趙艷紅,劉 濤
(商丘醫(yī)學(xué)高等??茖W(xué)校人體解剖學(xué)教研室,河南商丘 476100)
目前,內(nèi)皮功能障礙是發(fā)生動脈粥樣硬化的早期事件。經(jīng)研究發(fā)現(xiàn),它與動脈粥樣斑塊的進展有重要關(guān)系[1-2]。而內(nèi)皮細胞受損時,會破壞血穩(wěn)態(tài),導(dǎo)致血栓形成、脂質(zhì)積累,最終形成粥樣斑塊,因此早期控制內(nèi)皮功能是防治冠心病的關(guān)鍵。目前已經(jīng)公認,高同型半胱氨酸血癥是動脈粥樣硬化發(fā)生和發(fā)展的獨立危險因素[3]。血漿中同型半胱氨酸(Hcy)升高會造成內(nèi)皮細胞功能障礙,引起血管舒張功能異常,導(dǎo)致內(nèi)皮細胞喪失抗血栓形成的作用,引起血小板黏附聚集,進而引發(fā)早期動脈粥樣硬化。熱休克蛋白27(HSP27)參與細胞凋亡、炎癥和動脈壁的穩(wěn)態(tài)維持等多種過程。有研究發(fā)現(xiàn),HSP27在抗心肌缺血損傷、細胞凋亡及抗炎性反應(yīng)中都有一定作用,還可調(diào)控平滑肌細胞的増殖遷移、穩(wěn)定細胞骨架、抗凋亡[4]。LEE等[5]研究發(fā)現(xiàn),HSP27在動脈粥樣硬化有著不可忽視的作用,且血清中HSP27水平和動脈粥樣硬化程度呈負相關(guān)。HSP27有可能作為預(yù)防和診斷動脈粥樣硬化的新靶點。本研究通過實驗探討HSP27對Hcy誘導(dǎo)血管內(nèi)皮細胞損傷的保護作用,并對HSP27相關(guān)保護機制進行分析。
1.1實驗儀器及耗材
1.1.1主要儀器 二氧化碳培養(yǎng)箱Heracell150i(美國Thermo Scientific);超凈工作臺(中國蘇凈安泰);CH20-BIM倒置光學(xué)顯微鏡(日本Olympus);IX71熒光顯微鏡(日本Olympus);離心機(美國Thermo Scientific);流式細胞儀(美國Becton Dickinson);電熱恒溫水浴箱(中國上海精宏實驗設(shè)備);電子分析天平(德國Sartorius);恒溫磁力攪拌器(中國江蘇榮華儀器制造)。
1.1.2主要試劑 細胞培養(yǎng)DMEM(美國Gibco);MTT細胞活性試劑(美國Invitrogen);細胞培養(yǎng)胎牛血清(FBS,美國Coning);AnnexinV/PI凋亡檢測試劑盒(中國南京凱基);Lipofectamine 2000(美國Invitrogen);總一氧化氮檢測試劑盒(碧云天公司);DCHP活性氧檢測試劑盒(碧云天公司)。
1.2方法
1.2.1人臍靜脈內(nèi)皮細胞(HUVECs)培養(yǎng)及鑒定 無菌收集健康新生兒臍帶,磷酸鹽緩沖液(PBS)反復(fù)沖洗靜脈腔后灌注0.1%膠原酶消化30 min,含10%血清的DMEM培養(yǎng)基終止消化,消化液1 500 r/min離心8 min后加入培養(yǎng)液重懸細胞,放入37 ℃ 5% CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。待細胞貼壁并85%融合后,用0.05%胰酶消化傳代,繼續(xù)培養(yǎng)。每2天進行一次細胞傳代,同時更換培養(yǎng)液。取對數(shù)生長期的第3~5代用于實驗。
1.2.2HUVECs存活率檢測 培養(yǎng)后的HUVECs,經(jīng)0.5%胰酶充分消化后接種于96孔板,10 000個/孔,放入37 ℃,5% CO2培養(yǎng)箱,培養(yǎng)24 h。按照實驗分組在孔板上加入不同濃度藥品,每個濃度設(shè)6個復(fù)孔,同時設(shè)立陰性對照孔。繼續(xù)培養(yǎng)24 h后,每孔加入15 μL的5 g/L的MTT溶液,孵育4 h后,棄上清液,立即加入100 μL DMSO,充分振蕩15 min,采用酶標(biāo)儀波長490 nm測定各孔吸光度(A)值。HUVEC增殖率(%)=(實驗組A值-對照組A值)/對照組A值×100%。Hcy組:分別加入Hcy使終濃度分別為0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mmol/L。Hcy+HSP27組:每孔分別加入Hcy使終濃度為0.8 mmol/L,并分別加入HSP27,使終濃度為0、2、4、6、8、10 μg/L。
1.2.3細胞凋亡檢測 培養(yǎng)后的HUVECs,經(jīng)0.5%胰酶充分消化后接種于96孔板,10 000個/孔,放入37 ℃,5% CO2培養(yǎng)箱。HSP27+Hcy組給予終濃度0.8 mmol/L的Hcy培養(yǎng)12 h后,將培養(yǎng)液更換為含有濃度為10 μg/L的HSP27,繼續(xù)培養(yǎng)24 h。Hcy組給予終濃度0.8 mmol/L的Hcy后培養(yǎng)12 h后,將培養(yǎng)液更換為正常培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)24 h。空白組使用正常培養(yǎng)基。收集各組細胞于EP管中,1 800 r/min離心5 min。用PBS對細胞清洗2次,再次1 800 r/min離心5 min。棄上清液,加入200 nL結(jié)合液重懸細胞;加入2.5 μL Annexin V-FITC,充分混勻后于室溫下避光反應(yīng)10 min。加入5 μL 碘化丙啶(PI)染色液,混勻后室溫避光反應(yīng)5 min,進行流式細胞儀檢測。
1.2.4細胞培養(yǎng)液中NO水平檢測 培養(yǎng)后的HUVECs,經(jīng)0.5%胰酶充分消化后接種于96孔板,10 000個/孔,放入 37 ℃ 5% CO2培養(yǎng)箱,培養(yǎng)24 h。HSP27+Hcy組更換為含有濃度為0.8 mmol/L的Hcy及10 μg/L的HSP27的培養(yǎng)基后繼續(xù)培養(yǎng)24 h。Hcy組更換為含有濃度為0.8 mmol/L的Hcy的培養(yǎng)基后繼續(xù)培養(yǎng)24 h??瞻捉M使用正常培養(yǎng)基,每組6個復(fù)孔。分別收集各組細胞培養(yǎng)液,離心取上清液備用。按照總一氧化氮檢測試劑盒(硝酸還原酶法)說明書進行檢測,計算樣品中的NO濃度。
1.2.5細胞內(nèi)活性氧(ROS)檢測 培養(yǎng)后的HUVECs,經(jīng)0.5%胰酶充分消化后接種于96孔板,10 000個/孔,放入37 ℃,5% CO2培養(yǎng)箱,培養(yǎng)12 h。HSP27+Hcy組更換為含有濃度為0.8 mmol/L的Hcy及10 μg/L HSP27的培養(yǎng)基后繼續(xù)培養(yǎng)24 h。Hcy組更換為含有濃度為0.8 mmol/L Hcy的培養(yǎng)基后繼續(xù)培養(yǎng)24 h??瞻捉M使用正常培養(yǎng)基。每組6個復(fù)孔。按照試劑盒說明書進行如下操作:按照1∶1 000用DMEM培養(yǎng)液稀釋2′,7′-二氯熒光黃雙乙酸鹽(DCFH-DA),終濃度為10 μmol/L。分別收集各組細胞于EP管中,1 800 r/min離心5 min;棄上清液,加入約1 mL DMEM培養(yǎng)液懸浮細胞,再次離心后吸除上清液;于37 ℃避光條件下加入500 μL的DCFH-DA染液,反應(yīng)20 min后1 800 r/min離心5 min,采用無血清DMEM培養(yǎng)液洗滌2次;加入500 μL的DMEM培養(yǎng)液懸浮細胞,進行流式細胞儀檢測。
2.1HUVECs生存率
2.1.1Hcy對HUVECs存活率的影響 HUVECs與不同濃度的Hcy作用后,0 mmol/L存活率均值為97.33%,Hcy 0.2 mmol/L組存活率均值為95.17%,Hcy 0.4 mmol/L組存活率均值為90.72%,Hcy 0.6 mmol/L組存活率均值為78.29%,Hcy 0.8 mmol/L組存活率均值為63.65%,Hcy 1.0 mmol/L組存活率均值為41.51%。0 mmol/L組與Hcy 0.2 mmol/L組比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);Hcy 0.4、0.6、0.8、1.0 mmol/L組存活率均低于0 mmol/L,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05),見圖1。
a:P<0.05,與Hcy 0 mmol/L比較
圖1 Hcy對HUVECs存活率的影響
a:P<0.05,與HSP27 0 μg/L比較
圖2 HSP27對HUVECs損傷的保護
2.1.2HSP27對HUVECs存活率的影響 取Hcy 0.8 mmol/L時不同濃度的HSP27與HUVECs相互作用,加入不同濃度HSP27組的內(nèi)皮細胞存活率較0 μg/L組明顯升高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),見圖2。
a:P<0.05,與空白組比較;b:P<0.05與Hcy組比較
圖3 HSP27對Hcy誘導(dǎo)的HUVECs凋亡的影響
a:P<0.01,b:P<0.05,與空白組比較;c:P<0.05,與Hcy組比較
圖4 HSP27對Hcy刺激HUVECs的NO水平的影響
a:P<0.01,與空白組比較,b:P<0.01,與Hcy組比較
圖5 HSP27對Hcy誘導(dǎo)的HUVECs產(chǎn)生ROS的影響
2.2HUVECs凋亡情況 空白組細胞凋亡率為0.5%,Hcy組細胞凋亡率為88.85%,明顯高于空白組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);Hsp27+Hcy組細胞凋亡率為50.93%,低于Hcy組且高于空白組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05),見圖3。
2.3NO水平 空白組NO水平29.37 μmol/L明顯低于Hcy組NO水平8.94 μmol/L,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01);空白組NO水平29.37 μmol/L高于HSP27+Hcy組NO水平22.18 μmol/L,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);Hcy組NO水平8.94 μmol/L低于HSP27+Hcy組NO水平22.18 μmol/L,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),見圖4。
2.4對Hcy誘導(dǎo)HUVECs產(chǎn)生ROS的影響 通過DCF的熒光反應(yīng)程度來反映ROS的產(chǎn)生水平??瞻捉MROS水平最低,Hsp27+Hcy組次之,Hcy組ROS水平最高;Hcy組ROS水平明顯高于空白組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01);Hsp27+Hcy組高于空白組且低于Hcy組,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.01),見圖5。
動脈粥樣硬化是由于脂質(zhì)代謝異常和慢性炎性反應(yīng)所引起的動脈管壁病變。近年來,“內(nèi)皮損傷反應(yīng)學(xué)說”受到了廣泛關(guān)注[6]。越來越多的證據(jù)顯示,內(nèi)皮細胞功能障礙是動脈粥樣硬化與心血管疾病發(fā)展之間的一個重要病理生理環(huán)節(jié)[7]。在本研究中,聯(lián)合應(yīng)用Annexin V與PI可區(qū)分凋亡早期、晚期及壞死細胞的原理,發(fā)現(xiàn)Hcy能夠減少內(nèi)皮細胞的生存率,且隨著Hcy濃度增高,內(nèi)皮細胞的生存率越低,與Hcy濃度呈負相關(guān)。血漿Hcy水平升高是動脈粥樣硬化發(fā)生與發(fā)展的獨立危險因素。斑塊中細胞持續(xù)凋亡會引起長期慢性炎性反應(yīng),加快斑塊破裂及促進血栓形成。目前已有一些關(guān)于Hcy相關(guān)性的內(nèi)皮細胞功能障礙的研究[3,8]。本研究結(jié)果顯示,隨著Hcy濃度的增加,細胞生存率逐漸降低,高濃度Hcy可有明顯的內(nèi)皮細胞生長抑制作用,Hcy能夠抑制內(nèi)皮細胞生存,呈劑量依賴。
目前多數(shù)研究認為Hcy導(dǎo)致的內(nèi)皮功能障礙是動脈粥樣硬化的重要機制[2,4,9]。本研究發(fā)現(xiàn),Hcy能夠?qū)е聝?nèi)皮細胞產(chǎn)生NO減少,還能誘導(dǎo)ROS的產(chǎn)生。NO是內(nèi)皮細胞維持血管擴張的主要調(diào)節(jié)因子,而血管內(nèi)皮在成生NO過程中出現(xiàn)異常,使NO生成減少,導(dǎo)致內(nèi)皮功能障礙,是動脈粥樣硬化的前奏[10]。AJITH[11]研究發(fā)現(xiàn),內(nèi)皮細胞生成的減少及氧化應(yīng)激反應(yīng)增強導(dǎo)致的NO損失都會導(dǎo)致NO生物利用率下降。內(nèi)皮功能障礙時,通過趨化因子、黏附分子及一系列的反應(yīng),影響NO生成。而有研究發(fā)現(xiàn),動脈粥樣硬化病變細胞中死亡相關(guān)蛋白激酶表達增加,會增加動脈壁不穩(wěn)定性,更容易吸收低密度脂蛋白[12]。已有研究證實,死亡相關(guān)蛋白激酶參與Hcy誘導(dǎo)的內(nèi)皮細胞凋亡過程[13]。而HSP27并不影響死亡相關(guān)蛋白激酶表達,考慮死亡相關(guān)蛋白激酶處于HSP27的調(diào)控上游。NO產(chǎn)生減少可作為內(nèi)皮功能障礙的一個指標(biāo)。本研究結(jié)果顯示,HSP27濃度越高,細胞的存活率越高,呈濃度依賴性,HSP27對HUVECs損傷具有保護作用;同時采用總一氧化氮檢測試劑盒對細胞培養(yǎng)液中NO水平進行檢測,發(fā)現(xiàn)Hcy刺激HUVECs會抑制NO的合成或釋放;加入HSP27后能減弱Hcy對內(nèi)皮細胞的影響,從而改善內(nèi)皮功能。還有研究發(fā)現(xiàn),HSP27具有分子伴侶作用,它通過與轉(zhuǎn)錄因子作用,在轉(zhuǎn)錄水平進行調(diào)控,降低Hcy對內(nèi)皮細胞功能的影響[14]。
ROS能夠增強細胞氧化應(yīng)激,促進炎癥介質(zhì)釋放、低密度脂蛋白氧化,破壞凝血功能平衡等。據(jù)報道,氧化應(yīng)激在內(nèi)皮功能障礙發(fā)生機制中起著重要作用[15]。ROS的內(nèi)源性衍生物主要由線粒體產(chǎn)生,當(dāng)ROS過量時可造成廣泛性氧化損傷,導(dǎo)致細胞功能喪失,甚至凋亡。ROS是細胞內(nèi)信號傳遞者,在引起細胞凋亡中起重要作用。本研究采用DCFH-DA活性氧檢測試劑盒進行細胞內(nèi)ROS定量檢測。通過流式細胞儀檢測DCF的熒光強度就能知道細胞內(nèi)ROS的水平。本研究證實,Hcy能夠誘導(dǎo)ROS產(chǎn)生,引起內(nèi)皮細胞功能障礙,是早期血管出現(xiàn)動脈粥樣硬化的關(guān)鍵。HSP27被作為細胞保護者,已有研究證實它能夠通過多個作用靶點發(fā)揮抗氧化應(yīng)激和抗細胞凋亡的作用:(1)穩(wěn)定線粒體膜功能;(2)改善細胞呼吸,減少ROS生成;(3)提高細胞內(nèi)還原能力;(4)激活Mt,促進細胞生存。LIN等[16]為進一步研究HSP27在Hcy處理過的內(nèi)皮細胞中的表達情況,通過質(zhì)粒構(gòu)建了HSP27高表達的內(nèi)皮細胞系,證實了而HSP27表達增加能夠抑制Hcy引起的內(nèi)皮細胞損傷和凋亡。由此可見,減少內(nèi)源性ROS產(chǎn)生,穩(wěn)定線粒體膜電位,是HSP27對抗Hcy引起的內(nèi)皮損傷的重要機制之一。
綜上所述,HSP27通過影響NO表達和調(diào)節(jié)細胞內(nèi)ROS水平保護Hcy誘導(dǎo)的受損傷的內(nèi)皮細胞,這些作用提示HSP27可能是預(yù)防和治療動脈粥樣硬化的新靶點。
[1]孫永輝,位庚,賈振華,等.同型半胱氨酸對大鼠心肌微血管內(nèi)皮細胞線粒體功能的影響及通心絡(luò)的保護作用[J].中國老年學(xué),2017,37(18):1-6.
[2]PELIKANT-MALECKA I,SIELICKA A,KANIEWSKA E,et al.Endothelial toxicity of unusual nucleotide metabolites[J].Pharmacol Rep,2015,67(4):818-822.
[3]朱琳,王彥軍,俞天虹,等.紅景天苷通過抑制內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激減少高同型半胱氨酸誘導(dǎo)的人臍靜脈內(nèi)皮細胞損傷[J].中國動脈硬化雜志,2015,23(1):5-10.
[4]俞天虹,朱琳,趙蓉,等.腺苷酸蛋白激酶活化在紅景天苷抑制同型半胱氨酸誘導(dǎo)的人臍靜脈內(nèi)皮細胞內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激中的作用[J].中華中醫(yī)藥學(xué)刊,2017,16(10):2558-2562.
[5]LEE S W,CHO J M,CHO H J,et al.Expression levels of heat shock protein 27 and cellular FLICE-like inhibitory protein in prostate cancer correlate with Gleason score sum and pathologic stage[J].Korean J Urol,2015,56(7):505-514.
[7]紀(jì)昕,岳曉樂,趙丹丹,等.同型半胱氨酸與動脈粥樣硬化患者血管內(nèi)皮細胞損傷相關(guān)性[J].標(biāo)記免疫分析與臨床,2017,24(1):73-76.
[8]季政,郭航遠,池菊芳,等.同型半胱氨酸對大鼠血管內(nèi)皮細胞MMP-2表達的影響和黃酒,紅葡萄酒的逆轉(zhuǎn)效應(yīng)及其機制[J].西安交通大學(xué)學(xué)報(醫(yī)學(xué)版),2013,34(3):313-319.
[9]韓磊,王瑋瑤,于洪泉,等.內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激途徑介導(dǎo)同型半胱氨酸致血管內(nèi)皮細胞凋亡的研究進展[J].中風(fēng)與神經(jīng)疾病雜志,2014,31(1):92-94.
[10]位庚,劉紅利,李紅蓉,等.通心絡(luò)對同型半胱氨酸誘導(dǎo)大鼠心肌微血管內(nèi)皮細胞損傷的干預(yù)作用及氧化應(yīng)激機制研究[J].中國循環(huán)雜志,2016,31(9):908-912.
[11]AJITH T A.Homocysteine in ocular diseases[J].Clin Chim Acta,2015,450(2):316-321.
[12]郝寶順,劉雪蓮,劉勇,等.瑞舒伐他汀對同型半胱氨酸損傷人臍靜脈內(nèi)皮細胞血管細胞間黏附分子-1表達的影響[J].廣東醫(yī)學(xué),2015,36(11):1646-1648.
[13]陳洪娜,唐文照,閆志暉,等.Diplacone對同型半胱氨酸致血管內(nèi)皮細胞損傷的保護作用[J].中國動脈硬化雜志,2017,25(7):666-670.
[14]楊紹兵,蔡慶,王凱,等.不同濃度同型半胱氨酸對內(nèi)皮細胞TRPV1蛋白表達的影響[J].寧夏醫(yī)科大學(xué)學(xué)報,2017,39(4):399-402.
[15]龐柳英,陳英,王寧,等.芪參益氣滴丸對原發(fā)性高血壓并高同型半胱氨酸血癥患者基質(zhì)金屬蛋白酶9及血管內(nèi)皮細胞功能的影響[J].實用心腦肺血管病雜志,2017,16(5):153-155.
[16]LIN A C,LIAO C W,LIN S W,et al.Canine heat shock protein 27 promotes proliferation,migration,and doxorubicin resistance in the canine cell line DTK-F[J].Vet J,2015,205(2):254-262.