趙玉萍,柴劍波,高 瀟,于 明,趙永厚△
(1. 黑龍江神志醫(yī)院,哈爾濱 150036; 2. 黑龍江神志醫(yī)院博士后科研工作站,哈爾濱 150036;復旦大學博士后中西醫(yī)結(jié)合流動站,上海 200433)
谷氨酸-多巴胺(Glu-DA)神經(jīng)遞質(zhì)系統(tǒng)紊亂是精神分裂癥發(fā)病的重要機制[1]。中醫(yī)神志病學認為,精神分裂癥病位在腦,核心病機為痰瘀互結(jié)、腦神失調(diào),據(jù)此化裁愈癲湯乃黑龍江神志醫(yī)院院內(nèi)制劑經(jīng)驗方,臨證取得確切療效。本研究以谷氨酸(Glu)-多巴胺(DA)神經(jīng)遞質(zhì)系統(tǒng)為切入點,觀察“消痰化瘀”之愈癲湯對精神分裂癥模型大鼠腦組織NO活性、MDA含量及nNOSmRNA、DA、Glu表達情況的影響,為闡明其干預精神分裂癥的作用機制奠定研究基礎(chǔ)。
48只雄性成年SD大鼠(300±20 g),購自黑龍江中醫(yī)藥大學藥物安全性評價中心(合格證號SCXK(黑)2013-004)。
愈癲湯組成:制半夏15 g,制天南星15 g,牽牛子10 g,三棱15 g,莪術(shù)15 g,檳榔15 g,大黃10 g,茵陳蒿15 g。將1劑上述飲片放入煎藥器皿中加12倍量清水浸泡2 h,武火煎煮10 min,文火再煎煮30 min后過濾煎液,之后再加8倍量水武火煎煮10 min,文火再煎煮30 min過濾煎液,濾除藥渣后將2次煎煮藥液合并加熱濃縮至111 ml后,藥液濃度為0.92 g/ml。
利培酮片:江蘇恩華藥業(yè)股份有限公司(生產(chǎn)批號20120501),購自黑龍江神志醫(yī)院藥局。將4 mg利培酮片研成粉末,加111 ml蒸餾水后恒溫水浴震蕩20 min,配制成0.036 mg/ml的利培酮懸濁液。地卓西平(MK-801)注射液:取MK-801(美國SIGMA公司生產(chǎn))1 mg溶于1 ml氯化鈉溶液中,配制成濃度為1 mg/ml儲備藥液,造模時將儲備藥液稀釋為0.1 mg/ml注射液。
主要試劑:神經(jīng)型一氧化氮試劑盒(南京建成A012);MDA測定試劑盒(南京建成A003-1);高純總RNA快速提取試劑盒(中國BioTeke RP1201)。主要儀器:ELX-800型酶標儀(美國BIOTEK公司);UV752型紫外可見光分光光度計(湖南湘儀);Life Express-PCR儀(杭州BIOER);凝膠成像分析儀(北京六一WD-9413B)及LC-6 A高效液相色譜儀(日本島津)。
實驗大鼠自由攝食水,適應性飼養(yǎng)1周,應用計算機軟件為每只動物自然序號賦予1個3位隨機數(shù),按隨機數(shù)大小分入空白組、模型組、利培酮組及愈癲湯組,每組各12只。
除空白組外,各組大鼠按照0.1 mg/kg體質(zhì)量劑量腹腔注射0.1 mg/mLMK-801注射液,注射位置選擇大鼠左或右(每日交替)下側(cè)腹腔略靠近外側(cè)1/3處;空白組大鼠應用0.9%氯化鈉溶液行相同方法腹腔注射,連續(xù)14 d[1-3]。
于實驗開始第15天進行干預性給藥,空白組、模型組給予蒸餾水灌胃(1 ml/100 g),對照組及治療組大鼠于模型制備成功后分別給予利培酮懸濁液灌胃(0.5 ml/100 g),愈癲湯水煎劑灌胃(1 ml/100 g),持續(xù)灌胃14 d。
2.4.1 應用分光光度計測定額前腦組織NO活性、MDA含量 加入9倍體積PBS,將額前腦組織打碎后用液氮反復凍融3次,應用12000 r/min離心10 min,取上清液低溫冷凍待用。通過蛋白質(zhì)定量測定制備標準曲線,參照試劑盒說明書操作并計算NO活性和MDA含量。
2.4.2 應用PCR法測定額前腦組織nNOSmRNA的表達 應用RNA試劑盒提取樣本總RNA,將得到的RNA樣本進行反轉(zhuǎn)錄,對上步實驗所得的RNA樣本進行反轉(zhuǎn)錄以得到對應的cDNA,建立PCR反應體系,將引物按照設(shè)計的PCR反應程序操作,之后經(jīng)電泳過后利用凝膠成像系統(tǒng)對得到的凝膠進行拍照,并應用凝膠圖像處理系統(tǒng)分析光密度值得出結(jié)果。
2.4.3 HPLC-ECD法測定額前腦組織Glu、DA表達情況 選用HPLC-ECD將冷凍的額前腦組織加1 mL預冷的95%乙醇,12000 r/min離心3 min,然后取5 μL樣品于離心管中,加入50 μL衍生工作液渦旋震蕩1 min,取樣20 μL注入色譜儀,記錄色譜圖計算峰面積,得出Glu、DA表達情況。
2.5.統(tǒng)計學方法
表1顯示,與空白組比較,模型組NO活性、MDA含量及nNOSmRNA表達皆明顯升高(P<0.01,P<0.05);而治療組能顯著降低NO活性、MDA含量及nNOSmRNA表達(P<0.05),且在降低MDA方面明顯優(yōu)于對照組(P<0.05)。
表1 各組大鼠額前腦組織NO活性、MDA含量、nNOSmRNA表達比較
注:與空白組比較:*P<0.05,**P<0.01;與模型組比較:▲P<0.05;與對照組比較:■P<0.05
3.2.各組大鼠額前葉組織Glu、DA表達比較
表2顯示,與空白組比較模型組Glu表達程度明顯降低,DA表達明顯升高(P<0.05);而治療組能顯著升高Glu的表達,降低DA的表達,且明顯優(yōu)于對照組(P<0.05)。
表2 各組大鼠額前腦組織Glu、DA表達情況比較
注:與空白組比較:*P<0.05;與模型組比較:▲P<0.05;與對照組比較:■P<0.05
現(xiàn)代醫(yī)學認為,精神分裂癥的發(fā)病與Glu神經(jīng)元功能障礙及DA功能亢進密切相關(guān),且精神分裂癥發(fā)病極易體現(xiàn)出二者同時出現(xiàn)所相關(guān)聯(lián)的Glu-DA神經(jīng)遞質(zhì)系統(tǒng)紊亂。一般認為,腦組織中Glu和DA是一對具有相互調(diào)節(jié)作用的神經(jīng)遞質(zhì),精神分裂癥患者腦組織內(nèi)特別是額前組織中存在Glu能神經(jīng)元功能不足,并由此導致基底神經(jīng)節(jié)過度釋放DA,經(jīng)由紋狀體-丘腦-皮質(zhì)通路刺激皮質(zhì)Glu能神經(jīng)元,結(jié)果形成正反饋而最終導致Glu的過度釋放形成神經(jīng)毒性。Glu神經(jīng)毒性可導致NO信號通路及氧化應激反應的激活,基于NO信號通路角度,Glu神經(jīng)毒性可以使NMDA受體激活增多,致細胞內(nèi)游離Ca+濃度增加,使nNOS從質(zhì)膜轉(zhuǎn)移到細胞質(zhì)進而生成NO,NO進而反作用于Glu進一步導致Glu的過度釋放加重神經(jīng)毒性。鑒于Glu與DA的互相調(diào)節(jié)作用,其可以使DA病理性的加速釋放[4-9]。而基于氧化應激反應角度,Glu神經(jīng)毒性可以導致MDA含量升高,致DA神經(jīng)元出現(xiàn)神經(jīng)毒性反應甚則凋亡[10]。故精神分裂癥可見Glu神經(jīng)元功能障礙及DA功能亢進同時出現(xiàn),具體表現(xiàn)為Glu-DA神經(jīng)遞質(zhì)系統(tǒng)紊亂。
中醫(yī)神志病學認為,精神分裂癥屬于中醫(yī)“癲狂病”范疇,其所具有的潛伏期長、癥狀隱匿等特殊的發(fā)病特點,使得臨證中痰瘀互結(jié)型患者尤為多見,在病理特點上體現(xiàn)出典型的痰凝血瘀證候特征。因此,本病的治療亦應從痰瘀入手,以消痰化瘀、破結(jié)行氣為綱。據(jù)此,擬愈癲湯方以3組藥物分領(lǐng)滌痰、祛瘀、行氣三岐。半夏、南星燥濕化痰,消痞散結(jié);牽牛子性寒味苦,消飲滌痰,三者相伍則祛痰之功卓著。三棱、莪術(shù)破血逐瘀而行氣,檳榔行氣消積,三者相伍使瘀行氣暢。同時牽牛子得檳榔之助,則氣順而痰自消,行氣之功增強;檳榔得牽牛子之輔,破氣之功更著。瘀久必化熱,茵陳蒿利濕清熱,亦可得大黃利濕之助。且方中大黃既可攻積瀉下,給痰瘀之邪以出路,又兼化瘀之力。綜觀全方,痰瘀同治、氣血兼調(diào)則必使痰濁漸去而瘀血漸消,腦竅再現(xiàn)清靈通利之功。
研究發(fā)現(xiàn),消痰活血之愈癲湯可顯著抑制精神分裂癥模型大鼠額前腦組織內(nèi)MDA含量、NO活性及nNOSmRNA的表達,表現(xiàn)出對MK-801所致精神分裂癥模型大鼠額前腦組織內(nèi)Glu及DA表達的正性調(diào)節(jié)作用,發(fā)揮了顯著穩(wěn)定Glu-DA神經(jīng)遞質(zhì)系統(tǒng)的作用,提示愈癲湯可能通過阻斷NO信號通路及氧化應激反應消除Glu神經(jīng)毒性,維持Glu-DA神經(jīng)遞質(zhì)系統(tǒng)的穩(wěn)定。
參考文獻:
[1] 朱德曉. MK-801致幼鼠額葉皮層神經(jīng)元興奮性降低和成年后社會交往缺陷的機制研究及帕潘立酮的干預作用[D].濟南:山東大學,2016.
[2] 韓岱. MK-801處理青春期大鼠制作精神分裂癥認知損傷模型和非經(jīng)典抗精神病藥物治療機制研究[D].上海:復旦大學,2013.
[3] 劉衛(wèi)青. 不同給藥方式下MK-801誘導的精神分裂癥核心癥狀大鼠模型研究[D].長沙:中南大學,2012.
[4] 劉勇,唐亞梅,蒲惟丹,等. MK-801誘導的精神分裂癥發(fā)育模型大鼠腦組織DA,DOPAC,Glu和GABA濃度的變化[J]. 中南大學學報:醫(yī)學版,2011,36(8):712-719.
[5] 武春艷,王祖承,江三多. 神經(jīng)營養(yǎng)素-3基因甘氨酸/谷氨酸多態(tài)性與精神分裂癥的相互關(guān)系[J]. 中華精神科雜志,2000,33(4):207-209.
[6] 劉勇. MK-801重復處理圍產(chǎn)期或成年期大鼠建立的精神分裂癥模型效度研究及致認知損害的KCC2機制初探[D].長沙:中南大學,2009.
[7] 杜愛林,徐春陽,李爽,等. 急性酒精中毒對老齡大鼠紋狀體NO和nNOS及學習記憶的影響[J]. 醫(yī)學信息:手術(shù)學分冊,2007,20(8):708 -710.
[8] 史榕荇. 電針對慢性應激模型大鼠HPA軸-Glu-NMDA受體-NO路徑調(diào)節(jié)作用機理的研究[D].北京:北京中醫(yī)藥大學,2007.
[9] 盧敏. 褪黑素對谷氨酸鈉致癇大鼠海馬內(nèi)5-羥色胺及一氧化氮含量的影響[D].武漢:華中科技大學,2006.
[10] 趙瑾. 首發(fā)精神分裂癥患者外周血氧化應激及認知功能的研究[D].新鄉(xiāng):新鄉(xiāng)醫(yī)學院,2016.