王 羽 , 董文龍 , 王 巍 , 盛宇軒 , 張喜慶 , 馬紅霞 , 高云航
(吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科學(xué)技術(shù)學(xué)院 , 吉林 長春 130118)
多殺性巴氏桿菌病是動物臨床中的常見病, 其抗原性及宿主特異性的不同, 造成臨床動物發(fā)病癥狀也大不相同,可以引發(fā)豬肺疫,牛出血性敗血癥,禽霍亂,給養(yǎng)殖戶帶來了巨大的經(jīng)濟損失。
動物源性巴氏桿菌的耐藥性倍受人們關(guān)注,細(xì)菌對某一類具有相同或是相似結(jié)構(gòu)抗菌藥物耐藥的產(chǎn)生,可能是抗菌藥物新作用位點的產(chǎn)生或是作用位點的改變[1]。但隨著抗菌藥物的不合理應(yīng)用,特別是將抗菌藥物以次治療劑量添加到飼料中,導(dǎo)致多殺性巴氏桿菌的耐藥率不斷提高,耐藥范圍更廣,多重耐藥的現(xiàn)象越來越多。因此對動物治療要合理用藥、合理用量,避免耐藥性的產(chǎn)生。
整合子是細(xì)菌基因組中一種介導(dǎo)耐藥基因轉(zhuǎn)移的專座元件,其功能與細(xì)菌耐藥產(chǎn)生與轉(zhuǎn)移密切相關(guān)[2-4]。本試驗通過微量稀釋法藥敏試驗、耐藥基因及其整合子擴增確定了該18株多殺性巴氏桿菌耐藥性及其Ⅰ型整合酶攜帶率。
1.1 菌種 18株多殺性巴氏桿菌由吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科學(xué)技術(shù)學(xué)院預(yù)防獸醫(yī)學(xué)研究室分離保存。12株牛源多殺性巴氏桿菌分離自吉林省不同肉牛養(yǎng)殖場患有肺炎的肺臟組織(分別命名為Pa1,Pa2,Pa3,Pa4,Pa5,Pa6,Pa7,Pa8,Pa9,Pa10,Pa11,Pa12),6株豬源多殺性巴氏桿菌分自吉林省不同豬場患有肺炎的肺臟組織(分別命名為Pm1,Pm2,Pm3,Pm4,Pm5,Pm6)。
1.2 主要試劑 胰蛋白胨大豆肉湯培養(yǎng)基(TSB),購自青島高科園海博生物技術(shù)有限公司;胎牛血清,購自北京元亨圣馬生物技術(shù)研究所;ExTaq酶、dNTP、DNA Marker 2 000、6×Ex Buffer等,購自TaKaRa公司,細(xì)菌基因組提取試劑盒、膠回收試劑盒等,購自上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司;質(zhì)粒小量提取試劑盒,購自北京索萊寶科技有限公司;引物由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成。
1.3 MIC試驗 將多殺性巴氏桿菌接種到TSB液體培養(yǎng)基中(含50 mL/胎牛血清),37 ℃水平搖床170 r/min培養(yǎng)18 h。將多殺性巴氏桿菌菌液進行倍比稀釋,選取濃度為1×106CFU/mL的菌液作為標(biāo)準(zhǔn)液進行抗菌藥物敏感性試驗。
參考CLSI動物源細(xì)菌藥敏試驗標(biāo)準(zhǔn),分別以敏感(S)、中介(I)和耐藥(R)3種形式對藥物敏感性進行分析。
1.4 DNA提取及PCR鑒定 采用Primer(版本為5.0)軟件根據(jù)GenBank已登陸的四環(huán)素類耐藥基因tetB、tetG、tetK、tetO、tetQ、tetB及Ⅰ型整合酶Int I序列進行引物的設(shè)計。引物序列送上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司進行合成。
表1 Ⅰ型整合酶和四環(huán)素類引物序列及預(yù)計大小
挑取單個菌落接種于TSB液體培養(yǎng)基中(含50 mL/胎牛血清),置于37 ℃水平搖床(170 r/min)增菌培養(yǎng)。取1.6 mL菌液12 000 r/min離心,棄上清,參考細(xì)菌基因組提取試劑盒說明書提取分離菌株DNA。
Ⅰ型整合酶PCR反應(yīng)條件如下:94 ℃預(yù)變性5 min,94 ℃變性1 min,退火57 ℃ 1 min,72 ℃延伸1 min,30個循環(huán),72 ℃延伸10 min;四環(huán)素類耐藥基因PCR反應(yīng)條件如下:94 ℃預(yù)變性5 min,94 ℃變性30 s,退火(6種耐藥基因的退火溫度參照表1)30 s,72 ℃延伸1 min,30個循環(huán),72 ℃延伸10 min;PCR反應(yīng)結(jié)束后,擴增產(chǎn)物用瓊脂糖凝膠電泳檢測。
對PCR產(chǎn)物進行膠回收純化,純化產(chǎn)物和pMD-18T連接過夜,將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化到E.coliDH5α 感受態(tài)細(xì)胞,按照試劑盒說明書提取質(zhì)粒進行驗證,并送至上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司測序。將測序結(jié)果與GenBank中已知基因序列進行Blast比對。
2.1 MIC試驗結(jié)果分析 18株多殺性巴氏桿菌對8種抗生素的耐藥情況見表2。
表2 多殺性巴氏桿菌耐藥結(jié)果
2.2 四環(huán)素耐藥基因擴增結(jié)果
2.2.1tetA耐藥基因擴增結(jié)果 采用PCR技術(shù)對tetA耐藥基因進行擴增,18株P(guān)m均未檢測到tetA耐藥基因。
2.2.2tetB耐藥基因擴增結(jié)果 菌株P(guān)m1、Pm3、Pm4與Pa11擴增出200 bp左右的片段,該基因片段測序后使用Blast對其堿基序列進行分析,其結(jié)果顯示,所擴增的tetB相應(yīng)序列與GenBank上已登錄的耐藥基因tetB(登錄號NG-048170.1)序列同源性為100%。結(jié)果如圖1。
2.2.3tetG耐藥基因擴增結(jié)果 18株P(guān).multocida均擴增出約400 bp大小的片段,根據(jù)Blast對比結(jié)果可知,與GenBank上已登錄的耐藥基因tetG(登錄號NG-051907.1)同源性為93%,結(jié)果如圖2。
圖1 P.multocida的tetB 基因擴增結(jié)果
圖2 P.multocida的tetG基因擴增結(jié)果
2.2.4tetK耐藥基因擴增結(jié)果 菌株P(guān)a1、Pa2、Pm1、Pm2、Pm3擴增出200 bp左右的片段,該基因片段測序后使用Blast對其堿基序列進行分析,其結(jié)果顯示,所擴增的tetK相應(yīng)序列與GenBank上已登錄的耐藥基因tetK(登錄號KR362248.1)序列同源性為100%。結(jié)果如圖3。
圖3 P.multocida的tetK 基因擴增結(jié)果
2.2.5tetO耐藥基因擴增結(jié)果 僅Pm10擴增出約200 bp大小片段,與預(yù)期片段大小相符,根據(jù)Blast對比結(jié)果可知,菌株P(guān)m10擴增序列與GenBank上已登錄的耐藥基因tetO(登錄號KR362248.1)同源性為100%。結(jié)果如圖4。
2.2.6 tetQ耐藥基因擴增結(jié)果 菌株P(guān)a2、Pa4、Pa5、Pm1、Pm2約200 bp的片段,將測序結(jié)果與GenBank中已知基因序列進行Blast比對,5株菌株擴增序列已登錄的耐藥基因tetQ(GQ343142.1)序列同源性達(dá)到98%。結(jié)果如圖5。
圖4 P.multocida的tetO基因擴增結(jié)果
圖5 P.multocida的tetQ 基因擴增結(jié)果
2.3 Ⅰ型整合酶擴增結(jié)果 菌株均擴增出280 bp左右的片段,測序結(jié)果為Pa1、Pa2、Pa12與GenBank登錄的Ⅰ型整合酶(MF168945.1)同源性均為100%。Pa6為99%。結(jié)果如圖6。
圖6 Ⅰ型整合酶基因擴增結(jié)果
研究表明,豬源多殺性巴氏桿菌在氯霉素、痢特靈、羧芐青霉素、鏈霉素、丁胺卡那霉素等抗生素中對氯霉素、羧芐青霉素、鏈霉素、卡那霉素均耐藥[5]。孔令聰分離得到12株牛源多殺性巴氏桿菌,耐藥檢測分析顯示,此12株菌對新諾明、鏈霉素高度耐藥[6]。在本研究中,試驗結(jié)果顯示,18株不同源的多殺性巴氏桿菌對氯霉素的耐藥率為83.33%,對四環(huán)素、強力霉素與慶大霉素的耐藥率為50%~61.11%,對氧氟沙星、卡那霉素、恩諾沙星與氟苯尼考的耐藥率為27.78%~38. 89%。18株不同來源的多殺性巴氏桿菌表現(xiàn)出不同藥物的敏感性從而為指導(dǎo)臨床科學(xué)用藥提供依據(jù)。
四環(huán)素類藥物為廣譜抗生素, 廣泛用于臨床治療, 并常被用做動物促生長劑,四環(huán)素類藥物產(chǎn)生耐藥性的機制主要有核糖體保護作用、外輸泵作用及產(chǎn)生鈍化酶等[7]。在本研究中未檢測到tetA耐藥基因;22.22%多殺性巴氏桿菌攜帶tetB耐藥基因,5.56%多殺性巴氏桿菌攜帶tetO耐藥基因;tetK與tetQ兩種耐藥基因的攜帶率均為27.28%,而對于tetG的攜帶率為100%。
根據(jù)整合酶序列不同,整合子可分為6型,以Ⅰ型整合酶最為常見[8-9]。在實驗中發(fā)現(xiàn)多殺性巴氏桿菌Pa1、Pa2、Pa6與Pa12攜帶Ⅰ型整合酶且Pa1、Pa2、Pa6與Pa12有著相似耐藥譜,有可能在此4株菌株中發(fā)生了耐藥傳播。所以持續(xù)監(jiān)測細(xì)菌耐藥性對選擇有效抗菌藥物治療疾病是非常重要的。隨著細(xì)菌耐藥性逐漸增加,應(yīng)該減少抗菌藥物的應(yīng)用,避免細(xì)菌耐藥性的產(chǎn)生。
參考文獻(xiàn):
[1] Smith L M, Brown S R, Howes K,etal. Development and application of polymerase chain reaction (PCR) tests for the detection of subgroup J avian leukosis virus[J]. VIRUS RES, 1998, 54(1):87-98.
[2] Veen E L V D, Schilder A G M, Timmers T K,etal. Effect of long-term trimethoprim/sulfamethoxazole treatment on resistance and integron prevalence in the intestinal flora: a randomized, double-blind, placebo-controlled trial in children[J]. J Antimicrob Chemother, 2009, 63(5):1 011-1 016.
[3] Peirano G, Agers? Y, Aarestrup F M,etal. Occurrence of integrons and resistance genes among sulphonamide-resistant Shigella spp. from Brazil.[J]. J ANTIMICROB CHEMOTH, 2005, 55(3):301-305.
[4] Vo A T, Van D E, Fluit A C,etal. Antibiotic resistance, integrons and Salmonella genomic island 1 among non-typhoidal Salmonella serovars in The Netherlands.[J]. Int J Antimicrob Agents, 2006, 28(3):172-179.
[5] 陳光宏, 賀曉龍. 豬源多殺性巴氏桿菌的分離鑒定與藥敏試驗[J]. 畜牧與獸醫(yī),2012,44(8):70-72.
[6] 孔令聰. 牛源莢膜血清A型多殺性巴氏桿菌的分離鑒定及對喹諾酮類抗生素耐藥機制研究[D].長春:吉林農(nóng)業(yè)大學(xué),2013.
[7] 馮新,韓文瑜,雷連成. 細(xì)菌對四環(huán)素類抗生素的耐藥機制研究進展[J]. 中國獸藥雜志,2004,38(02):38-42.
[8] Roe M T, Vega E, Pillai S D. Antimicrobial Resistance Markers of Class 1 and Class 2 Integron-bearing Escherichia coli from Irrigation Water and Sediments[J]. EMERG INFECT DI, 2003, 9(7):822-826.
[9] Turton J F, Kaufmann M E, Glover J, et al. Detection and typing of integrons in epidemic strains of Acinetobacter baumannii found in the United Kingdom.[J].J CLIN MICROBIOL, 2005, 43(7):3 074-3 082.