劉陽，劉文俠，孫力軍,施琦,邱妹,鄧旗

摘要 [目的]制備NHS基團修飾的副溶血弧菌免疫磁珠并評價其富集性能。[方法]采用偶聯率確定免疫磁珠最佳制備條件（磁珠粒徑、偶聯時間和抗體加入量），采用捕捉率確定免疫磁珠最佳富集條件（菌懸液pH、孵育時間和免疫磁珠加入量），并通過方法的特異性、靈敏度、精密度和穩(wěn)定性評價免疫磁珠富集性能。[結果] 0.1 mL N2型NHS磁珠可與0.2 mL副溶血弧菌抗血清偶聯2 h制備IMBVP，加入到副溶血弧菌菌懸液（pH 7.0～7.4）中孵育2 h，IMBVP最佳工作液體積為0.4 mL。該方法特異性好、靈敏度高（15 cfu/50 mL）、精密度高（批內變異系數和批間變異系數均在3%～6%）、穩(wěn)定性好（準確度大于91%）。[結論]自制副溶血弧菌免疫磁珠富集性能好，方法工作效率高，成本低，為副溶血弧菌高效快速檢測提供了可靠的富集手段。

關鍵詞 NHS基團；副溶血弧菌；免疫磁珠；富集

中圖分類號 S-3 文獻標識碼 A 文章編號 0517-6611（2018）06-0001-04

Preparation of Vibrio parahaemolyticus Immunomagnetic Beads Based on NHS Group and Evaluation of Enrichment Capacity

LIU Yang1，LIU Wenxia1，SUN Lijun2 et al （1.National Marine Products Quality Supervision & Inspection Center，Zhanjiang，Guangdong 524000；2.College of Food Science，Guangdong Ocean University，Zhanjiang，Guangdong 524000）

Abstract [Objective] The aim was to prepare Vibrio parahaemolyticus immunomagnetic beads （IMBVP） based on NHS group and evaluate the enrichment capacity.[Method] The best coupling conditions were decided by conjugate ratio，like conditions range from magnetic beads particle diameter，coupling time and the adding amount of antibody.The best enrichment conditions were decided by capture rates，like conditions range from pH，incubation time and the adding amount of IMBVP.The enrichment capacity of IMBVP was evaluated according to specificity，sensitivity，precision and stability.[Result] The IMBVP was prepared by chemical bond，which combined 0.1 mL of NHS bead with size N2 and 0.2 mL of Vibrio parahaemolyticus antiserum.IMBVP was placed into the bacterial suspension which pH was 7.0-7.4.Volume addition of was IMBVP 0.4 mL.They were incubation 2 h together.The method was involved in some advantages，high specificity，sensitivity and accuracy.The detection limit was 15 cfu/50 mL.The CVs of intra and inter assay were between 3% and 6%.The accuracy was greater than 91%.[Conclusion] The above results demonstrate that homemade IMBVP has good enrichment performance.Experiment results show that it is an effective method，convenience，low cost and quickness.

Key words NHS；Group Vibrio parahaemolyticus；Immunomagnetic beads；Enrichment

免疫磁珠分離技術是近年發(fā)展起來的一項新的免疫學技術[1]。根據免疫學原理，副溶血性弧菌抗體在適當的條件下與磁珠偶聯后，可與副溶血性弧菌發(fā)生特異性結合，在外加磁場的作用下，達到快速分離和富集目標菌的效果。這種高特異性方法可以在較為復雜的環(huán)境中有效地收集、濃縮大量樣品中的少量目標菌，從而提高檢測效率。目前，已有學者對副溶血性弧菌免疫磁珠的制備方法進行了研究[2-4]，但存在3個問題：一是采用國外磁珠Dynabeads效果較好，但是價格昂貴，超出國內磁珠價格10倍；二是常用磁珠類型為羧基磁珠或氨基磁珠，在連接抗體前需要對磁珠進行活化，并且磁珠與抗體偶聯的時間較長，一般需要過夜，大大影響了免疫磁珠制備的效率；三是現有研究主要是對1 mL樣品液進行富集，沒有體現免疫磁珠應用優(yōu)勢。

基于以上問題，筆者選用NHS磁珠作為試驗材料，與副溶血性弧菌抗血清偶聯制備免疫磁珠（IMBVP），優(yōu)化了免疫磁珠制備條件和孵育條件，確定了最佳制備和使用方案，并通過特異性、靈敏性和穩(wěn)定性試驗對副溶血弧菌免疫磁珠富集性能進行了評價，以期為構建副溶血弧菌高效快速的檢測方法奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 材料 副溶血性弧菌（ATCC33847）、創(chuàng)傷弧菌（ATCC27562）、溶藻弧菌（ATCC 17749）、金黃色葡萄球菌（ATCC 25923）、單增李斯特菌（ATCC 19115）、銅綠假單胞菌（ATCC9027）、沙門氏菌（CMCC50094）、志賀氏菌（CMCC51572）；NHS磁珠（HRCZ-03N300粒徑為300 nm，以下縮寫為“N1”、HRCZ-03N400粒徑為1 μm，以下縮寫為“N2”），洛陽惠爾納米科技有限公司。

1.2 方法

1.2.1 免疫磁珠的制備。①取0.1 mL NHS磁珠，加入0.5 mL洗滌緩沖液（PBST：0.1 mol/L PBS溶液含0.05%吐溫-20，pH 7.4）洗滌3次，置于磁分離器中，去上清；②取副溶血弧菌K Ⅱ 型抗血清（以下簡稱“抗血清”）稀釋液，偶聯緩沖液（MEST：15 mmol/L MES，含0.05%吐溫-20，pH 6.0）調節(jié)體積至0.4 mL，混合液室溫振蕩反應后，置于磁分離器取上清，檢測偶聯率。洗滌緩沖液洗滌3次，置于磁分離器中，去上清?？捡R斯亮藍測蛋白法測定上清液蛋白質含量，計算抗體蛋白與磁珠偶聯率。③加入封阻緩沖液（PBST含 2% BSA）渦旋30 s，將離心管于室溫下振蕩反應2 h；④洗滌后將制備好的免疫磁珠（IMBVP）存放于保存緩沖液（PBST含0.02%NaN3、1%BSA）中，4 ℃保存待用。

偶聯率=血清蛋白加入量-上清液蛋白剩余量血清蛋白加入量×100%

1.2.2 免疫磁珠對目標菌株的捕獲。①將IMBVP去上清，加入1 mL副溶血性弧菌菌懸液，37 ℃振蕩反應。②取0.1 mL上清液涂布弧菌顯色培養(yǎng)基，去其他上清液。③取0.5 mL洗滌緩沖液洗滌IMBVP 3次，置于磁分離器中，去上清。④加入0.3 mL PBST混勻后，分別取0.1 mL混合液涂布3個弧菌顯色培養(yǎng)基，37 ℃培養(yǎng)18～24 h計數，取3個板菌落數之和。計算原液菌落數和IMBVP捕獲菌落數，計算捕獲率。同時以無菌生理鹽水代替菌懸液作為陰性對照。

捕獲率（X）=富集到的菌落數（cfu/0.1 mL）原始菌落數（cfu/0.1 mL）×100%

1.2.3 磁珠制備條件的優(yōu)化。

1.2.3.1 磁珠型號。比較N1和N2 2種型號磁珠偶聯情況。

1.2.3.2 偶聯時間。磁珠與抗血清偶聯不同時間（1.0、1.5、2.0、2.5、3.0 h），比較偶聯率，確定最佳偶聯時間。

1.2.3.3 抗體加入量。分別比較不同含量抗血清（0.1、0.2、0.3、0.4 mL ）與磁珠的偶聯率，確定最佳血清加入量。

1.2.4 免疫磁珠捕獲目標菌條件的優(yōu)化。

1.2.4.1 捕獲時間。比較免疫磁珠與目標菌在不同孵育時間情況下（0.5、1.0、1.5、2.0、3.0 h）對目標菌的捕獲率，確定IMBVP捕獲目標菌最佳時間。

1.2.4.2 孵育溶液pH。比較不同孵育環(huán)境中（pH分別為6.0、6.5、7.0、7.5、8.0）免疫磁珠對目標菌的捕獲情況。

1.2.4.3 免疫磁珠使用量。比較不同含量IMBVP（0.10、0.15、0.20、0.25、0.30 mL）對等濃度目標菌的捕獲率，確定最佳免疫磁珠使用量。

1.2.5 免疫磁珠捕獲性能的測定。

1.2.5.1 特異性。采用IMBVP分別分離副溶血性弧菌、霍亂弧菌、溶藻弧菌、金黃色葡萄球菌、單增李斯特菌、銅綠假單胞菌、沙門氏菌、志賀氏菌，對于副溶血性弧菌疑似菌落進行生化鑒定試驗，比較IMBVP對不同菌株的富集情況，評價其特異性。

1.2.5.2 靈敏性。將IMBVP分別加入到等濃度、不同體積的副溶血性弧菌菌懸液中（1、10、50 mL）進行富集檢測。設置傳統菌落計數法作為對照試驗。計算捕捉率確定IMBVP檢測副溶血性弧菌的最低檢測限。

1.2.5.3 精確度。將IMBVP分別加入濃度范圍為<30 cfu和30～300 cfu副溶血弧菌菌懸液中，最佳條件下進行批內重復和批間重復（n=5），以其批內變異系數表示批內誤差，批間變異系數表示批間誤差，系數范圍在低濃度點時應<15%。2個變異系數表示方法的精確程度。

1.2.5.4 準確度。計算多次試驗（n=15）結果準確度。準確度（%）=1-E%。其中E%表示測定結果的相對誤差。

2 結果與分析

2.1 免疫磁珠制備最佳條件的確定

2.1.1 磁珠型號對磁珠偶聯能力的影響。采用2個型號免疫磁珠加入到等濃度的副溶血弧菌菌懸液中，N1型和N2型免疫磁珠對副溶血弧菌的捕捉率為（50.27±2.39）%和（74.23±1.77）%。因此，確定N2型磁珠作為后續(xù)試驗磁珠，由N2型磁珠制備的免疫磁珠為IMBVP。

2.1.2 偶聯時間對磁珠偶聯能力的影響。結果表明，時間對偶聯率的影響較大。隨著磁珠與抗血清偶聯時間的延長，磁珠結合抗血清的能力增強，偶聯2 h后偶聯率達到最大值（79.73±0.79）%（圖1）。超過2 h后，磁珠與抗血清偶聯率變化幅度較小，并有微弱的降低。這說明長時間的振蕩會影響磁珠與抗血清的化學鍵結合。因此，選取2 h為磁珠與抗血清偶聯最佳時間。

2.1.3 磁珠對抗血清承載量的確定。結果表明，磁珠對抗血清具有一定的承載能力。隨著抗血清含量增加，與磁珠偶聯趨于穩(wěn)定，當抗血清添加量為0.2 mL時，偶聯率最高可達（90.82±1.79）%（圖2）。當超過磁珠承載量后，溶液中沒有結合的血清含量增多，偶聯率下降，浪費材料。因此，確定0.1 mL NHS磁珠可與0.2 mL抗血清進行偶聯制備IMBVP。

2.2 免疫磁珠捕獲目標菌株最佳條件的確定

2.2.1 捕獲時間對IMBVP捕獲能力的影響。結果表明，隨著免疫磁珠與目標菌孵育時間的延長，捕獲率明顯提高。當孵育時間達到1.5 h時，捕捉率達到最高，為（88.22±2.68）%。時間延長至2.0 h，捕捉率基本穩(wěn)定。但當孵育時間超過3.0 h時，捕捉率降低。根據原理，孵育時間過長會降低免疫磁珠的特異性，環(huán)境中的雜菌可能會與免疫磁珠相結合，導致捕捉率下降。因此，免疫磁珠與目標菌的孵育時間應在最佳時間范圍內（圖3）。

2.2.2 孵育液pH確定。將副溶血弧菌菌懸液加入到免疫磁珠工作液中，分別用無菌1 mol/L鹽酸或氫氧化鈉調節(jié)pH至6.0～8.0。結果表明，孵育環(huán)境對免疫磁珠的捕獲能力影響很大，酸性或堿性環(huán)境中捕獲率明顯下降。IMBVP與目標菌孵育最佳pH為7.0～7.5（圖4）。

2.2.3 免疫磁珠工作體積的確定。在以上條件優(yōu)化過程中，免疫磁珠使用量均為0.5 mL。雖然捕捉效果較好，但是無法確定免疫磁珠最佳工作體積。為了避免浪費，應根據目標菌的捕捉情況確定最佳工作液體積。因此，該部分測試菌落數分為2個部分<30 cfu和30～300 cfu。結果表明，當菌落數<30 cfu時，添加0.2 mL免疫磁珠得到的菌落數捕獲率高于90%。當菌落數為30～300 cfu時，免疫磁珠添加量需要增大到0.4 mL（圖5）。根據該試驗結果，試驗人員在使用過程中可以根據菌懸液濃度來選擇免疫磁珠的添加量，為后續(xù)免疫磁珠捕獲性能評價試驗做準備。

2.3 免疫磁珠捕獲性能的評價

2.3.1 特異性。將最優(yōu)條件下制備的IMBVP分別加入到8種標準菌株菌懸液的稀釋液中進行捕獲試驗。結果表明，IMBVP只捕獲副溶血性弧菌，其他菌落在弧菌顯色培養(yǎng)基中不生長（表1）。因此，自制副溶血弧菌免疫磁珠具有高特異性。

2.3.2 靈敏性。將最優(yōu)條件下制備的IMBVP加入到等濃度、不同體積的副溶血性弧菌菌懸液中，結果表明當IMBVP加入到菌懸液中，分離能力會受到樣品體積的影響，特別是當菌懸液濃度較低時，捕捉率會出現大幅度下降，相應得到的相對誤差會增大。由表2可知，使用免疫磁珠法的準確性要高于傳統計數法。當待測樣品體積為1 mL時，2種方法均適用。當待測樣品體積為10 mL時，免疫磁珠富集目標菌后檢測的準確率遠遠高于傳統計數法。當待測樣品體積為50 mL時，傳統計數法的結果已嚴重偏離。根據結果可以得出，免疫磁珠富集檢測目標菌靈敏度高，檢測限可達15 cfu/50 mL。

2.3.3 精密度。將制備好的IMBVP在最優(yōu)條件下富集副溶血弧菌，通過比較捕獲率的批內變異系數和批間變異系數確定方法的精密度（表3）。結果表明，自制免疫磁珠對副溶血弧菌的檢測精密度高，批內變異系數和批間變異系數均在3%～6%。當菌落數小于30 cfu/mL時，批內變異系數和批間變異系數均在標準之內，但相對于其他濃度的變異系數稍大。原因是由于菌落數過少時，基數過小，相對誤差增大，使得方差變化劇烈。

2.3.4 準確性。將制備好的IMBVP在最優(yōu)條件下富集副溶血弧菌，通過考察多次檢測結果與真實值之間接近的程度來確定方法的準確性。結果表明，當副溶血弧菌菌懸液濃度在30～300 cfu/mL時，IMBVP檢測準確度為（94.36±2.18）%；當濃度<30 cfu/mL時，IMBVP檢測準確度為（91.45±4.38）%。綜合來看，自制免疫磁珠對副溶血弧菌的檢測有較好的準確性。

3 結論與討論

免疫磁珠在制備過程中通常會受到磁珠類型[5-6]和制備條件[7-8]的影響。免疫磁珠的制備實質上是磁珠表面的活性基團與抗體外部基團的結合過程[9]?；钚曰鶊F包括羧基、氨基、巰基、甲苯磺酸基和環(huán)氧基等[10]。為了降低非特異性結合，研究人員又研制了Protein A/G磁珠。但是Protein A/G磁珠在使用過程中會出現免疫反應，形成背景目標蛋白[11]。鏈霉親和素磁珠也是目前常用磁珠之一[12]。但是鏈霉親和素磁珠在使用前要將抗體進行生物素化。生物素化過程較為繁瑣，素化后要對素化效果進行檢測，過程繁瑣，需要專業(yè)人員進行操作。NHS磁珠是近年來新開發(fā)的基于NHS基團磁珠，其磁核為納米四氧化三鐵，接有羧基磁珠殼層硅基，然后再連接羧基，最后NHS基團修飾。NHS基團與抗體可形成較為牢固的共價鍵連接，不易解離。這是該研究采用NHS磁珠作為基礎材料的重要原因。

制備條件是成功制備免疫磁珠的重要因素。免疫磁珠的制備條件主要受到磁珠粒徑大小[13]、溫度[14]、活化劑、時間[15]、pH[16]、抗體添加量等因素的影響。筆者所在課題組自2011年開始對免疫磁珠的制備進行研究[17-20]，根據團隊研究成果，參考磁珠類型及成品磁珠說明書建議，該研究主要以磁珠型號、時間和添加量作為免疫磁珠制備的優(yōu)化因素，經試驗確定制備方案，即采用0.1 mL HRCZ-03N400型NHS磁珠與0.2 mL抗血清進行偶聯2 h可制備副溶血弧菌免疫磁珠。免疫磁珠對副溶血弧菌富集條件的優(yōu)化也是能夠獲得良好性能的重要保障。經研究，確定了最佳孵育條件，在pH 7.0～7.4菌懸液中添加0.4 mL免疫磁珠孵育2 h。

通過對免疫磁珠制備條件的優(yōu)化和捕獲目標菌株條件的優(yōu)化，可獲得高特異性免疫磁珠，其最低檢測限已達15 cfu/50 mL，與團隊前期研究成果相比提高了8倍[17]，突破了傳統計數法的局限，大大提高了檢測方法的靈敏度、準確度和精密度。另外，該方法制備免疫磁珠的時間為4 h，與其他類型免疫磁珠制備方法相比，可減少23 h，大大提高效率。該制備方法成本較低，是國外產品價格的1/10。該研究自主制備的副溶血弧菌免疫磁珠已申請發(fā)明專利，并為免疫磁珠試劑盒的研制奠定了基礎。

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