王皓楠, 靳鵬飛, 康 迅, 謝清標(biāo), 劉文波, 鄭服叢, 繆衛(wèi)國
(海南大學(xué)環(huán)境與植物保護(hù)學(xué)院,海南海口 570228)
芽孢桿菌在生長過程中能夠產(chǎn)生不同的抑菌物質(zhì),已報(bào)道的脂肽類物質(zhì)是芽孢桿菌作為生防菌產(chǎn)生的最主要的抑菌物質(zhì),尤其是其可以產(chǎn)生具有極高生物工程利用價(jià)值的脂肽類和肽類抗生素[1-2],如非核糖體途徑合成的脂肽類抗生素表面活性素(surfactin)、伊枯草菌素(iturin)和豐源素(fengycin);核糖體途徑合成的肽類抗生素枯草菌素(subtilin)和類羊毛硫抗生素(lantibiotic-like peptides)[3-4]等。脂肽類物質(zhì)在植物病害生物防治過程中發(fā)揮著重要的作用[5-12],其結(jié)構(gòu)一般是由1個(gè)β-羥基脂肪酸與7~10個(gè)氨基酸以酰胺鍵形式連接的環(huán)肽[13]。Iturin家族的脂肽類化合物由七肽與14~17個(gè)碳原子的β-氨基脂肪酸鏈相連而成,包括7個(gè)異構(gòu)體iturin A、iturin C、桿菌抗霉素(bacillomycin)D、bacillomycin F、bacillomycin L、bacillomycin LC和抗霉枯草菌素(mycosubtili)。在體外檢測中,iturin表現(xiàn)出廣譜的抗真菌活性和微弱的抑細(xì)菌活性,主要抑制真菌生長[14-18]。Surfactin家族脂肽類化合物是七肽與β-羥基脂肪酸交聯(lián)形成的內(nèi)酯環(huán)狀結(jié)構(gòu),細(xì)分為surfactin A、surfactin B、surfactin C1、surfactin C2等,主要抑制細(xì)菌、病毒、支原體生長[18-19]。Fengycin是由十肽與β-氨基脂肪酸鏈(C14~C18)形成的內(nèi)酯環(huán),包括fengycinA和fengycinB這2類——對絲狀真菌有強(qiáng)烈的抑制作用。另有研究表明,surfactin與iturin、surfactin與fengycin、iturin與fengycin兩兩之間存在協(xié)同效應(yīng),能夠有效地增強(qiáng)后者的抑菌活性[18,20-21]。
芽孢桿菌脂肽類抗生素合成基因的特點(diǎn)是抗生素合成受一個(gè)大的基因簇控制,基因簇由合成基因、調(diào)控基因共同組成[22]。脂肽類抗生素是通過非核糖體途徑合成的,其合成酶須要翻譯后經(jīng)修飾才有活性,該過程由共價(jià)調(diào)節(jié)酶磷酸泛酰巰基乙胺轉(zhuǎn)移酶(phosphopantetheinyl transferase,PPTases)催化[23]。Surfactin由surfactin合成酶,即非核糖體多肽合成酶(nonribosomalpeptide synthetases,NRPS)催化得到,在sfp基因缺失的情況下將不能產(chǎn)生surfactin,將外源基因整合入枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis)168菌株中,使其產(chǎn)surfactin[24]。在枯草芽孢桿菌168中由于沒有編碼PPTases的基因,盡管其含有surfactin和fengycin等2種脂肽類抗生素合成酶基因,卻不產(chǎn)生任何脂肽類抗生素[23]。芽孢桿菌脂肽的快速檢測一般采用分析化學(xué)的方法,如高效液相質(zhì)譜、核磁共振等方法。目前,用分子生物學(xué)來檢測芽孢桿菌脂肽類物質(zhì)越來越普遍,根據(jù)芽孢桿菌脂肽的生物合成相關(guān)基因(sfp、srf、fenD、ituC、bmyB等)設(shè)計(jì)引物,從而快速檢測抗菌脂肽。
前期研究發(fā)現(xiàn),筆者所在實(shí)驗(yàn)室獲得的解淀粉芽孢桿菌(Bacillusamyloliquefaciens)HAB-6菌株具有廣譜抑菌活性,本研究對HAB-6菌株產(chǎn)脂肽類物質(zhì)的機(jī)制進(jìn)行初步探究,表明其基因組中含有脂肽類物質(zhì)的合成基因和調(diào)控基因,可以為今后研究HAB-6菌株中脂肽類物質(zhì)的功能提供理論基礎(chǔ)。
解淀粉芽孢桿菌HAB-6菌株由筆者所在實(shí)驗(yàn)室從豇豆中分離得到;芒果炭疽病菌(ColletotrichumgloeosporioidesPenz)為筆者所在實(shí)驗(yàn)室保存,作為HAB-6菌株抑菌活性測定的主要靶標(biāo)菌;感受態(tài)細(xì)胞為筆者所在實(shí)驗(yàn)室保存的大腸桿菌(Escherichiacoli)DH5α。
LB液體培養(yǎng)基:胰蛋白胨10 g、酵母粉5 g,NaCl 10 g、5 mol/L NaOH調(diào)節(jié)pH值至7,用去離子水定容至 1 L;馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基(PDA):馬鈴薯200 g、葡萄糖20 g、瓊脂20 g、去離子水定容至1 L。
HAB-6菌株接種于LB培養(yǎng)基中,在28 ℃、180 r/min條件下培養(yǎng)48 h。提取HAB-6菌株總DNA,以總DNA為模板,分別用10對ituC、srfAB、sboA、ituD、qk、fenD、bamC、yndj、ituB、fenB脂肽類抗生素合成相關(guān)基因引物[25](表1),進(jìn)行靶標(biāo)基因的PCR擴(kuò)增。PCR反應(yīng)條件:95 ℃ 5 min;95 ℃ 60 s、52 ℃ 30 s、72 ℃ 60 s,30個(gè)循環(huán);72 ℃ 10 min。PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)電泳膠回收后進(jìn)行TA克隆,轉(zhuǎn)化后送華大基因公司測序,測序結(jié)果經(jīng)Blast比對分析。
表1 HAB-6菌株擴(kuò)增基因及引物序列
以HAB-6菌株總DNA為模板,分別用6對脂肽類關(guān)鍵合成酶基因ituA、ituD、lpa-14、sfp、mycB、fenB的引物進(jìn)行靶標(biāo)基因的PCR擴(kuò)增。PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)電泳膠回收后進(jìn)行TA克隆、轉(zhuǎn)化后送華大基因測序,結(jié)果經(jīng)NCBI數(shù)據(jù)庫Blast比對分析。
表2 擴(kuò)增基因及引物序列
HAB-6菌株發(fā)酵液于10 000 r/min離心10 min,去除菌體得離心上清液,6 mol/L的HCl溶液調(diào)pH值至2.0,4 ℃靜置過夜,離心收集沉淀,用甲醇溶液溶解沉淀,為脂肽類物質(zhì)粗提物[9]。用濾紙片法檢測脂肽類物質(zhì)的抑菌活性。
色譜柱SMB200-12C18柱(4.6 mm×250 mm,12);流動相為0.05%甲酸水溶液(A) ∶乙腈(B),梯度洗脫(表1);流速為 1 mL/min;柱溫30 ℃;檢測波長235 nm;進(jìn)樣量20 mL[22]。
表3 分析色譜梯度洗脫程序
將芒果炭疽病菌接種于9.0 cm PDA培養(yǎng)平板中央,在距離中央2.5 cm的位置等距離接種HAB-6菌體和濾紙片,每片濾紙片上加15 μL HAB-6菌株發(fā)酵上清液和脂肽類粗提物,將培養(yǎng)皿倒置于28 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)5 d,觀察。
用10對引物擴(kuò)增,HAB-6菌株中分5個(gè)基因片段ituC、srfAB、ituD、fenD、yndj與目標(biāo)片段長度一致(圖1)。對擴(kuò)增得到的5個(gè)基因片段進(jìn)行測序,經(jīng)NCBI的Blast比對分析,分別為ituC、srfAB、ituD、fenD、yndj,條帶大小與目標(biāo)條帶大小一致。其中HAB-6菌株中的ituC基因序列與B.subtilisB010菌株的ituC基因(GU062715.1)同源性達(dá)到97%,HAB-6菌株中的srfAB基因序列與B.amyloliquefaciens菌株的srfAB基因(AJ575642.1)同源性達(dá)到96%,HAB-6菌株中的ituD基因序列與B.amyloliquefaciensQ-426菌株的ituD基因(JQ271536.1)同源性達(dá)到98%,HAB-6菌株中的fenD基因序列與B.amyloliquefaciensSQR9菌株的fenD基因(CP006890.1)同源性達(dá)到98%,HAB-6菌株中的yndj基因序列與B.amyloliquefaciensSQR9菌株的yndj基因(JN093032.1)同源性達(dá)到97%。
用10對引物擴(kuò)增,HAB-6菌株中得到5個(gè)基因片段ituA、lpa-14、sfp、mycB、fenB與目標(biāo)片段長度一致(圖2)。對擴(kuò)增得到的5個(gè)基因片段進(jìn)行測序,經(jīng)NCBI的Blast比對分析,HAB-6 菌株中的ituA基因序列與B.amyloliquefaciens菌株的ituA基因(KF765804.1)同源性達(dá)到98%;HAB-6菌株中的lpa-14基因序列與B.subtilisRP24菌株的lpa-14基因(EU797520.1)同源性達(dá)到98%;HAB-6菌株中的sfp基因序列與B.amyloliquefaciensS20菌株sfp基因(JX414225.1)同源性達(dá)到99%;HAB-6菌株中的mycB基因序列與B.amyloliquefaciensQ-426菌株的mycB基因(JQ271536.1)同源性達(dá)到96%;HAB-6菌株中的fenB基因序列與B.amyloliquefaciensS20菌株的fenB基因(JX414225.1)同源性達(dá)到96%。
通過HAB-6菌株脂肽類物質(zhì)粗提物的液質(zhì)聯(lián)用可以發(fā)現(xiàn),保留時(shí)間在3.31、7.70、24.67、25.35 min對應(yīng)的相對分子質(zhì)量分別為1 041.5、1 083.6、1 006.6、1 034.7(圖3),與脂肽類物質(zhì)相對分子質(zhì)量吻合(表4)。質(zhì)荷比(m/z) 1 042.5、1 084.6、1 007.6、1 035.7所對應(yīng)的脂肽類抗生素為C14Iturin A、C17Iturin A、C13Surfactin A、C15Surfactin C[26]。
通過對峙培養(yǎng),顯示HAB-6菌株及其發(fā)酵上清液均對芒果炭疽病菌有明顯的抑制作用,產(chǎn)生明顯的抑菌帶,但將HAB-6菌株發(fā)酵離心上清液通過酸沉淀法提取的脂肽類物質(zhì)對芒果炭疽病菌沒有抑菌活性,說明脂肽類物質(zhì)不是 HAB-6 菌株的抑菌活性物質(zhì)(圖4)。
芽孢桿菌在自然生長和發(fā)酵培養(yǎng)后期產(chǎn)生的脂肽類物質(zhì)是其最重要的抗菌物質(zhì)[26]。Iturin只限于枯草芽孢桿菌和解淀粉芽孢桿菌中產(chǎn)生,抑制植物病原菌。Iturin家族通過與細(xì)胞膜相互作用引起孔隙形成,普遍對多種真菌有較強(qiáng)的抗真菌活性[27]。于是根據(jù)已知脂肽類物質(zhì)的基因序列設(shè)計(jì)引物進(jìn)行PCR,與已知基因經(jīng)Blast比對,顯示HAB-6菌株有合成脂肽類物質(zhì)的5條基因。進(jìn)一步設(shè)計(jì)引物對合成脂肽類物質(zhì)關(guān)鍵酶基因進(jìn)行擴(kuò)增,HAB-6菌株含有編碼關(guān)鍵酶的5條基因。Sfp基因編碼的4′-磷酸泛酰巰基乙胺腺苷酰轉(zhuǎn)移酶是芽孢桿菌非核糖體途徑脂肽類物質(zhì)合成的關(guān)鍵基因。SrfAB編碼surfactin合成酶,surfactin合成酶通過磷酸泛巰基轉(zhuǎn)移酶將4′-磷酸泛酰巰基乙胺腺苷酰轉(zhuǎn)移酶以硫酯鍵連接到PCP結(jié)構(gòu)域上[26-30],活化后啟動surfactin的合成[23]。在B.subtilis168中由于沒有編碼PPTases的基因,即sfp,盡管其含有surfactin和fengycin這2種脂肽類抗生素合成酶基因,卻不產(chǎn)生任何脂肽類抗生素[26,31]。筆者所在實(shí)驗(yàn)室另一株解淀粉芽孢桿菌HAB-2菌株缺失sfp基因,但有l(wèi)pa-14基因,同樣能產(chǎn)生有抑菌活性的脂肽類物質(zhì)。HAB-6菌株含有編碼4′-磷酸泛酰巰基乙胺腺苷酰轉(zhuǎn)移酶的sfp基因、lpa-14基因以及編碼surfactin合成酶的srfAB基因,從基因的角度初步推測 HAB-6 菌株產(chǎn)生的脂肽類物質(zhì)應(yīng)具有抑菌活性。
通過LC-MS可以看出,HAB-6菌株代謝產(chǎn)生了 C14Iturin A、 C17Iturin A、 C13Surfactin A、C15Surfactin C等脂肽類物質(zhì)。Iturin類家族的脂肽類化合物在抑制真菌病害中起著重要作用[9-10]。最近,Tanaka等研究表明,Iturin類化合物抗真菌活性隨側(cè)鏈長度增加:C17>C16>C15[28]。很多研究顯示脂肽類物質(zhì)具有相互協(xié)同作用[29]。對峙培養(yǎng)結(jié)果顯示,HAB-6菌株以及其發(fā)酵液有抑制芒果炭疽病菌的活性,但是從HAB-6菌株發(fā)酵液中提取的脂肽類化合物沒有抑制真菌的活性。說明提取的脂肽類物質(zhì)不是HAB-6菌株抑制真菌的主要物質(zhì)。Surfactin家族主要抑制細(xì)菌、病毒,對真菌沒有明顯的抑制作用,可能HAB-6菌株代謝產(chǎn)生的脂肽類物質(zhì)中以surfactin為主。因此,HAB-6菌株脂肽類物質(zhì)代謝途徑以及抑菌活性物質(zhì)的分離純化還有待進(jìn)一步研究。
表4 HPLC-ESI-MS脂肽類物質(zhì)活性檢測分析
解淀粉芽孢桿菌HAB-6具有脂肽類物質(zhì)的合成基因yndj、srfAB、ituD、fenD、ituC和調(diào)控基因fenB、lpa-14、sfp、mycB、ituA,代謝產(chǎn)生C14Iturin A、C17Iturin A、C13Surfactin A、C15Surfactin C,但是酸沉淀提取得到的脂肽類物質(zhì)不是 HAB-6 菌株抑制真菌的主要物質(zhì)。
[1]Romero D,de Vicente A,Rakotoaly R H,et al. The iturin and fengycin families of lipopeptides are key factors in antagonism ofBacillussubtilistowardPodosphaerafusca[J]. Molecular Plant Microbe Interactions,2007,20(4):430-440.
[2]高學(xué)文,姚仕義,王金生. 枯草芽孢桿菌B2菌株產(chǎn)生的抑菌活性物質(zhì)分析[J]. 中國生物防治學(xué)報(bào),2003,19(4):175-179.
[3]李寶慶,鹿秀云,郭慶港,等. 枯草芽孢桿菌BAB-1脂肽類化合物的分離及穩(wěn)定性分析[J]. 中國農(nóng)業(yè)科學(xué),2009,41(2):196-202.
[4]Stein T,Borchert S,Conrad B,et al. Two different lantibiotic-like peptides originate from the ericin gene cluster ofBacillussubtilisA1/3[J]. Journal of Bacteriology,2002,184(6):1703-1711.
[5]謝永利,馬莉貞,徐志偉,等. 青海柴達(dá)木極端干旱沙地分離芽孢桿菌的分子鑒定及拮抗活性分析[J]. 微生物學(xué)通報(bào),2012,39(8):1079-1086.
[6]Stein T.Bacillussubtilisantibiotics:structures,syntheses and specific functions[J]. Molecular Microbiology,2005,56(4):845-857.
[7]曹小紅,廖振宇,王春玲,等.BacillusnattoTK-1產(chǎn)脂肽的純化、抑菌活性及其表面活性劑特性[J]. 中國生物工程雜志,2008,28(1):44-48.
[8]別小妹,陸兆新,呂鳳霞,等.BacillussubtilisfmbR抗菌物質(zhì)的分離和鑒定[J]. 中國農(nóng)業(yè)科學(xué),2006,39(11):2327-2334.
[9]高學(xué)文,姚仕義,王金生. 基因工程菌枯草芽孢桿菌GEB3產(chǎn)生的脂肽類抗生素及其生物活性研究[J]. 中國農(nóng)業(yè)科學(xué),2003,36(12):1496-1501.
[10]Deleu M,Paquot M,Nylander T. Effect of fengycin,a lipopeptide produced byBacillussubtilis,on model biomembranes[J]. Biophysical Journal,2008,94(7):2667-2679.
[11]Thimon L,Peypoux F,Wallach J,et al. Effect of the lipopeptide antibiotic,iturin A,on morphology and membrane ultrastructure of yeast cells[J]. FEMS Microbiology Letters,1995,128(2):101-106.
[12]別小妹,呂鳳霞,陸兆新,等.BacillussubtilisfmbJ脂肽類抗菌物質(zhì)的分離和鑒定[J]. 生物工程學(xué)報(bào),2006,22(4):644-649.
[13]Yu G Y,Sinclair J B,Hartman G L,et al. Production of iturin A byBacillusamyloliquefacienssuppressingRhizoctoniasolani[J]. Soil Biology and Biochemistry,2002,34(7):955-963.
[14]Hiradate S,Yoshida S,Sugie H,et al. Mulberry anthracnose antagonists (iturins) produced byBacillusamyloliquefaciensRC-2[J]. Phytochemistry,2002,61(6):693-698.
[15]Moyne A L,Shelby R,Cleveland T E,et al. Bacillomycin D:an iturin with antifungal activity againstAspergillusflavus[J]. Journal of Applied Microbiology,2001,90(4):622-629.
[16]Kracht M,Rokos H,?ZEL M,et al. Antiviral and hemolytic activities of surfactin isoforms and their methyl ester derivatives[J]. The Journal of Antibiotics,1999,52(7):613-619.
[17]Zeriouh H,Romero D,García-Gutiérrez L,et al. The iturin-like lipopeptides are essential components in the biological control arsenal ofBacillussubtilisagainst bacterial diseases of cucurbits[J]. Molecular Plant Microbe Interactions,2011,24(12):1540-1552.
[18]劉 俊. 解淀粉芽孢桿菌C06防治桃褐腐病菌的機(jī)制及其產(chǎn)生的γ-多聚谷氨酸在定殖中的作用[D]. 南京:南京農(nóng)業(yè)大學(xué),2010.
[19]Peypoux F,Bonmatin J M,Wallach J. Recent trends in the biochemistry of surfactin[J]. Applied Microbiol and Biotechnol,1999,51:553-563
[20]Cazorla F M,Romero D,Pérez-García A,et al. Isolation and characterization of antagonisticBacillussubtilisstrains from the avocado rhizoplane displaying biocontrol activity[J]. Journal of Applied Microbiology,2007,103(5):1950-1959.
[21]Ongena M,Jacques P,Touré Y,et al. Involvement of fengycin-type lipopeptides in the multifaceted biocontrol potential ofBacillussubtilis[J]. Applied Microbiology & Biotechnology,2005,69(1):29-38.
[22]鄧建良. 解淀粉芽孢桿菌YN-1抑制植物病原真菌活性物質(zhì)研究[D]. 武漢:華中農(nóng)業(yè)大學(xué),2009.
[23]劉麗霞. Surfactin合成酶相關(guān)基因研究[D]. 南京:南京農(nóng)業(yè)大學(xué),2012.
[24]曹 云. SQR9微生物有機(jī)肥防治黃瓜土傳枯萎病的效應(yīng)與機(jī)制研究[D]. 南京:南京農(nóng)業(yè)大學(xué),2011.
[25]魯小城. 一株枯草芽孢桿菌抗植物病原真菌活性物質(zhì)的研究[D]. 杭州:浙江大學(xué),2006.
[26]Lambalot R H,Gehring A M,F(xiàn)lugel R S,et al. A new enzyme superfamily-the phosphopantetheinyl transferases[J]. Chemistry & Biology,1996,3(11):923-936.
[27]Tabbene O,Kalai L,Ben S I,et al. Anti-Candidaeffect of bacillomycin D-like lipopeptides fromBacillussubtilisB38[J]. FEMS Microbiology Letters,2011,316(2):108-114.
[28]Tanaka K,Ishihara A,Nakajima H. Isolation of anteiso-C17,iso-C17,iso-C16,and iso-C15bacillomycin D fromBacillusamyloliquefaciensSD-32 and their antifungal activities against plant pathogens[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry,2014,62(7):1469-1476.
[29]Ongena M,Jacques P.Bacilluslipopeptides:versatile weapons for plant disease biocontrol[J]. Trends in Microbiology,2008,16(3):115-125.
[30]Reuter K,Mofid M R,Marahiel M A,et al. Crystal structure of the surfactin synthetase‐activating enzyme Sfp:a prototype of the 4′-phosphopantetheinyl transferase superfamily[J]. The EMBO Journal,1999,18(23):6823-6831.
[31]Tsuge K,Ano T,Shoda M. Isolation of a gene essential for biosynthesis of the lipopeptide antibiotics plipastatin B1 and surfactin inBacillussubtilisYB8[J]. Archives of Microbiology,1996,165(4):243-251.