余維，覃澤平，陳華嬌，張峰，李兵

睡眠呼吸疾病主要包括各種在睡眠狀態(tài)下出現(xiàn)呼吸障礙的疾病，其中，阻塞性睡眠呼吸暫停[1]、中樞性睡眠呼吸障礙及周期性睡眠呼吸障礙[2]三種睡眠呼吸疾病較為常見。睡眠呼吸疾病與糖代謝密切相關，其中胰島素抵抗(insulin resistance，IR)發(fā)揮著重要作用。睡眠呼吸疾病可獨立于肥胖、年齡、性別、生活習慣等因素而導致IR。肝臟是參與機體糖代謝的重要器官，葡萄糖轉運蛋白2(glucose transporter 2，GLUT-2) 是肝細胞中最主要的葡萄糖轉運體，具有低親和力和高運轉能力，與葡萄糖激酶形成葡萄糖感受器，轉運葡萄糖進入細胞，經一系列信號的傳遞調節(jié)胰島素的合成與分泌，維持血糖的穩(wěn)定。胰島素受體底物2(insulin receptor substrate 2， IRS-2)是胰島素信號轉導途徑的上游分子，主要通過與其特異性受體結合來發(fā)揮生理作用促進合成肝糖原，并阻礙葡萄糖輸出[3]，下調IRS-2的表達可能影響其下游PI3K信號的傳遞而引起IR[4]。瘦素(leptin)是由OB基因編碼的一種分泌蛋白，主要通過JAK-STAT途徑[5]與其受體緊密結合而發(fā)揮生理作用。瘦素與IR密切相關，且瘦素抵抗會明顯抑制胰島素受體的表達，從而加重機體IR程度。瘦素的主要作用是參與機體能量代謝，通過調節(jié)飲食的攝入、增加機體能量消耗、抑制脂肪合成等多種途徑來調節(jié)全身脂肪的分布情況。游離脂肪酸(free fatty acid，F(xiàn)FA)是脂肪組織分解后的產物，可影響胰島素的分泌，干擾胰島素信號的傳導，與IR關系密切。研究發(fā)現(xiàn)睡眠呼吸疾病的病理生理學特征為慢性間歇性缺氧[6]，本研究通過建立慢性間歇性缺氧的動物模型來研究大鼠血糖、胰島素、脂肪因子以及肝臟中GLUT2、IRS-2、瘦素的表達，以探討睡眠呼吸性疾病引起糖代謝紊亂的可能機制。

1 材料與方法

1.1 試劑 GLUT-2兔抗大鼠抗體購自武漢三鷹公司，IRS-2兔抗大鼠抗體購自北京博奧森有限公司，瘦素兔抗大鼠抗體購自美國Santa Cruz公司，二抗山羊抗兔抗體購自中國Abbkine公司，兔抗大鼠β-actin內參購中國自武漢三鷹公司，F(xiàn)FA及瘦素ELISA試劑盒購自美國R&D試劑公司，血糖過氧化物酶法試劑盒購自上海榮盛生物藥業(yè)有限公司，胰島素放射免疫檢測法試劑盒購自北京北方生物技術研究所。GLUT-2引物：上游5'-AGCACATACGACACCAGACG-3'，下游5'-AAAGAACGAGGCGACCATT-3'；IRS-2引物：上游5'-TGACTTTGGTGAAGGGGGTA-3'，下游5'-CCAGGGATGAAGCAGGACTA-3'；瘦素引物：上游5'-TCACACACGCAGTCGGTATC-3'，下游5'-GCAAGCTGGTGAGGATCTGT-3'；內參β-actin引物購自生工生物工程股份有限公司。RNA提取試劑盒、反轉錄試劑盒均購自TaKaRa寶生物工程有限公司。

1.2 慢性間歇性缺氧動物模型的構建[7]24只成年雄性SD大鼠(購自重慶醫(yī)科大學實驗動物中心)隨機分為對照組(UC組)、慢性間歇性低氧組(CIH組)、復氧組(RH組)，每組8只。UC組常規(guī)飼養(yǎng)4周。CIH組及RH組在慢性間歇缺氧動物模型艙[8]中禁飲禁食，可自由活動。每天8:00～16:00放入模型艙內，關閉艙門，根據電路板程序自動控制進入艙內的空氣和氮氣的量，以60s作為1個循環(huán)周期，前30s向艙內通入氮氣，后30s向艙內通入空氣，使得每個循環(huán)周期中最低氧濃度維持在6%～10%，并持續(xù)3～5s，然后逐漸恢復到21%，由控氧儀監(jiān)控艙內氧濃度的變化。監(jiān)測艙內大鼠最低血氧飽和度為60%～80%[9]，持續(xù)缺氧4周，RH組在缺氧結束后常規(guī)飼養(yǎng)3周。血氣分析示UC組大鼠血氧飽和度≥95.0%，CIH組血氧飽和度≤85.0%，RH組血氧飽和度為85.1%～94.9%。本研究經重慶醫(yī)科大學附屬第一醫(yī)院倫理委員會批準(編號：2016-128)。

1.3 血清指標檢測 大鼠空腹12h后斷尾取血，在4℃下以7500r/min離心15min后取上清液，嚴格按照說明書操作，檢測各組大鼠空腹血糖(FBG)、空腹胰島素(FINS)、FFA及瘦素水平，并計算IR指數(shù)(IRI)。IRI=FBG×FINS/22.5。

1.4 Western blotting檢測大鼠肝臟中GLUT-2、 IRS-2、瘦素蛋白的表達 提取肝臟組織總蛋白，BCA法檢測蛋白濃度，SDS-PAGE電泳，濕化轉膜1h，用TBST配制的5%脫脂奶粉常溫封閉2h，4℃孵育GLUT-2、IRS-2、瘦素一抗過夜，TBST洗膜后，37℃孵育二抗(1:5000)1h，TBST洗膜后暗室顯影。使用Fusion軟件分析各組蛋白光密度值(OD)，分別計算出GLUT-2、IRS-2、瘦素與內參OD的比值，作為各組蛋白GLUT-2、IRS-2、瘦素的相對含量。

1.5 qRT-PCR檢測肝臟中GLUT-2、IRS-2、瘦素mRNA的表達 提取肝組織總RNA，按照RNA提取試劑盒說明書反轉錄獲得cDNA。參照SYBR?Premix Ex TaqTMⅡ (Tli RNaseH Plus)說明書配制10μl體系的上樣量，運行CFX96，采用Bio-Rad CFX96軟件分析，以β-actin作為內參照，分析各組中目的基因GLUT-2、IRS-2、瘦素的表達量，結果以2–ΔΔCt表示。

1.6 統(tǒng)計學處理 采用SPSS 20.0軟件進行統(tǒng)計學分析。計量資料以±s表示，組間比較采用單因素方差分析，進一步兩兩比較采用LSD-t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

2 結 果

2.1 大鼠血清指標檢測結果 CIH組大鼠血清FBG、FINS、FFA、瘦素濃度及IRI均明顯高于UC組，而RH組則明顯低于CIH組，但仍明顯高于UC組(P<0.05，表1)。

2.2 大鼠肝臟GLUT-2、IRS-2、瘦素蛋白的表達情況 Western blotting檢測結果顯示，CIH組大鼠肝臟中GLUT-2、IRS-2蛋白表達明顯低于UC組，而RH組明顯高于CIH組，但仍明顯低于UC組(P<0.05)。CIH組瘦素蛋白表達明顯高于UC組，而RH組明顯低于CIH組，但仍明顯高于UC組(P<0.05，圖1)。

2.3 大鼠肝臟中GLUT-2、IRS-2、瘦素mRNA的表達水平 qRT-PCR檢測結果顯示，CIH組大鼠肝臟中GLUT2、IRS-2 mRNA表達明顯低于UC組(P<0.05)，而RH組明顯高于CIH組，但仍明顯低于UC組(P<0.05)；CIH組瘦素mRNA表達明顯高于UC組(P<0.05)，而RH組明顯低于CIH組，但仍明顯高于UC組(P<0.05，表2)。

表1 各組大鼠血清FBG、FINS、FFA、瘦素濃度及IRI比較(±s，n=8)Tab.1 Concentrations of FBG, FINS, FFA, leptin and IRI in each group (±s, n=8)

表1 各組大鼠血清FBG、FINS、FFA、瘦素濃度及IRI比較(±s，n=8)Tab.1 Concentrations of FBG, FINS, FFA, leptin and IRI in each group (±s, n=8)

(1)P<0.05 compared with UC group; (2)P<0.05 compared with CIH group; FBG.Fasting blood glucose; FINS.Fasting insulin; IRI.Insulin resistance index

Group FBG (mmol/L) FINS (μU/ml) FFA (mmol/L) Leptin (ng/ml) IRI UC 5.23±0.39 9.59±0.84 0.95±0.99 6.73±1.24 2.24±0.34 CIH 7.20±0.33(1) 17.89±1.27(1) 1.42±1.44(1) 12.54±1.57(1) 5.72±0.39(1)RH 6.06±0.52(1)(2) 11.25±1.34(1)(2) 1.18±0.11(1)(2) 8.88±0.76(1)(2) 3.03±0.47(1)(2)

圖1 各組大鼠肝臟GLUT-2、IRS-2、瘦素的表達(Western blotting)Fig.1 Expressions of GLUT-2, IRS-2 and leptin in rats' liver in each group (Western blotting)

表2 各組大鼠肝臟組織GLUT2、IRS-2、瘦素的mRNA表達(/β-actin，±s，n=8)Tab.2 mRNA expression of GLUT2, IRS-2 and leptin in rats' liver in each group (/β-actin, ±s, n=8)

表2 各組大鼠肝臟組織GLUT2、IRS-2、瘦素的mRNA表達(/β-actin，±s，n=8)Tab.2 mRNA expression of GLUT2, IRS-2 and leptin in rats' liver in each group (/β-actin, ±s, n=8)

(1)P<0.05 compared with UC group; (2)P<0.05 compared with CIH group

Group GLUT-2 IRS-2 Leptin UC 1.000±0.000 1.000±0.000 1.000±0.000 CIH 0.130±0.023(1) 0.230±0.074(1) 1.540±0.075(1)RH 0.420±0.069(1)(2)0.480±0.105(1)(2)1.150±0.053(1)(2)

3 討 論

近年研究證實，睡眠呼吸疾病重要的病理生理特點是慢性間歇性缺氧，而慢性間歇性缺氧與糖代謝紊亂有著密切的關系，睡眠呼吸疾病導致糖代謝紊亂的具體機制目前仍不清楚。本研究結果顯示，CIH組、RH組大鼠血清FBG、FINS、FFA及瘦素濃度明顯高于UC組(P<0.05)，且RH組明顯高于CIH組(P<0.05)。Western blotting及qRT-PCR法檢測顯示，CIH組大鼠肝臟GLUT-2、IRS-2蛋白及mRNA表達明顯低于UC組(P<0.05)，而RH組則明顯高于UC組(P<0.05)；CIH組大鼠肝臟組織中瘦素蛋白及mRNA表達明顯高于UC組(P<0.05)，而RH組則明顯低于UC組(P<0.05)。本研究中慢性間歇性缺氧導致大鼠FBG、FINS升高出現(xiàn)IR，這種IR可能與血清FFA及瘦素濃度升高有一定關系。間歇性缺氧使得瘦素不能抑制胰島素的分泌，分泌的胰島素將促使脂肪細胞產生更多的瘦素[10-11]，而FFA通過抑制肝臟中經胰島素介導的葡萄糖攝取，引起機體葡萄糖轉運、氧化以及糖原合成障礙，使胰島素的生物效應下降，機體產生或加重IR。在反復的缺氧及復氧過程中，氧化應激可阻礙葡萄糖在肝臟中的攝取，胰腺β細胞的胰島素分泌減少，從而導致IR，出現(xiàn)糖代謝紊亂[12]。關于瘦素的研究多數(shù)是在血液中進行檢測，而對組織層面表達的研究較少。本研究發(fā)現(xiàn)瘦素在正常肝臟組織中的表達較少，經慢性間歇性缺氧后，瘦素的表達呈升高趨勢，而復氧后降低。我們推測可能是在慢性間歇性缺氧條件下瘦素刺激了JAK-STAT信號通路，使IR增強，而復氧有效地降低了瘦素水平，抑制了JAK-STAT信號通路，從而使瘦素正常發(fā)揮生物學效應，減輕了IR。

GLUT-2占肝臟葡萄糖轉運載體的97%以上，主要通過胰島素及其受體信號分子來調節(jié)葡萄糖在肝臟中的分布及產生作用[13-14]，調節(jié)機體血糖。本研究結果顯示慢性間歇性低氧可導致機體出現(xiàn)IR，CIH組大鼠GLUT-2表達降低，其可能原因是缺氧狀態(tài)下肝細胞膜表面沉淀的免疫球蛋白及相關的免疫復合物覆蓋或屏蔽GLUT-2和胰島素受體[11]，影響GLUT-2的轉位、入塢、融和，使GLUT-2數(shù)量和活力下降，從而導致葡萄糖轉運和利用障礙。經復氧處理后其表達較前有所升高，提示復氧能夠上調大鼠肝臟GLUT-2蛋白及mRNA的表達，從而增強葡萄糖從血液到肝細胞內的運輸，降低血糖濃度。GLUT2在腎臟中的表達趨勢[15]與肝臟中不一致，機體出現(xiàn)IR時GLUT2在腎臟的表達呈升高趨勢，可能是由于機體的血糖濃度發(fā)生變化，腎小管的重吸收功能增強，導致腎臟葡萄糖的轉運增加，還有可能是因為在腎臟高濾過及高功能狀態(tài)下，NO等血管活性物質增多，損傷腎細胞，形成一個惡性循環(huán)，導致IR進一步加重。

葡萄糖主要是通過GLUT-2實現(xiàn)其在肝臟中的轉運，而胰島素的信號傳遞主要是通過IRS-2調控肝臟糖原的合成及葡萄糖的利用[16]。在胰島素信號傳導中，IRS2可激活下游一系列酶，將細胞外信號傳遞到細胞內，IRS2缺陷所誘發(fā)的IR主要發(fā)生在肝臟中，促進肝葡萄糖輸出，抑制肝臟糖原合成[17]。本研究結果顯示，CIH組大鼠肝臟中IRS-2蛋白及mRNA表達低于UC組，其下調可能抑制了PKB/Akt途徑，導致胰島素信號傳導減弱，降低了胰島素的生物效應，促進肝臟糖原分解。經復氧后，IRS-2蛋白及mRNA表達較前有所升高，提示復氧可增強胰島素信號的傳遞，降低了血糖，從而使IR降低。

總之，慢性間歇性缺氧可增加大鼠血糖、血清胰島素水平而引發(fā)IR，且大鼠的IR與大鼠血清脂肪因子升高或肝臟GLUT-2、IRS-2的表達降低，瘦素的表達升高有關，在去除缺氧因素后，大鼠肝臟GLUT-2、IRS-2、瘦素的表達有所改善。慢性間歇性缺氧對大鼠肝臟中GLUT-2、IRS-2、瘦素表達的影響及其相互之間的聯(lián)系，仍須進一步深入研究。

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