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        Xklp2靶蛋白對肺癌細(xì)胞裸鼠成瘤能力的影響及機制研究

        2018-03-24 02:57:41楊忠信李曉宇黃志昂張雙林河南大學(xué)第一附屬醫(yī)院胸外科心內(nèi)科病理科呼吸科河南開封475001
        實用醫(yī)院臨床雜志 2018年2期
        關(guān)鍵詞:成瘤培養(yǎng)液肺癌

        楊忠信,李曉宇,蔡 靜,黃志昂,張雙林(河南大學(xué)第一附屬醫(yī)院 .胸外科,.心內(nèi)科,.病理科,.呼吸科,河南 開封 475001)

        肺癌是一種發(fā)病率高、死亡率高的惡性腫瘤,其發(fā)病率呈現(xiàn)逐年上升的趨勢。肺癌的發(fā)病機制極為復(fù)雜,生活環(huán)境、職業(yè)環(huán)境、遺傳因素、吸煙等均可能與肺癌的發(fā)生有關(guān),其早期發(fā)病癥狀不明顯,大多數(shù)患者在發(fā)現(xiàn)時已經(jīng)處于肺癌的晚期,嚴(yán)重影響了肺癌的治療[1,2]。肺癌的發(fā)生與多種癌基因和抑癌基因的調(diào)控有關(guān),采用基因技術(shù)靶向治療和診斷肺癌已經(jīng)成為目前研究的重點。Xklp2靶蛋白(targeting protein for Xenopus kinesin-like protein 2,TPX2)在惡性腫瘤中高表達,是一個與紡錘體有關(guān)的微管相關(guān)蛋白,受到細(xì)胞周期的嚴(yán)格調(diào)控[3]。有研究顯示,TPX2在宮頸癌[4]、肺癌[5]、甲狀腺癌[6]等多種癌癥中過度表達,是近年來發(fā)現(xiàn)的一種癌基因。在乳腺癌等癌細(xì)胞中干擾TPX2表達可以誘導(dǎo)癌細(xì)胞凋亡,抑制癌細(xì)胞生長[7]。本研究探討TPX2對肺癌細(xì)胞增殖、凋亡及裸鼠成瘤能力的影響,為研究TPX2在肺癌發(fā)病中的作用奠定基礎(chǔ),為靶向TPX2治療肺癌提供理論基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1材料肺癌細(xì)胞A549購自于中國科學(xué)院細(xì)胞庫。BALB/c裸鼠18只,18~22 g,4~6周齡,均購自常州卡文斯實驗動物中心。二喹啉甲酸(bicinchoninic acid,BCA)蛋白定量檢測試劑盒購自于北京solarbio;含有siRNA TPX2和siRNA陰性對照的慢病毒由實驗室構(gòu)建保存;活化的含半胱氨酸的天冬氨酸蛋白水解酶3(Cleaved cysteinyl aspartate specific proteinase 3,Cleaved Caspase-3)多克隆抗體、TPX2多克隆抗體、p53多克隆抗體購自于美國Abcam;TPX2和甘油醛-3-磷酸脫氫酶(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,GAPDH)引物由上海生工合成;RNA提取試劑盒購自于美國Thermo。

        1.2細(xì)胞培養(yǎng)及慢病毒感染將保存有A549細(xì)胞的凍存管放在37 ℃的水浴中,不斷晃動,使細(xì)胞在1 min內(nèi)融化,加入含有10%胎牛血清的RPMI1640細(xì)胞培養(yǎng)液,接種到T25細(xì)胞瓶中,放在37 ℃,5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。觀察細(xì)胞密度為80%時,把原來的細(xì)胞培養(yǎng)液吸除以后,用磷酸鹽緩沖液(Phosphate Buffered Saline,PBS)將細(xì)胞洗滌兩次,加入3 ml的含有0.25%的胰蛋白酶消化細(xì)胞1 min,1000×g離心10 min,棄酶消化液,加入細(xì)胞培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)。在轉(zhuǎn)染前的8 h,取培養(yǎng)至對數(shù)期的A549細(xì)胞,以每毫升含有3×104個/ml種植到6孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,待細(xì)胞生長至60%后,按照MOI=50加入病毒液,10 h后,更換細(xì)胞培養(yǎng)液,培養(yǎng)3 d后,用puromycin篩選感染率超過90%的細(xì)胞進行后續(xù)實驗研究。將感染siRNA TPX2和siRNA陰性對照的慢病毒的細(xì)胞記為siRNA TPX2組和siRNA-NC組,同時以不做處理的細(xì)胞為Control組。

        1.3RT-PCR取穩(wěn)定感染后的Control組、siRNA-NC組、siRNA TPX2組細(xì)胞,按照RNA提取試劑盒提取細(xì)胞中的RNA,加入20 μl的DEPC處理后的雙蒸水將RNA溶解后,在-80 ℃保存。逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,Realtime PCR檢測TPX2水平。PCR程序為:94 ℃,5 min;94 ℃,30 s;60 ℃,30 s;72 ℃,10 min;共40個循環(huán)。用ABI prism 7300 SDS Software軟件分析,用2-△△Ct法計算TPX2 mRNA水平。△△Ct=(實驗組目的基因的Ct-實驗組內(nèi)參基因的Ct)-(Control組目的基因的Ct-Control組內(nèi)參基因的Ct)。GAPDH上游引物為5,-ACCTGACCTGCCGTCTAGAA-3’,下游引物5,-TCCACCACCCTGTTGCTGTA-3’。TPX2上游引物為5,-AACAATCCATTCCGTCAA-3’,下游引物5,-TGCAGGTGGCATACAAGG-3’。

        1.4Westernblot 取穩(wěn)定感染后的Control組、siRNA-NC組、siRNA TPX2組細(xì)胞,用細(xì)胞蛋白提取試劑盒提取細(xì)胞中的總蛋白,用BCA法對蛋白樣品進行定量檢測。用10%的分離膠和5%的濃縮膠進行電泳。把蛋白樣品與上樣緩沖液混合煮沸5 min后,每孔加入30 μg的蛋白樣品,80 V電壓電泳,觀察溴酚藍到分離膠和濃縮膠的交界處以后,把電壓調(diào)整到100 V,直到溴酚藍進入分離膠的底端。轉(zhuǎn)膜:0.1 A的電泳轉(zhuǎn)膜1.5 h,把蛋白凝膠中的蛋白轉(zhuǎn)移到聚偏二氟乙烯(polyvinylidene fluoride,PVDF)膜上。抗體孵育:5%脫脂奶粉在室溫封閉1 h后,用PBST(PBS中加吐溫)洗滌3次,加入一抗(1∶1500稀釋)4 ℃過夜反應(yīng),PBST洗滌3次,加入二抗(1∶2000稀釋)在室溫孵育1 h后,DAB顯色,用Bio-Rad顯影,以GAPDH為內(nèi)參,對蛋白進行定量分析。

        1.5MTT取Control組、siRNA-NC組、siRNA TPX2組細(xì)胞,按照每毫升含有2×104個細(xì)胞/ml接種到96孔板中,每孔中加入200 μl的細(xì)胞懸浮液,每組設(shè)置5個復(fù)孔,培養(yǎng)48 h以后,將細(xì)胞培養(yǎng)液棄去,在每孔中加入180 μl的細(xì)胞培養(yǎng)液和20 μl的噻唑藍(Methylthiazolyldiphenyl-tetrazolium bromide,MTT)溶液,在CO2培養(yǎng)箱中孵育4 h,棄上清,在每個孔中加入150 μl的二甲基亞砜溶液,混合后,酶標(biāo)儀檢測570 nm的A值。

        1.6流式細(xì)胞術(shù)取Control組、siRNA-NC組、siRNA TPX2組細(xì)胞,培養(yǎng)48 h后,把細(xì)胞培養(yǎng)液上清吸除以后,加入胰蛋白酶消化后,用PBS將細(xì)胞沉淀洗滌3次,轉(zhuǎn)移到離心管中,1000×g離心5 min,用PBS將細(xì)胞沉淀制成1×106個細(xì)胞/ml的細(xì)胞懸浮液,1000×g離心5 min,棄上清,加入150 μl的結(jié)合緩沖液,混合后,加入5 μl的膜聯(lián)蛋白 V-FITC(Annexin V-FITC)和10 μl的碘化丙啶(Propidium Iodide,PI),避光孵育后,加入200 μl的結(jié)合緩沖液,流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞凋亡情況。

        1.7裸鼠成瘤取18只裸鼠,隨機分成3組,每組6只。將Control組、siRNA-NC組、siRNA TPX2組細(xì)胞配制成每毫升含有5×107個細(xì)胞的懸浮液,按照每只裸鼠200 μl接種到裸鼠的左側(cè)的腋窩皮下,18只裸鼠均出現(xiàn)腫瘤,在20 d后,脊椎離斷法將裸鼠處死以后,用游標(biāo)卡尺記錄腫瘤的短徑和長徑,計算腫瘤的體積,稱量腫瘤的重量。腫瘤體積=長徑×短徑2/2。測量結(jié)束后,取腫瘤組織,Western blot法檢測組織中 Cleaved Caspase-3、TPX2、p53水平。

        1.8統(tǒng)計學(xué)方法采用SPSS 22.0統(tǒng)計分析數(shù)據(jù)。計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,多組比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD-t檢驗。P< 0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1慢病毒感染后TPX2水平如圖1和表1中所示,siRNA-NC組細(xì)胞中TPX2 mRNA和蛋白水平與Control組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P> 0.05)。siRNA TPX2組細(xì)胞中TPX2 mRNA和蛋白水平與Control組比較明顯降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P< 0.05)。細(xì)胞轉(zhuǎn)染TPX2 siRNA可以抑制肺癌細(xì)胞中TPX2基因的轉(zhuǎn)錄和表達。

        圖1 Western blot檢測TPX2表達

        表1 三組TPX2表達水平比較

        *與Control組比較,P< 0.05

        2.2TPX2對細(xì)胞增殖凋亡影響如圖2和表2所示,siRNA-NC組A值和凋亡率與Control組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P> 0.05)。siRNA TPX2組細(xì)胞A值與Control組比較明顯降低,細(xì)胞凋亡率明顯升高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P< 0.05)。下調(diào)TPX2 可以抑制肺癌細(xì)胞增殖,促進肺癌細(xì)胞凋亡。

        圖2 細(xì)胞凋亡檢測結(jié)果

        2.3TPX2對裸鼠成瘤影響如表3所示,siRNA-NC組細(xì)胞腫瘤體積和腫瘤重量與Control組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P> 0.05)。siRNA TPX2組細(xì)胞腫瘤體積和腫瘤重量與Control組比較明顯降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P< 0.05)。下調(diào)TPX2 可以抑制肺癌細(xì)胞裸鼠成瘤能力。

        表2 三組A值和凋亡率比較

        *與Control組比較,P< 0.05

        表3 三組腫瘤體積和腫瘤重量比較

        *與Control組比較,P< 0.05

        2.4腫瘤組織中CleavedCaspase-3、TPX2、p53表達水平如見圖3和表4所示,siRNA-NC組Cleaved Caspase-3、TPX2、p53表達水平與Control組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P> 0.05)。siRNA TPX2組Cleaved Caspase-3、p53表達水平與Control組比較明顯升高,TPX2表達水平與Control組比較明顯降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P< 0.05)。下調(diào)TPX2 可以促進Cleaved Caspase-3、p53表達。

        圖3 Western blot檢測腫瘤組織中Cleaved Caspase-3、TPX2、p53水平

        表4 三組腫瘤組織中Cleaved Caspase-3、TPX2、p53水平比較

        *與Control組比較,P< 0.05

        3 討論

        TPX2最初發(fā)現(xiàn)于有爪蟾蜍中,因其作為Xklp2靶蛋白而命名,在有絲分裂中G1/S期表達上調(diào),而在S/G2期主要在細(xì)胞核內(nèi)表達,分裂期主要在紡錘體極表達[8]。TPX2是一種微管蛋白,參與Xklp2的C端同微管結(jié)合的過程,也與染色體的不穩(wěn)定有關(guān)。關(guān)于染色體不穩(wěn)定性與腫瘤發(fā)生的關(guān)系已經(jīng)有相關(guān)報道,大致可以概括為:致癌劑通過影響染色體或者是紡錘體的蛋白,或者基因毒性劑把有絲分裂的基因突變后,導(dǎo)致染色體不穩(wěn)定,另外染色體不穩(wěn)定還可以誘發(fā)染色體核型的破壞,導(dǎo)致催化性染色體核型的形成,而癌前性、致死性、癌性等核型的產(chǎn)生均是由此產(chǎn)生的,而TPX2是與腫瘤染色體不穩(wěn)定關(guān)系最為密切的基因[9~12]。

        近年來的研究顯示,多種腫瘤組織中均發(fā)現(xiàn)有TPX2的過表達,并且與癌癥的分期等有關(guān)[13]。楊上英等[14]用RT-PCR檢測TPX2在肺癌組織中的表達發(fā)現(xiàn),TPX2在肺癌組織的過表達率高達64%。本研究通過小RNA干擾技術(shù)下調(diào)肺癌細(xì)胞中TPX2的表達水平,發(fā)現(xiàn)下調(diào)TPX2后的肺癌細(xì)胞的增殖能力下降,凋亡增加,進一步用下調(diào)TPX2后的肺癌細(xì)胞種植于裸鼠皮下,癌細(xì)胞的裸鼠成瘤能力下降,腫瘤的重量和體積均明顯下降,TPX2發(fā)揮抑癌基因的作用。

        TPX2的作用機制較為復(fù)雜,TPX2可以通過作用于Aurora A而引起激酶構(gòu)象發(fā)生改變,導(dǎo)致Aurora A的T288朝內(nèi),從而保護已經(jīng)被磷酸化的蘇氨酸避免去磷酸化,而當(dāng)TPX2的N端減少時,Aurora A的磷酸化的T288暴露,極容易被蛋白磷酸酶去磷酸化,因此,TPX2可以通過調(diào)控Aurora A的磷酸化影響Aurora A的活化[15,16]。p53是一種抑癌基因,在腫瘤中表達下調(diào)甚至缺失,p53能夠抑制Aurora A活性,而這種抑制作用只有在Aurora A和TPX2沒有結(jié)合時才能產(chǎn)生,也就是說在p53水平下降后,Aurora A才能引起中心體擴增[17]。Pascreau等[18]研究顯示,TPX2可以抑制Aurora A導(dǎo)致的p53活性升高。在蔣沛月研究TPX2調(diào)控宮頸癌細(xì)胞生長的試驗中發(fā)現(xiàn),TPX2下調(diào)后,可以促進p53的轉(zhuǎn)錄[19]。Caspase-3是Caspase級聯(lián)反應(yīng)的凋亡執(zhí)行因子,其活化后形成Cleaved Caspase-3標(biāo)志著凋亡進入不可逆的階段[20,21]。本研究結(jié)果顯示,下調(diào)TPX2表達后的肺癌細(xì)胞接種到裸鼠皮下后,腫瘤組織中的p53水平升高,并且凋亡相關(guān)蛋白Caspase-3的活化水平也升高,下調(diào)TPX2可能通過激活p53信號通路影響肺癌細(xì)胞增殖、凋亡及裸鼠成瘤能力。

        綜上,TPX2表達下調(diào)后,肺癌細(xì)胞增殖受阻,凋亡增多,裸鼠成瘤能力下降,這可能與p53有關(guān),對于其具體的作用機制仍然需要深入研究。癌癥的發(fā)生是一個極為復(fù)雜的過程,加上細(xì)胞內(nèi)基因和信號通路之間的交叉性,TPX2在癌癥中的作用和機制需要在后續(xù)研究中繼續(xù)探討。本研究只在一種肺癌細(xì)胞中進行了研究,由于癌細(xì)胞的特性不同,后續(xù)還需要在多種肺癌細(xì)胞中進行多方面的驗證。本研究為靶向TPX2治療肺癌提供了理論基礎(chǔ),為研究TPX2在肺癌發(fā)病中的作用奠定了基礎(chǔ)。

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