劉良宵,張雪靜,吳福玲,王海英
(濱州醫(yī)學院附屬醫(yī)院,山東濱州256603)
毛細支氣管炎是一種以1~6個月嬰幼兒多見的下呼吸道感染性疾病,以呼吸道合胞病毒(RSV)感染最為常見。嬰兒RSV下呼吸道感染與哮喘有很強的相關性,且與哮喘嚴重程度相關[1,2]。RSV感染后誘發(fā)T細胞免疫應答,除Th1/Th2失衡外,Th17在毛細支氣管炎發(fā)展過程中也起到了重要的作用[3~5]。Notch信號通路是一種普遍存在的信號序列,該序列高度保守并且能夠調(diào)節(jié)T細胞的分化及發(fā)育[6,7],γ促分泌酶抑制劑(GSI)MW167是其阻斷劑。Th17細胞主要產(chǎn)生IL-17,視黃酸受體相關孤核受體γt(RORγt)是Th17的特異性轉錄因子。本研究觀察了MW167對RSV毛細支氣管炎患兒外周血單個核細胞(PBMC)中Th17細胞比例、RORγt mRNA表達及細胞上清液中IL-17水平的影響,旨在為該疾病的免疫治療提供新的思路。
1.1 臨床資料 選取第1次出現(xiàn)喘息、病程在2 d以內(nèi),且入院后通過固相酶聯(lián)免疫吸附試驗顯示血清特異性RSV抗體IgM陽性的年齡小于2周歲的患兒?;純涸谏虾粑栏腥境跗诔霈F(xiàn)持續(xù)性的干咳和發(fā)作性的呼吸困難,聽診發(fā)現(xiàn)肺部喘鳴音輕重不等,胸片可顯示不同程度的梗阻性肺氣腫、支氣管周圍炎以及肺紋理增粗等改變,診斷均符合《諸福棠實用兒科學(第八版)》中毛細支氣管炎的診斷標準[8]。選擇2016年1月~2017年1月在濱州醫(yī)學院附屬醫(yī)院住院并診斷為RSV毛細支氣管炎的30例患兒作為觀察組,其中男19例、女11例,年齡(5.5±3.4)月。同時選擇來自我院兒保門診25例健康體檢兒作為對照組,其中男13例、女12例,年齡(5.2±3.3)月,兩周內(nèi)無感染,無服藥,且無家族過敏史及哮喘史,無過敏性疾病以及慢性病史。入選患兒均為排除先天性心臟病以及免疫缺陷等其他疾病,且沒有糖皮質(zhì)激素以及其他免疫抑制劑使用史的足月產(chǎn)嬰幼兒。觀察組與對照組性別、年齡比較差異均無統(tǒng)計學意義。本研究取得入選對象監(jiān)護人知情同意并獲濱州醫(yī)學院醫(yī)學倫理委員會批準同意。
1.2 實驗試劑 人淋巴細胞分離液購自天津灝洋生物科技有限公司;RPMI1640培養(yǎng)液購自美國Gibco公司;胎牛血清購自四季青公司;GSIⅡ(MW167)為德國默克密理博公司產(chǎn)品;PMA以及離子霉素購自北京索萊寶公司;抗人CD4-PerCP-Cy5.5、抗IL-17-PE購自美國BD公司;反轉錄及實時熒光定量PCR試劑盒購自Roche公司;引物由上海生工公司合成。
1.3 PBMC收集 入院后抽取兩組外周靜脈血3 mL(肝素抗凝)。向1只新的離心管中加入3 mL人淋巴細胞分離液,將患兒血液輕輕加入分離液表面,注意不要搖晃。室溫550 g離心30 min。離心后液體分為4層,自上而下依次是:紅細胞層(紅色)、分離液層(透明)、淋巴細胞層(即白膜層,白色)、血漿層(淡黃色)。吸取白膜層置于新的離心管,加入10 mL細胞洗滌液混勻,250 g離心10 min,棄上清,重復上述操作2次,離心管底部沉淀就是PBMC。
1.4 細胞分組干預及培養(yǎng) 用含10%胎牛血清的RPMI1640培養(yǎng)基重懸所得的PBMC,調(diào)整細胞密度為1×106/mL,1 mL每孔接種于24孔板。將細胞分為正常組、RSV組、MW167組。正常組即為對照組兒童外周血分離所得的PBMC,每孔加入2 μL DMSO;RSV組為觀察組患兒外周血分離所得的PBMC,每孔加入2 μL DMSO;MW167組為觀察組患兒外周血分離所得的PBMC,每孔加入2 μL MW167(1 mg MW167溶于141.7 μL DMSO)。以上各組每孔加入10 μg/mL植物血凝素,混勻后置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)48 h后收集細胞以及培養(yǎng)上清液。
1.5 各組PBMC中Th17細胞比例檢測 向上述三組細胞中加入終濃度分別為50 ng/mL的PMA,1 μg/mL的離子霉素以及1.5 μL/mL的莫能霉素,混勻后置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)5 h,收集細胞,并用140 μL RPMI1640培養(yǎng)基重懸。孵育后,細胞用PerCP-Cy5.5綴合的抗人CD4,PE綴合的抗IL-17單克隆抗體染色在室溫下避光染色40 min。給予同種型對照以實現(xiàn)正確的補償并確認抗體特異性。使用配備有Cell Quest軟件(BD Bioscience Phar-Mingen,San Jose,CA,USA)的FACS Calibur細胞儀通過流式細胞術分析染色的細胞,計算PBMC中Th17細胞比例。
1.6 各組PBMC細胞培養(yǎng)上清液中IL-17水平檢測 將各組離心后的上清液置于新的試劑管,隨后采用酶聯(lián)免疫法檢測培養(yǎng)液中IL-17的水平,按照說明書進行操作。
1.7 各組PBMC中RORγt mRNA檢測 采用實時熒光定量PCR。TRIzol一步法提取離心后各組細胞沉淀中的總RNA,隨后對RNA進行反轉錄。反應體系如下:Random Hexamer Primer 2 μL,總RNA 3 μL,無核酸酶水8 μL,65 ℃ 10 min。反應完成后繼續(xù)向體系內(nèi)加入5×Transcriptor RT Reaction Buffer 4.0 μL,Transcriptor Reverse Transcriptase 0.5 μL,Protector RNase Inhibitor 0.5 μL,Deoxynuc-Ieo-tide Mix 2 μL,混勻試劑后按以下條件進行反應:25 ℃ 10 min,55 ℃ 30 min,85 ℃ 5 min。反應結束后將cDNA置于-20 ℃保存。以人GAPDH為內(nèi)參基因,上游引物:5′-GGTGTGAACCATGAGAAGTATGACA-3′,下游引物:5′-GTCCTTCCACGATACCAAAGTTGT-3′,產(chǎn)物長度為138 bp,通過SYBR Green RT-PCR檢測RORγt mRNA表達。人RORγt上游引物:5′-ACCTCACCGAGGCCATTCAG-3′,下游引物:5′-TAGGCCCGGCACATCCTAAC-3′,產(chǎn)物長度為117 bp。按照Roche PCR試劑盒說明反應體系如下:Fast Start Universal SYBR Green Master(ROX)10 μL,cDNA 2 μL,無核酸酶水7.6 μL,上、下游引物各0.2 μL。反應設定條件:50 ℃ 2 min,95 ℃ 10 min;95 ℃ 15 s,40個循環(huán)。反應結束后將正常組基因表達設為1,獲得其他各組RORγt mRNA相對表達量。
2.1 各組PBMC中Th17細胞比例比較 正常組、RSV組、MW167組PBMC中Th17細胞比例分別為0.49%±0.09%、1.56%±0.77%、0.84%±0.23%,RSV組與正常組相比P<0.01,MW167組與RSV組相比P<0.05。
2.2 各組PBMC細胞培養(yǎng)上清液中IL-17水平比較 正常組、RSV組、MW167組PBMC細胞培養(yǎng)上清液中IL-17水平分別為(12.18±2.97)、(20.88±4.10)、(12.91±4.28)pg/mL,RSV組與正常組相比,MW167組與RSV組相比,P均<0.05。
2.3 各組PBMC中RORγt mRNA表達比較 正常組、RSV組、MW167組PBMC中RORγt mRNA相對表達量分別為1.0、5.72±0.53、1.82±0.21,RSV組與正常組相比,MW167組與RSV組相比,P均<0.05。
毛細支氣管炎是1歲以內(nèi)嬰兒住院的最常見疾病,多見于冬春季節(jié),RSV是最常見的病原體。2歲以下兒童發(fā)生RSV感染可能會嚴重威脅患兒的生命,并且也可能導致其他遠期的并發(fā)癥[9]。隨訪1歲以內(nèi)因RSV毛細支氣管炎入院的嬰兒至18歲,發(fā)現(xiàn)RSV毛細支氣管炎患兒發(fā)展為哮喘的概率是正常兒童的4.3倍,發(fā)生臨床過敏的概率是正常兒童的2.5倍[10],進一步證實RSV毛細支氣管炎對健康存在長期威脅。毛細支氣管炎主要導致Th1/Th2的失衡[9,11],以Th2的優(yōu)勢反應為主,近年研究顯示,Th17在毛細支氣管炎的發(fā)病過程中也起到重要作用。Th17細胞是CD4+T細胞的另一個族群,通過激活特異性轉錄因子RORγt分化,刺激炎癥反應,并增強對細胞外細菌、真菌和病毒的獲得性細胞免疫應答[12,13]。
李賓等[4]研究發(fā)現(xiàn),RSV毛細支氣管炎患兒外周血中Th17細胞比例較正常兒童明顯升高,本實驗中對RSV組患兒PBMC中Th17細胞比例進行檢測得出與其相同的趨勢,提示RSV毛細支氣管炎患兒外周血中存在Th17數(shù)量的變化。Jafri等[14]發(fā)現(xiàn),在急性中性粒細胞炎癥和哮喘發(fā)病過程,肺組織中IL-17過度表達,且嚴重RSV感染的嬰兒氣管吸出物樣品中IL-17水平增加,同時RSV感染小鼠模型中觀察到IL-17的表達呈現(xiàn)時間依賴性增加[3,15];檢測RSV毛細支氣管炎患兒外周血也發(fā)現(xiàn),臨床癥狀越重的患兒外周血中IL-17水平越高[16],提示IL-17水平與疾病發(fā)展密切相關。本實驗對各組PBMC細胞培養(yǎng)上清液中IL-17水平檢測后發(fā)現(xiàn),RSV組IL-17水平較正常組升高,進一步印證了IL-17與疾病的相關性。RORγt可以誘導未成熟CD4+T細胞產(chǎn)生IL-17,調(diào)控Th17細胞的分化[17]。對毛細支氣管炎的大鼠模型和正常大鼠血漿內(nèi)的IL-17以及RORγt進行檢測發(fā)現(xiàn),模型組Th17相關的細胞因子及蛋白均增高[18],這與本實驗結果相一致。以上研究結果提示Th17細胞因子IL-17以及轉錄因子RORγt在RSV毛細支氣管炎發(fā)病過程中發(fā)揮促進作用,進一步加重疾病的進程。
Notch信號通路是一種在哺乳動物中廣泛存在的通路,4種Notch受體(Notch1~4)被5種跨膜結合配體(Jagged1-2及DLL1、3、4)活化,細胞質(zhì)Notch被γ-分泌酶切割,導致釋放Notch活性細胞內(nèi)結構域(NICD),隨后NICD進入細胞核調(diào)節(jié)相關基因的表達[7],繼而發(fā)揮其相關作用。多個研究[7,19]顯示,Notch信號通路在T細胞的增殖、分化以及細胞功能調(diào)節(jié)方面發(fā)揮重要作用,GSI是Notch信號通路的阻斷劑,抑制NICD的釋放,從而調(diào)節(jié)T細胞的免疫應答。
Notch信號通路是控制Th17細胞存活和凋亡模式的關鍵信號傳導途徑[20]。Notch可以直接激活轉錄因子RORγt,這對Th17的分化至關重要[21];另有研究[22,23]顯示,除了RORγt,Notch信號通路也直接調(diào)節(jié)IL-17的水平。因此,IL-17以及RORγt在一定程度上反映Th17細胞的水平及變化趨勢,而在疾病過程中,Notch信號通路可能通過對Th17相關細胞因子以及轉錄因子的調(diào)節(jié)參與炎癥進程。
Zhang等[24]發(fā)現(xiàn),應用GSI后的哮喘模型大鼠氣道炎癥有所改善,臨床癥狀也有緩解,提示GSI在一定程度上可以緩解哮喘的臨床及病理表現(xiàn),有可能是治療哮喘的有效措施。在前期動物實驗[25]過程中,HE染色證明使用GSI處理后的RSV毛細支氣管炎大鼠模型的氣道炎癥有明顯好轉,這提示GSI對于RSV毛細支氣管炎可能也有與哮喘相一致的治療作用。
Amsen等[6]發(fā)現(xiàn),當在體外誘導Th17細胞時抑制Notch的活化可導致Th17細胞的分化降低,并且用GSI治療小鼠時Th17細胞也明顯減少,說明Notch信號通路可以調(diào)節(jié)Th17的數(shù)量,影響炎癥發(fā)展及過程。在體內(nèi)試驗中,楊鑫娜等[26]比較COPD小鼠以及用GSI處理后的COPD小鼠體內(nèi)Notch以及Th17細胞的表達發(fā)現(xiàn),在COPD小鼠中存在Notch信號通路的增強以及Th17細胞的增多,GSI可以部分抑制Notch信號表達和Th17細胞的數(shù)量。本實驗結果顯示,MW167組Th17細胞在PBMC中的比例較RSV組明顯降低,提示GSI可以抑制Th17細胞的表達,結果與前者相一致。研究[24]顯示,與對照組相比,用GSI處理過的哮喘大鼠NICD水平降低,血漿中IL-17水平降低,而在本實驗中,MW167組細胞培養(yǎng)上清液中IL-17減少。前期動物實驗[25]中,用GSI處理過的RSV毛細支氣管炎大鼠模型的肺組織中NICD以及RORγt的蛋白表達降低,在細胞實驗中,Yu等[27]用GSI阻斷血小板減少癥患者PBMC中Notch信號通路后,Th17細胞呈劑量依賴性降低,細胞培養(yǎng)上清液中IL-17減少且RORγt mRNA表達降低,提示GSI可能是通過抑制IL-17以及RORγt的表達調(diào)節(jié)Th17細胞的水平,從而參與疾病過程。而在本實驗中,MW167組較RSV組RORγt mRNA表達降低,與上述的結論相一致。本研究結果提示GSI能夠降低Th17細胞轉錄因子以及細胞因子的表達,進一步調(diào)節(jié)Th17細胞的比例,為毛細支氣管炎的治療提供一條新的思路。
目前RSV毛細支氣管炎的治療僅是對癥支持治療,近年來,對RSV的疫苗研究十分熱門,但是截止到目前為止,仍沒有安全有效的疫苗上市,因此,尋求有效安全的特異性治療方法刻不容緩。在培養(yǎng)PBMC時加入GSI后PBMC中Th17細胞比例、Th17的細胞因子IL-17以及特異性轉錄因子RORγt均降低,緩解了疾病過程中Th17的增長,提示GSI可能對于抑制RSV毛細支氣管炎的疾病發(fā)展能夠起到一定的作用,為RSV毛細支氣管炎的免疫學治療提供了一個新的研究方向。
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