of the specficity of PCR primers[J].Bioinformatics,2009,25(2):276-288