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        磷酸化P38在神經(jīng)病理性疼痛大鼠背根神經(jīng)節(jié)中的作用機(jī)制

        2018-04-13 08:21:38解麗麗呂洪濤許瑞雪
        關(guān)鍵詞:機(jī)械

        解麗麗,呂洪濤,許瑞雪

        (1. 大連市中心醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科,遼寧 大連 116033; 2. 大連醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院神經(jīng)外科,遼寧 大連 116011)

        絲裂素活化蛋白激酶 (mitogen activated protein kinase,MAPKs) 存在于細(xì)胞中,是在細(xì)胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路中發(fā)揮重要作用的絲/蘇氨酸蛋白激酶。P38蛋白是MAPKs家族中重要的一員,許多生理性與化學(xué)性刺激都能激活P38的磷酸化。JOHNSON等[1]研究發(fā)現(xiàn),ERK、JNK、磷酸化P38(phosphorylated P38,p-P38)蛋白激酶所參與的細(xì)胞內(nèi)信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路在細(xì)胞增殖、分化、凋亡、神經(jīng)元可塑性等多種生理病理過程中發(fā)揮重要作用。許力等[2]研究發(fā)現(xiàn),脊髓中的P38與TNF-α活化,抑制P38磷酸化可以減少TNF-α,提示P38可能參與疼痛的中樞敏化。P38廣泛存在于脊髓和背根神經(jīng)節(jié) (dorsal root ganglion,DRG) ,并在炎癥反應(yīng)中發(fā)揮著抗炎作用[3-4]。

        慢性背根神經(jīng)節(jié)壓迫 (chronic compression of dorsal root ganglion,CCD) 模型是一種外周神經(jīng)病理性疼痛模型,是研究外周神經(jīng)不完全性損傷的常用動物模型,本研究檢測CCD大鼠DRG中p-P38 表達(dá)情況,探討p-P38在神經(jīng)病理性疼痛大鼠DRG中的作用機(jī)制。

        1 材料與方法

        1.1 動物及分組

        18只SD大鼠 (160~180 g,雌性) 由大連醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院動物實驗中心提供。室溫飼養(yǎng),12 h照明/12 h黑暗,水與鼠糧自由食用。實驗前大鼠要適應(yīng)實驗室環(huán)境1 h。動物使用遵照大連醫(yī)科大學(xué)動物管理委員會要求。大鼠隨機(jī)均分為3組:假手術(shù)組(sham組) 、CCD組、CCD模型SB203580給藥組 (治療組) ,每組6只。分別于術(shù)后14 d測完行為學(xué)取材。

        1.2 試劑

        P38抑制劑,4-(4-氟苯) -2-(4-甲磺酰苯) -5-(4-吡啶基) -1氫-咪唑 (SB203580,美國Sigma公司) ;內(nèi)參β-actin抗體、p-P38抗體與P38抗體 (美國Cell Signaling公司) 。

        1.3 CCD模型制備

        大鼠腹腔注射l%戊巴比妥鈉 (40 mg/kg) 麻醉后,用剃毛刀將腰背部的毛剃光,鋪上紙巾暴露出手術(shù)野,沿著右側(cè)脊椎從L2-5切開皮膚、分離肌肉。將“L型” (長3 mm、直徑0.6 mm) 的不銹鋼棒,與背部正中線成30°角,與脊柱側(cè)面水平線成15°。分別插入L3和L4椎間孔,觀察到大鼠右后肢抽動即為插入成功。術(shù)后腹腔注射青霉素預(yù)防感染。鞘內(nèi)置管在CCD手術(shù)前實施,打開L6的硬腦膜,將導(dǎo)管置入大鼠的蛛網(wǎng)膜下腔,大約位于L3-4,縫合后固定導(dǎo)管,等待大鼠恢復(fù)24 h后再進(jìn)行CCD手術(shù)。

        1.4 大鼠機(jī)械疼痛閾值測試

        檢測大鼠后足對Von Frey絲 (直徑200 μm) 刺激的縮足反應(yīng),使用機(jī)械縮足閾值 (paw withdrawal mechanical threshold,PWMT) 衡量機(jī)械疼痛的程度。大鼠放置在1個10 cm×10 cm×15 cm的透明玻璃盒中,底部放置金屬網(wǎng) (0.5 cm×0.5 cm) 。使用Von Frey絲垂直扎大鼠的足底,當(dāng)大鼠后足突然揚足、縮足或舔足反應(yīng)為陽性,每次刺激間隔10 min,每只大鼠重復(fù)測量5次,取平均值。

        1.5 大鼠熱痛閾值測試

        通過檢測大鼠后足底對熱刺激產(chǎn)生的縮腿動作時間( paw withdrawal thermal latency,PWTL) 來衡量熱痛閾值。把待檢測的大鼠單獨放置于底部厚為0.22 mm的透明玻璃籠( 20 cm×20 cm×40 cm) 中,在安靜環(huán)境下適應(yīng)30 min后,使用熱輻射疼痛刺激器( BME-410C,天津伯爾尼科技有限公司) 在玻璃板下固定距離聚焦大鼠后足底,當(dāng)大鼠產(chǎn)生縮足或舔足停止照射,記錄照射起止的間隔時間。每只大鼠重復(fù)測量5次,間隔時間>5 min,取平均值作為PWTL。為避免給大鼠足底皮膚造成損傷,設(shè)置最高閾值為20 s。

        1.6 Western blotting檢測大鼠DRG神經(jīng)元中p-P38的表達(dá)

        所有蛋白取自實驗大鼠L3和L4的DRG。每個樣品總蛋白25 μg,使用10%的SDS-PAGE進(jìn)行電泳,在4 ℃轉(zhuǎn)膜1 h到PVDF上,使用TBST( 20 mmol/L Tris-Cl,pH7.5,0.15 mol/L NaCl,0.05% Tween-20) 沖洗,共洗3次,每次10 min;接著用含10%脫脂牛奶的TBST室溫封閉1 h,然后用一抗p-P38抗體( 1∶500) 4 ℃孵育過夜,第2天用TBST洗3次,每次10 min,之后應(yīng)用二抗( 1∶1 000) 室溫孵育1 h,使用發(fā)光試劑盒(英國ECL kit公司) 檢測發(fā)光信號。所有實驗使用等量蛋白進(jìn)行P38( 1∶1 000) 和β-actin抗體( 1∶2 000)檢測。p-P38和P38的蛋白條帶灰度值用Image J軟件(美國NIH公司) 分析。

        1.7 統(tǒng)計學(xué)分析

        使用統(tǒng)計軟件SPSS 12.0進(jìn)行數(shù)據(jù)處理。實驗數(shù)據(jù)用±s表示,組內(nèi)比較采用配對t檢驗,組間比較采用單因素方差分析。P< 0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 各組大鼠機(jī)械疼痛行為學(xué)結(jié)果比較

        大鼠機(jī)械疼痛行為學(xué)結(jié)果顯示,大鼠在進(jìn)行CCD手術(shù)前對機(jī)械刺激的縮腿反應(yīng)的基礎(chǔ)閾值是20.5 g。與sham組比較,CCD組大鼠的機(jī)械縮腿閾值明顯降低 (P< 0.01) ,并表現(xiàn)為時間依賴性,手術(shù)后1、3、5、7 d后持續(xù)降低,但手術(shù)后14 d大鼠的機(jī)械縮腿閾值增加,恢復(fù)近正常。與CCD組比較,治療組大鼠除第1天外,其他時間點的機(jī)械縮腿閾值明顯升高 (P< 0.05) 。3組大鼠在手術(shù)后14 d,機(jī)械縮腿閾值都恢復(fù)至正常,沒有統(tǒng)計學(xué)差異 (P> 0.05) 。見表1。

        2.2 各組大鼠熱疼痛行為學(xué)結(jié)果比較

        表1 3組大鼠對機(jī)械刺激、熱刺激所產(chǎn)生縮足反應(yīng)比較Tab.1 Comparison of the withdrawal response to mechanical stimuli and heat stimuli in the three groups

        熱刺激反應(yīng)結(jié)果顯示,大鼠在進(jìn)行CCD手術(shù)前對熱刺激縮腿反射基礎(chǔ)閾值是13 s。與sham組比較,CCD組、治療組大鼠對熱刺激的縮腿反射時間明顯縮短 (均P< 0.01) 。鞘內(nèi)注射SB203580不能改變CCD引起的熱痛覺過敏,見表1。

        2.3 各組大鼠DRG中p-P38的表達(dá)

        Western blotting結(jié)果顯示,sham組大鼠DRG僅有少量p-P38蛋白表達(dá)。與sham組比較,CCD組大鼠手術(shù)14 d后DRG中p-P38蛋白表達(dá)明顯增加 (P<0.01) 。與CCD組比較,治療組大鼠手術(shù)14 d后DRG中p-P38蛋白表達(dá)明顯減少 (P< 0.01) 。各組大鼠P38蛋白表達(dá)沒有變化。見圖1。

        圖1 各組大鼠DRG中p-P38和P38蛋白表達(dá)比較Fig.1 p-P38 and P38 protein expression levels in the DRG of rats

        3 討論

        p-P38抑制劑是吡啶咪唑衍生物,主要有第一代SB202190、SB203580、SB220025,第二代SB239063等。其中,SB203580是可以通過細(xì)胞的分子,與ATP競爭性結(jié)合P38上的位點而發(fā)揮抑制作用。SB203580抑制P38磷酸化,減少脊髓中TNF-α合成,從而緩解神經(jīng)病理性疼痛[2]。

        本實驗結(jié)果發(fā)現(xiàn),CCD能引起大鼠對機(jī)械與溫度刺激的痛覺異常。提前鞘內(nèi)注射SB203580能夠抑制機(jī)械刺激引起的痛覺異常,對熱刺激引起的痛覺異常沒有作用。PIAO等[6]研究發(fā)現(xiàn),CCD引起三叉神經(jīng)節(jié)損傷,激活膠質(zhì)細(xì)胞與小膠質(zhì)細(xì)胞中的p-P38,引起痛覺過敏。因此,SB203580可能在DRG的神經(jīng)元細(xì)胞中具有相似功能,通過抑制P38的磷酸化來保護(hù)DRG中的神經(jīng)元細(xì)胞,防止神經(jīng)病理性疼痛的發(fā)生。

        胡建雷等[7]報道,脊髓背角中P38磷酸化,能夠引起CCD大鼠的神經(jīng)病理性疼痛。韓光等[8]報道,高壓氧可能通過活化脊髓中的P2X4受體,激活p38 MAPK信號通路,進(jìn)而緩解CCI大鼠的機(jī)械痛與熱痛。近年有學(xué)者[9-10]報道,MAPK信號通路中的P38在炎癥細(xì)胞、應(yīng)激、凋亡和神經(jīng)病理性疼痛中發(fā)揮著重要作用。本研究結(jié)果顯示,SB203580注射可以引起大鼠DRG中p-P38蛋白表達(dá)增加。P38只是MAPK信號通路中的作用蛋白,還需要對該信號通路的上下游進(jìn)行深入研究,探討其他蛋白的表達(dá)變化情況。SB203580有可能通過增加p-P38蛋白表達(dá),從而調(diào)控下游信號通路,引起ERK-κ Bp65磷酸化,發(fā)揮緩解神經(jīng)病理性疼痛的作用。

        綜上所述,SB203580能夠減輕CCD所引起的機(jī)械痛,但對CCD所引起的熱痛沒有作用。p-P38蛋白可能是神經(jīng)病理性疼痛的作用靶點,今后有可能指導(dǎo)臨床用于緩解慢性疼痛。

        參考文獻(xiàn):

        [1] JOHNSON GL,LAPADAT R. Mitogen-activated protein kinase pathways mediated by ERK,JNK,and p38 protein kinases [J]. Science,2002,298 (5600) :1911-1912. DOI:10.1126/science.1072682.

        [2] 許力,虞雪融,黃宇光.P38 MAPK抑制劑對神經(jīng)病理性疼痛大鼠脊髓TNF-α合成的影響[J].基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與臨床,2012,32 (10) :1126-1131.

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        [4] KONDO T,SAKURAI J,MIWA H,et al. Activation of p38 MAPK through transient receptor potential A1 in a rat model of gastric distension induced visceral pain [J]. Neuroreport,2013,24 (2) :68-72.DOI:10.1097/WNR.0b013e32835c7df2.

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        [7] 胡建雷,申文,曾因明.脊髓p38MAPK在大鼠背根節(jié)慢性壓迫神經(jīng)病理性疼痛中的作用[J].中國藥理學(xué)通報,2008,24 (4) :530-533.

        [8] 韓光,李璐,趙平.高壓氧對神經(jīng)病理性疼痛大鼠p38MAPK信號通路的影響[J].中國醫(yī)科大學(xué)學(xué)報,2016,45 (8) :723-727.

        [9] 張濤,楊承祥,王漢兵.p38MAPK信號通路與疼痛的關(guān)系 [J].中國疼痛醫(yī)學(xué)雜志,2012,18 (3) :177-180.

        [10] 王依慰,李偉彥.P38促分裂原活化蛋白激酶在神經(jīng)病理性疼痛中的作用 [J]. 中國臨床神經(jīng)科學(xué),2015,23 (4) :454-458.

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