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        牛支原體的分離鑒定及藥敏試驗分析

        2018-03-20 07:22:58馬艷君阿比克哈莫湯承岳華
        四川畜牧獸醫(yī) 2018年3期
        關(guān)鍵詞:菌素支原體測序

        馬艷君,阿比克哈莫,湯承,岳華

        (西南民族大學生命科學與技術(shù)學院,四川 成都 610041)

        2017年4月,四川省某肉牛場從外省購回32頭3~4月齡的西門塔爾?;蛭麟s牛,24頭在運回后7~10d發(fā)病,主要臨床癥狀為精神沉郁、食欲下降,鼻鏡干燥、流出黃白色膿性鼻液,呼吸困難、體溫升高,部分病牛結(jié)膜發(fā)炎、流淚等。本試驗采集患病牛的深部鼻腔棉拭子,對病原進行了分離鑒定,并對分離株的敏感性藥物進行了篩選。

        1 材料與方法

        1.1 臨床樣本 患呼吸道疾病的牛鼻腔棉拭子24份,編號1~24。

        1.2 菌株和引物 臨床樣本檢測參照文獻[1]特異性檢測牛支原體的PCR方法,設(shè)置引物靶基因為oppD/F,擴增片段大小為448bp;采用文獻[2]報道的PCR方法進行分離菌株的鑒定,引物為靶向支原體屬16S rRNA的通用引物,擴增片段為1021bp。以上兩條引物均由上海生工生物工程股份有限公司合成。用于質(zhì)控的牛支原體菌株由本實驗室分離保存。

        1.3 主要試劑 支原體基礎(chǔ)培養(yǎng)基、支原體瓊脂培養(yǎng)基均購自青島海博生物技術(shù)有限公司,Taq酶、DNA MakerⅡ均購自TAKARA公司,馬血清購自Hyclone公司,Gel Extraction Kit購自O(shè)mega公司,土霉素、鏈霉素、氟苯尼考、慶大霉素等藥物購自中國獸醫(yī)藥品監(jiān)察所或Sigma公司。

        1.4 牛支原體的PCR檢測 用1mL PBS充分洗滌臨床樣本,經(jīng)12000r/min 4℃離心30min后,運用常規(guī)酚-氯仿法提取沉淀中的DNA作為模板,參照文獻[1]報道的方法進行檢測,同時以牛支原體為陽性對照,以無模板對照為陰性對照,通過1.5%瓊脂糖凝膠電泳對PCR產(chǎn)物進行鑒定。

        1.5 牛支原體的分離培養(yǎng) 將浸泡有鼻腔棉拭子的支原體液體培養(yǎng)基(1mL)經(jīng)渦旋混勻后,吸取液體經(jīng)4000r/min 4℃離心5min,上清用0.45μm細菌濾器過濾,取0.2mL濾液接種至1.8mL支原體液體培養(yǎng)基中,并進行10倍梯度稀釋,稀釋到10-7,置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)3~5 d,每天觀察,當培養(yǎng)基顏色由紅色變?yōu)槌赛S色且澄清透亮時,再涂布于支原體固體培養(yǎng)基上培養(yǎng)3~5d,光學顯微鏡下低倍觀察菌落形態(tài),同時挑取單菌落接種于支原體液體培養(yǎng)基,經(jīng)三次純化后凍干保存。

        1.6 基于16S rRNA序列的支原體種鑒定和系統(tǒng)進化分析 用酚-氯仿法提取支原體液體純培養(yǎng)物的DNA作為PCR檢測的模板,采用文獻[2]的方法進行檢測,以無模板對照為陰性對照,以牛支原體為陽性對照,通過1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產(chǎn)物,用Gel Extraction Kit對目的片段進行純化回收,送上海生工生物工程股份有限公司測序。

        用DNAman對測序結(jié)果進行同源性比對,選取GenBank數(shù)據(jù)庫中不同國家不同地域的牛支原體株的16S rRNA基因序列,運用Mega5.0軟件構(gòu)建進化樹,進行系統(tǒng)發(fā)育分析。

        1.7 藥敏試驗 隨機選取4株分離株,參考文獻[3]的微量稀釋法對泰樂菌素、慶大霉素等8種藥物的最低抑菌濃度(MIC)進行測定。

        圖1 部分樣本PCR擴增電泳圖

        2 結(jié)果

        2.1 牛支原體的PCR檢測結(jié)果 凝膠電泳結(jié)果顯示,有23份臨床樣本擴增出目的條帶,如圖1所示。

        2.2 牛支原體的分離培養(yǎng) 將23份陽性樣本接種于支原體液體培養(yǎng)基,其中10份樣本在培養(yǎng)3~4d時培養(yǎng)基澄清且變成了橙黃色,將變色的培養(yǎng)基涂布于支原體固體培養(yǎng)基上培養(yǎng)3~5d,結(jié)果出現(xiàn)了針尖大小的菌落,用普通光學顯微鏡觀察可見菌落呈現(xiàn)中間凸起的“煎蛋樣”。將分離到的10株牛支原體編號為SC-1~SC-10。

        2.3 支原體種鑒定和系統(tǒng)進化分析

        2.3.1 基于16S rRNA序列的支原體種鑒定 對分離的10株菌進行了基于16S rRNA序列的菌種鑒定,電泳結(jié)果顯示,PCR擴增在1000bp左右出現(xiàn)特異性條帶,如圖2所示,與預期目的片段相符。將膠回收產(chǎn)物送至上海生工生物工程技術(shù)服務有限公司測序,并運用DNAman對測序結(jié)果進行比對分析,結(jié)果顯示與牛支原體的同源性為99.7%~100%。

        圖2 分離菌株16S rRNA基因PCR擴增電泳圖

        2.3.2 基于16S rRNA序列的系統(tǒng)進化分析 分析牛支原體分離株的進化樹,發(fā)現(xiàn)10株牛支原體聚為5大支,表明分離株的遺傳多樣性比較豐富;其中2株牛支原體分離株(SC-10、SC-1)聚為一支,與我國湖北株(CP007591.1)、廣東株(KM576849.1)、福建株(KX230478.1)遺傳關(guān)系最近;3株牛支原體分離株(SC-3、SC-7、SC-9)聚為一支,與我國湖北株(CP002513.1)遺傳關(guān)系最近;分離株SC-6、SC-2、SC-4聚為一支,與匈牙利株(KX462435.1)的遺傳關(guān)系最近;分離株SC-5和SC-8單獨聚為一支,且與重慶株(CP005933.1)的遺傳關(guān)系最近。

        2.4 藥敏試驗結(jié)果 運用臨床常用的8種抗菌類藥物對隨機挑選的4株分離株進行MIC測定,結(jié)果見表1。敏感、耐藥的判定標準參考CLSI[4]。從表1可知,這4株牛支原體對泰樂菌素、氧氟沙星、土霉素、慶大霉素、頭孢喹諾、氟苯尼考敏感,而對恩諾沙星和頭孢噻呋具有耐藥性。

        表1 8種抗生素對4株牛支原體的最小抑菌濃度(MIC)μg/mL

        3 討論

        牛支原體不僅引發(fā)牛肺炎、乳腺炎,還可導致關(guān)節(jié)炎、角膜結(jié)膜炎和母牛流產(chǎn)等多種疾病[5]。國內(nèi)自2008年證實牛支原體與牛呼吸道疾病緊密相關(guān)以來,關(guān)于該菌的研究已經(jīng)有很多報道[6]。運輸應激是導致牛支原體病發(fā)生的一個主要原因[7]。因此,長途運輸時進行抗應激處理是減少牛支原體病的重要手段[8]。本試驗從24個臨床樣本中檢測到23個牛支原體陽性樣本,其感染率高達95.83%,說明牛支原體是該肉牛場重要的病原菌之一。由于引起呼吸道疾病的病因復雜,有必要進一步對其他病原菌(如病毒、細菌等)進行調(diào)查,以便更加全面地了解該場的混合感染情況。

        抗生素治療是控制和治療牛支原體病的主要手段。由于支原體結(jié)構(gòu)和功能的特點使其對β-內(nèi)酰胺類抗菌藥和磺胺類藥物具有內(nèi)在的抗性,但是對影響蛋白質(zhì)或核酸合成的抗生素敏感[9]。近年來,牛支原體耐藥的報道逐漸增多,從比利時、德國和意大利3個國家分離的牛支原體對替米考星、泰樂菌素等常用藥具有嚴重的耐藥性[10]。張利等[3]研究表明,牛支原體對恩諾沙星、環(huán)丙沙星、諾氟沙星等藥物的抵抗性增強。本試驗對分離出的牛支原體進行藥敏試驗,結(jié)果表明泰樂菌素、氧氟沙星、土霉素、慶大霉素、頭孢喹諾、氟苯尼考為敏感藥物,恩諾沙星和頭孢噻呋有耐藥。這一結(jié)果為該牛場的疫病治療提供了用藥參考。

        [1] 李大偉,黃燦平,張彥明,等.牛支原體、無乳支原體和絲狀支原體絲狀亞種小克隆三重PCR檢測方法的建立及初步應用[J].畜牧獸醫(yī)學報,2011,42(2):306-310.

        [2] Georges Rawdi,Annick Dujeancourt-Henry,Brigitte Lemercier,et al.Phylogenetic position of rare human mycoplasmas,mycoplasma faucium,mycoplasma buccale,mycoplasma primatum and mycoplasma spermatophilum, based on 16s rRNA gene sequences[J].Internation Journal of Systematic Bacteriology,1998,48(1):305-309.

        [3] 張利,李玉平,黎曉敏,等.牛支原體藥物敏感性試驗[J].動物醫(yī)學進展,2012,33(2):110-113.

        [4] Watts J L,et al.Performance standards for antimicrobial disk and dilution susceptibility tests for bacteria isolated from animals:approved standard[S].3rd edition.Clinical and Laboratory Standards Institute,2013.

        [5] Caswell J L,Archambault M.Mycoplasma bovis pne -umonia in cattle[J].AnimalHealth Research Reviews,2007,8(2):161-186.

        [6] 冉智光,謝建華,駱璐,等.我國部分地區(qū)牛支原體肺炎和關(guān)節(jié)炎的病原體診斷[J].中國預防獸醫(yī)學報,2010,32(1):40-43.

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        [10]劉超,Barberio A,F(xiàn)laminio B,等.國外奶牛場牛支原體體外藥敏試驗報告[J].中國乳業(yè),2017(3):52-55.

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