胡龍江 周音頻 曹運(yùn)蘭 呂湛 藍(lán)運(yùn)競 寧琳 向立權(quán) 肖鵬
(1.重慶市涪陵中心醫(yī)院心血管內(nèi)科,重慶 涪陵 408000;2.貴州省人民醫(yī)院心血管內(nèi)科,貴州 貴陽 550002;3.川北醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院心血管內(nèi)科,四川 南充 637000)
目前,Ⅱ型糖尿病(type 2 diabetes mellitus, T2DM)已成為全球化的流行性疾病,其慢性進(jìn)行性病程及產(chǎn)生的多種急慢性并發(fā)癥,嚴(yán)重影響著患者的生活質(zhì)量。最近流行病學(xué)調(diào)查顯示,我國T2DM的患病率已達(dá)9.7%,糖尿病前期人群已達(dá)15.5%。因此,闡明T2DM的發(fā)病機(jī)制、開發(fā)新的有效防治方法是目前醫(yī)學(xué)界亟待解決的難題和熱點(diǎn)。最近研究證實(shí),T2DM的發(fā)生與機(jī)體固有免疫系統(tǒng)介導(dǎo)的炎癥反應(yīng)密切相關(guān),T2DM的免疫防治作為新興治療途徑而備受關(guān)注。NLRP3炎性小體能感受代謝性應(yīng)激信號的刺激,從而導(dǎo)致caspase-1活化及一系列炎性因子的產(chǎn)生,與T2DM的發(fā)生發(fā)展密切相關(guān),而當(dāng)機(jī)體炎性因子如白介素-1β(IL-1β)、白介素-18(IL-18)增加時,機(jī)體的抗炎因子如轉(zhuǎn)化生長因子(transfor-ming growth factor-β,TGF-β)亦會發(fā)生變化。本文就以核苷酸結(jié)合寡聚化結(jié)構(gòu)域樣受體蛋白3(nucleotide-bmding oligomerization domain-like receptor protein3,NLRP3)炎性小體為中心的NLRP3-ASC-Caspase-1-IL-18/IL-1β-TGF-β信號通路在T2DM發(fā)生發(fā)展過程中的作用進(jìn)行探討。
1.1 臨床資料 2016年3月~2017年3月,在我院健康體檢中心收集健康對照組30例,內(nèi)分泌科收集T2DM組40例,年齡30~80歲,對照組符合肝心腎肺檢查均正常,排除T2DM(診斷依據(jù)為1999年WHO制定的糖尿病診斷分型標(biāo)準(zhǔn))、急性和慢性感染性疾病、腫瘤、自身免疫性疾病、痛風(fēng)、近期創(chuàng)傷、正在使用抗炎藥物者及其他代謝性疾病,排除家族中有傳染病及遺傳病史者。T2DM組符合患初診T2DM(診斷依據(jù)同上),未使用降糖、降脂藥物治療者,亦未正規(guī)采用飲食及運(yùn)動療法者,排除1型糖尿病(在30歲以前診斷為糖尿病并使用胰島素治療)、內(nèi)分泌相關(guān)糖尿病及T2DM合并急性并發(fā)癥(如糖尿病酮癥酸中毒、糖尿病乳酸酸中毒)、嚴(yán)重慢性并發(fā)癥(如心肝腎功能不全、急性和慢性感染性疾病、腫瘤、自身免疫性疾病、痛風(fēng))和近期創(chuàng)傷、正在使用抗炎藥物者以及其他代謝性疾病者。所有操作程序由涪陵中心醫(yī)院倫理委員會批準(zhǔn),入選對象均對本研究內(nèi)容知曉并簽署知情同意書。
1.2 主要儀器及試劑 Step One Plus 熒光定量PCR測定儀(新加坡ABI公司),PTC-2000PCR測定儀(美國MJR公司),Neofuge1600R臺式高速冷凍離心機(jī)(香港力康科技有限公司),AllegraTM64R高速臺式離心機(jī)(美國BECKMAN公司),LAS 4000mini 凝膠成像系統(tǒng)(美國GE公司),NANODROP2000超微量紫外分光光度計(jì)(美國Thermo公司),電泳裝置(美國Bio-rad公司),酶標(biāo)儀(美國Emax公司),HB-100恒溫金屬浴(杭州博日科技有限公司),隔水式電熱恒溫培養(yǎng)箱(重慶帝凡商貿(mào));人淋巴細(xì)胞分離液由北京達(dá)科為生物技術(shù)有限公司提供,PrimeScriptTMRT reagent Kit、RNAiso plus試劑盒、SYBR Premix Ex TaqTMII熒光定量試劑盒均由Takara公司提供,Anti-NLRP3 antibody、Anti-TMS1 antibody、Anti-Caspase-1 antibody均由abcam公司提供,western及IP細(xì)胞裂解液、BCA蛋白濃度測定試劑盒、SDS-PAGE凝膠配制試劑盒、SDS-PAGE蛋白上樣緩沖液均由上海碧云天生物有限公司提供,人IL-1β、IL-18、TGF-β ELISA試劑盒均由上海廣銳生物科技有限公司提供。
1.3 實(shí)驗(yàn)方法
1.3.1 基本資料及臨床生化資料采集 收集所有研究對象的性別、年齡、吸煙史、血壓、身高、體重等基本資料,并計(jì)算出平均動脈壓(mean arterial pressure,MAP)、體重指數(shù)(body mass index,BMI),所有研究對象均隔夜空腹8h以上,次日清晨空腹抽取肘靜脈血20ml,取2ml全血離心獲得血漿后置-80℃冰箱備用。剩余全血應(yīng)用人淋巴細(xì)胞分離液,采用Ficoll-Hypaque密度梯度分離法分離出T2DM組和對照組人PBMCs備用,操作嚴(yán)格按試劑盒說明書進(jìn)行。在我院檢驗(yàn)科檢測所有入選對象的FPG、甘油三酯(triglyceride,TG)、總膽固醇(total cholesterol,TC)、高密度脂蛋白膽固醇(high density lipoprotein cholesterol,HDLC)、低密度脂蛋的膽固醇(Low density liporotein cholesterol, LDLC)、極低密度脂蛋白膽固醇(very low density lipoprotein cholesterol,VLDLC)、糖化血紅蛋白(glycosylated hemoglobin,HbA1c)等生化資料。
1.3.2 RNA提取及逆轉(zhuǎn)錄 應(yīng)用RNAiso plus試劑盒提取人PBMCs總RNA,操作嚴(yán)格按試劑盒說明書進(jìn)行,采用分光光度儀測定RNA濃度及純度,均符合要求后,利用PrimeScriptTMRT reagent Kit進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng),合成cDNA,操作嚴(yán)格按試劑盒說明書進(jìn)行。引物序列見表1,由Takara公司合成。
表1 引物序列Table 1 Primer sequences
1.3.3 RT-qPCR反應(yīng) 應(yīng)用SYBR Premix Ex TaqTMII熒光定量試劑盒進(jìn)行實(shí)時定量PCR反應(yīng),反應(yīng)體系按照說明書配制,反應(yīng)條件為95℃ 30s,95℃ 5s,60℃ 30s,50個循環(huán)。反應(yīng)結(jié)束后,作擴(kuò)增及溶解曲線,每個樣本均設(shè)置3個復(fù)孔,取均值統(tǒng)計(jì)數(shù)據(jù),采用Ct值計(jì)算目的基因的相對表達(dá)量:△△Ct=(CtT2DM組-CtGAPDH)-(Ct對照組-CtGAPDH),病例組目的基因mRNA的相對表達(dá)量= 2-△△Ct。
1.3.4 Western blot 按照western及IP細(xì)胞裂解液說明書操作提取人PBMCs總蛋白,并采用BCA法測定蛋白濃度。取40μg蛋白進(jìn)行8%SDS-PAGE凝膠電泳(條件:80V 30min,100V 60min),裁剪適合寬度的PDVF膜,甲醛浸泡15s,轉(zhuǎn)膜60min,BSA封閉液室溫封閉4h,浸入含蛋白NLRP3(1:100)、ASC(1:1000),Caspase-1(2.5μg/ml)、內(nèi)參蛋白GAPDH(1:500)的一抗稀釋液中, 4℃孵育過夜,次日TBST緩沖液洗膜5min,5次,加入辣根過氧化物酶標(biāo)記的二抗(1:5000),室溫孵育1h,TBST緩沖液洗膜5min(6次,凝膠成像分析系統(tǒng)掃描蛋白條帶,蛋白相對表達(dá)量=目的蛋白/內(nèi)參蛋白GAPDH。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次,取均值統(tǒng)計(jì)數(shù)據(jù)。
1.3.5 ELISA檢測 采用人IL-1β、IL-18、TGF-β ELISA試劑盒,嚴(yán)格參照說明書操作,反應(yīng)終止后,酶標(biāo)儀測定450nm處的吸光度值(OD值),根據(jù)試劑盒提供的標(biāo)準(zhǔn)品濃度及測定的OD值作標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算各組血漿樣本濃度,每個血漿樣本均設(shè)置2個復(fù)孔,取均值統(tǒng)計(jì)數(shù)據(jù)。
2.1 兩組基本情況及血脂、血糖水平變化比較 兩組性別、年齡、吸煙、MAP、TC、LDLC無顯著性差異(均P>0.05);T2DM組BMI、FPG、HbA1c、TG、VLDLC高于對照組,HDLC低于對照組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見表2。
Table2Comparisonoftheplasmalevelsofglucose,lipoproteinsandgeneraldata
變量對照組T2DM組性別(男/女)16/1426/14吸煙(是/否)5/256/34年齡(歲)59.40±8.8061.65±8.95BMI(kg/m2)24.24±2.5526.00±2.90①M(fèi)AP(mmHg")90.83±11.6494.67±10.80FPG(mmol/L)4.70±0.637.15±2.59①HbA1c(×10-2)5.77±0.366.94±0.70①TG(mmol/L)1.29±0.551.84±1.21①TC(mmol/L)4.27±1.054.12±1.21HDLC(mmol/L)1.24±0.301.09±0.23①LDLC(mmol/L)2.73±0.862.37±0.82VLDLC(mmol/L)0.59±0.250.84±0.55①
注:與對照組比較,①P<0.05
2.2 兩組血漿IL-1β、IL-18、TGF-β水平變化比較 T2DM組IL-1β、IL-18、TGF-β高于對照組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見表3。
2.3 兩組NLRP3、ASC、Caspase-1 mRNA水平比較 兩組NLRP3、ASC、Caspase-1 mRNA水平在PBMCs中的表達(dá)差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),見圖1。
Table3ComparisonoftheplasmalevelsofIL-1β,IL-18andTGF-βbetweenT2DMgroupandcontrolgroup
變 量對照組T2DM組IL?1β(ng/L)IL?18(ng/L)TGF?β(ng/L)12 53±2 7950 02±10 181538 33±262 1922 86±1 66①144 14±14 20①2131 38±302 10①
注:與對照組比較,①P<0.05
2.4 兩組NLRP3、ASC、Caspase-1水平比較 T2DM組NLRP3、ASC、Caspase-1 在PBMCs中的表達(dá)均較對照組增高,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見圖2、3。
2.5 兩組NLRP3、ASC、Caspase-1mRNA水平與各變量的Spearman相關(guān)性分析 結(jié)果顯示,NLRP3mRNA在對照組、T2DM組均無相關(guān)性;ASCmRNA在對照組無相關(guān)性,在T2DM組與TC呈正相關(guān),相關(guān)系數(shù)為0.466(P=0.038);Caspase-1mRNA在對照組與FPG呈正相關(guān),相關(guān)系數(shù)為0.394(P=0.031),在T2DM組與BMI呈正相關(guān),相關(guān)系數(shù)為0.463(P=0.040)。
圖1 兩組NLRP3、ASC、Caspase-1 mRNA水平比較Figure 1 Expression of NLRP3, ASC and Caspase-1mRNA in T2DM group and control group注:與對照組比較,①P<0.05
圖2 兩組NLRP3、ASC、Caspase-1水平比較Figure 2 Expression of NLRP3, ASC and Caspase-1 in T2DM group and control group注:與對照組比較,①P<0.05
2.6 兩組NLRP3、ASC、Caspase-1與各變量的Spearman相關(guān)性分析 結(jié)果顯示,NLRP3在對照組與性別呈正相關(guān),相關(guān)系數(shù)為0.429(P=0.020),在T2DM組無相關(guān)性;ASC在對照組與FPG呈正相關(guān),相關(guān)系數(shù)為0.405(P=0.026),在T2DM組與MAP、FPG、TC、IL-1β、IL-18呈正相關(guān),相關(guān)系數(shù)分別為0.465(P=0.039)、0.626(P=0.003)、0.564(P=0.010)、0.502(P=0.024)和0.480(P=0.032);Caspase-1在對照組與MAP、FPG呈正相關(guān),相關(guān)系數(shù)分別為0.447(P=0.013)、0.396(P=0.030),在T2DM組與吸煙、FPG、LDLC 、IL-1β呈正相關(guān),相關(guān)系數(shù)分別為0.546(P=0.013)、0.585(P=0.007)、0.662(P=0.010)和0.624(P=0.003)。
圖3 兩組Western blot檢測結(jié)果
Figure3ResultsofWesternblotinT2DMgroupandcontrolgroup
2.7 IL-1β、IL-18、TGF-β之間Spearman相關(guān)性分析 結(jié)果顯示,IL-1β在T2DM組與TGF-β呈正相關(guān),相關(guān)系數(shù)為0.564(P=0.010),3者之間在對照組無相關(guān)性。
T2DM是一種由胰島β細(xì)胞受損分泌胰島素減少和胰島素抵抗導(dǎo)致的慢性炎性疾病,但T2DM 發(fā)病機(jī)制目前尚不完全清楚。近年來,隨著固有免疫研究的迅速進(jìn)展,有關(guān)固有免疫細(xì)胞炎性途徑介導(dǎo)的炎癥反應(yīng)在自身免疫炎癥性疾病中的作用越來越受到關(guān)注。NLRP3炎性小體是由NLRP3、ASC和無活性的caspase-1前體(pro-caspase-1)組成的多蛋白復(fù)合體,是機(jī)體固有免疫系統(tǒng)的一員,是炎性免疫反應(yīng)的重要組成部分,是炎癥-免疫的橋梁。其活化需要NLRP3氨基端熱蛋白結(jié)構(gòu)域(pyrin domain,PYD),通過PYD-PYD 之間的相互作用結(jié)合ASC,再由ASC 通過CARD-CARD之間相互作用招募無活性的pro-caspase-1,最后炎癥小體生成,并對caspase-1進(jìn)行自身激活,活化后的caspase-1 將對pro-IL-1β、pro-IL-18等底物進(jìn)行切割,以促進(jìn)炎性因子IL-1β 和IL-18 的成熟及分泌[1-3]。
IL-18是活化的單核巨噬細(xì)胞分泌的一種前炎癥因子,在T2DM的發(fā)生發(fā)展過程中起中心介質(zhì)作用,在T2DM前期即出現(xiàn)升高,可作為T2DM發(fā)生、病情變化及預(yù)后的預(yù)測因子,并且與T2DM心血管并發(fā)癥有關(guān)[4],是T2DM并發(fā)心血管事件的一個預(yù)測因子。IL-1β是NLRP3炎性小體活化后產(chǎn)生的主要炎性分子。正常情況下,短暫的血糖水平升高引起急性、低劑量IL-1β產(chǎn)生,刺激胰島β細(xì)胞增殖和胰島素分泌,抑制食欲,減少攝食,從而維持外周血糖水平的穩(wěn)定[5]。但是在慢性高血糖狀態(tài)下,T2DM患者體內(nèi)IL-1β持續(xù)升高,其受體表達(dá)上調(diào),一方面 IL-1β可引起β 細(xì)胞凋亡,其功能衰退及胰島素抵抗[6-7];另一方面,IL-1β 和其他炎性因子如腫瘤壞死因子(tumor necrosis factor,TNF)等協(xié)同干擾體內(nèi)葡萄糖代謝平衡[8]。因此,IL-1β在T2DM 的發(fā)生發(fā)展中起著重要作用[9],被認(rèn)為是T2DM的重要驅(qū)動者。而糖代謝紊亂作為危險信號進(jìn)一步激活I(lǐng)L-1β 的平臺NLRP3 炎性小體。TGF-β是一類蛋白質(zhì)超家族,在機(jī)體通過抑制白細(xì)胞的募集,降低巨噬細(xì)胞的功能[10],減少單核巨噬細(xì)胞的趨化聚集,維持外周調(diào)節(jié)T細(xì)胞的作用,抑制T細(xì)胞向Th1和Th2增殖、激活和分化[11]等機(jī)制抑制炎性反應(yīng)。但其過度表達(dá),將會促進(jìn)T2DM并發(fā)癥的發(fā)生發(fā)展,其機(jī)制包括促進(jìn)細(xì)胞外基質(zhì)成分的合成與積聚,抑制細(xì)胞外基質(zhì)的降解[12-13],促進(jìn)平滑肌細(xì)胞的增生、遷移、分化[13-14],誘導(dǎo)血管重構(gòu)[12-13],刺激內(nèi)皮細(xì)胞合成纖溶酶原激活物抑制劑(plasminogen activator inhibitors, PAI)等細(xì)胞因子而促進(jìn)血栓形成[13],促纖維化作用增加纖維帽厚度等。
本研究顯示,初診T2DM 患者血漿中的炎性因子IL-1β、IL-18 和抗炎因子TGF-β水平顯著高于對照組,提示T2DM患者存在慢性炎癥反應(yīng);初診T2DM 患者PBMCs中NLRP3、ASC、Caspase-1mRNA的表達(dá)與對照組比較無顯著性差異,但ASCmRNA及 Caspase-1mRNA在T2DM組分別與TC、BMI呈正相關(guān),提示雖然T2DM患者NLRP3炎性小體在轉(zhuǎn)錄水平的表達(dá)無顯著性增加,但T2DM患者的血脂代謝異常、肥胖因素已經(jīng)存在促進(jìn)NLRP3炎性小體表達(dá)的傾向;初診T2DM 患者PBMCs中NLRP3、ASC、Caspase-1的表達(dá)均較對照組顯著增高,并且ASC在T2DM組與MAP、FPG、TC呈正相關(guān), Caspase-1在T2DM組與吸煙、FPG、LDLC呈正相關(guān),一方面提示T2DM患者炎性小體在翻譯水平的表達(dá)明顯增加,為NLRP3蛋白復(fù)合體在T2DM患者中激活創(chuàng)造物質(zhì)條件;另一方面提示T2DM患者高血壓、高血糖、TC、LDLC、吸煙是激活NLRP3炎性小體在翻譯水平表達(dá)增加的危險因素,但激活NLRP3炎性小體在翻譯水平表達(dá)增加的危險因素不盡相同。NLRP3炎性小體表達(dá)增加后,T2DM患者體內(nèi)高血糖[15]、活性氧(ROS)[15]、硫氧還原蛋白結(jié)合蛋白[16]、神經(jīng)酰胺濃聚物[17]、胰島淀粉樣多肽[18]等物質(zhì)將通過半通道依賴途徑[19]、溶酶體依賴途徑[20]、ROS的依賴途徑[21-22]等模式激活NLRP3炎性小體。另外,在T2DM組,ASC還與IL-1β、IL-18呈正相關(guān), Caspase-1還與IL-1β呈正相關(guān),且IL-1β與TGF-β呈正相關(guān),提示NLRP3炎性小體的激活,進(jìn)一步導(dǎo)致IL-1β 和IL-18等炎性分子的表達(dá)增加,而IL-1β的表達(dá)增加將促使抗炎因子TGF-β的過度表達(dá),IL-1β 和IL-18等炎性分子的表達(dá)增加及TGF-β等抗炎因子的過度表達(dá),在T2DM及其并發(fā)癥的發(fā)生發(fā)展過程中起著重要作用。
由此可見,高血壓、高血糖、高血脂、吸煙、肥胖是激活NLRP3炎性小體表達(dá)的重要危險因素,NLRP3炎性小體激活后進(jìn)一步促進(jìn)IL-1β、IL-18等炎性分子的表達(dá)及TGF-β等抗炎因子的表達(dá),NLRP3 炎性小體是糖代謝紊亂誘導(dǎo)T2DM 發(fā)生發(fā)展的中心環(huán)節(jié)。加強(qiáng)對血脂、血壓、血糖水平的控制及煙、減肥,阻斷NLRP3炎性小體的表達(dá)及活化途徑,可能對T2DM及其并發(fā)癥的發(fā)生發(fā)展起到抑制作用。進(jìn)一步研究NLRP3炎性小體激活及其調(diào)控機(jī)制,研究IL-18、IL-1β、TGF-β在T2DM發(fā)生發(fā)展過程中的作用,有望進(jìn)一步明確T2DM及其并發(fā)癥在細(xì)胞和分子水平的發(fā)病機(jī)制,為T2DM的臨床診斷、療效觀察、預(yù)后判斷提供新的實(shí)驗(yàn)室檢測指標(biāo),為T2DM及其并發(fā)癥的治療和預(yù)防提供新的突破點(diǎn)。
高血壓、高血糖、高血脂、吸煙、肥胖是激活NLRP3炎性小體表達(dá)的重要危險因素。以NLRP3炎性小體為中心的NLRP3-ASC-Caspase-1-IL-18/IL-1β-TGF-β信號通路可能在初診T2DM的發(fā)生發(fā)展過程中發(fā)揮重要作用。
[1]EunKyeong Jo,Jin Kyung Kim,DongMin Shin,etal. Molecular mechanisms regulating NLRP3 inflammasome activation[J]. Cell Mol Immunol,2016,13(2): 148-159.
[2]Amna Abderrazak,Tatiana Syrovets,Dominique Couchie,etal. NLRP3 inflammasome: From a danger signal sensor to a regulatory node of oxidative stress and inflammatory diseases[J]. Redox Biol,2015,4: 296-307.
[3]Shao BZ, Xu ZQ, Han BZ,etal. NLRP3 inflammasome and its inhibitors: a review[J].Front Pharmacol, 2015,6:262.
[4]Dezayee ZM. Interleukin-18 can predict pre-clinical atherosclerosis and poor glycemic control in type 2 diabetes mellitus[J]. Int J Appl Basic Med Res, 2011,1(2):109-112.
[5]Schroder K, Zhou R, Tschopp J. The NLRP3 inflammasome: a sensor for metabolic danger[J] Science,2010,327(5963):296-300.
[6]Stienstra R, Joosten L A, Koenen T,etal. The inflammasomemediated caspase-1 activation controls adipocyte differentiation and insulin sensitivity[J].Cell Metabolism,2010,12(6): 593-605.
[7]Park YJ, Warnock GL, Ao Z,etal. Dual role of interleukin-1β in islet amyloid formation and its β-cell toxicity: Implications for type 2 diabetes and islet transplantation[J]. Diabetes Obes Metab, 2017,19(5):682-694.
[8]Stanley T L, Zanni M V, Johnsen S,etal. TNF-alpha antagonism with etanercept decreases glucose and increases the proportion of high molecular weight adiponectin in obese subjects with features of the metabolic syndrome[J]. J Clin Endocrinology and Metabolism,2011,96(1): 146-150.
[9]Zhao G, Dharmadhikari G, Maedler K,etal. Possible role of interleukin-1β in type 2 diabetes onset and implications for anti-inflammatory therapy strategies[J]. PLoS Comput Biol, 2014,10(8):1003798.
[10] Zhang XL,Topley N,Ito T,etal. IL-6 regulation of TGF-(beta) receptor compartmentalization and turnover enhances TGF-beta signalling[J]. Biol Chem,2005,280(13):12239-12245.
[11] Takimoto L, Wakabayashi, Sekiya T,etal.Smad2 and Smad3 are redundantly essential for the TGF-beta-mediated regulation of regulatory T plasticity and Th1development[J].J Immunol,2010,185(2):842-855.
[12] Redondo S, Navarro-Dorado J, Ramajo M,etal. The complex regulation of TGF-β in cardiovascular disease[J].Vasc Health Risk Manag, 2012,8:533-539.
[13] Ian Toma and Timothy A. McCaffrey Transforming growth factor-β and atherosclerosis: interwoven atherogenic and atheroprotective aspects[J].Cell Tissue Res,2012,347(1): 155-175.
[14] Suwanabol PA, Seedial SM, Shi X,etal. Transforming growth factor-β increases vascular smooth muscle cell proliferation through the Smad3 and extracellular signal-regulated kinase mitogen-activated protein kinases pathways[J].J Vasc Surg, 2012,56(2):446-454.
[15] 胡龍江,周音頻,呂湛,等. NLRP3 炎性小體與2 型糖尿病及冠心病并發(fā)癥的關(guān)系[J/CD]. 中華臨床醫(yī)師雜志:電子版,2015,9(23):4428-4431.
[16] Masters SL, Latz E, O'Neill LA. The inflammasome in atherosclerosis and type 2 diabetes[J].Sci Transl Med,2011,3(81):81ps17.
[17] Vandanmagsar B, Youm YH, Ravussin A,etal. The NLRP3 inflammasome instigates obesity-induced inflammation and insulin resistance[J].Nat Med,2011,17(2):179-188.
[18] Masters SL, Dunne A, Subramanian SL,etal. Activation of the NLRP3 inflammasome by islet amyloid polypeptide provides a mechanism for enhanced IL-1β in type 2 diabetes[J].Nat Immunol, 2010,11(10):897-904.
[19] Marina-García N, Franchi L, Kim YG,etal. Pannexin-1-mediated intracellular delivery of muramyl dipeptide induces caspase-1 activation via cryopyrin /NLRP3 independently of Nod2[J]. J Immunol,,2008,180(6):4050-4057.
[20] Hornung V, Bauernfeind F, Halle A,etal. Silica crystals and aluminum salts activate the NALP3 inflammasome through phagosomal destabilization[J]. Nat Immunol,,2008,9(8): 847-856.
[21] Cassel SL, Eisenbarth SC, Iyer SS.etal. The Nalp3 inflammasome is essential for the development of silicosis[J]. Proc Natl Acad Sci USA,2008,105(26):9035-9040.
[22] Dostert C, Pétrilli V, Van Bruggen R,etal. Innate immune activation through Nalp3 inflammasome sensing of asbestos and silica[J]. Science,2008,320(5876): 674-677.