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        氮素脅迫對(duì)水稻根系影響的轉(zhuǎn)錄組分析

        2018-03-15 11:00:23邵彩虹錢銀飛陳先茂關(guān)賢交劉光榮彭春瑞邱才飛
        華北農(nóng)學(xué)報(bào) 2018年1期
        關(guān)鍵詞:水稻差異

        邵彩虹,李 瑤,錢銀飛,陳 金,陳先茂,關(guān)賢交,劉光榮,彭春瑞,邱才飛

        (1.江西省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 土壤肥料與資源環(huán)境研究所,江西 南昌 330200;2.農(nóng)業(yè)部長(zhǎng)江中下游作物生理生態(tài)與耕作重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江西 南昌 330200)

        水稻根系不僅僅是作為植株養(yǎng)分和水分的吸收器官,還是包括植物激素在內(nèi)的多種活性物質(zhì)的合成器官,根系與地上部農(nóng)藝性狀密切相關(guān),其發(fā)育狀況直接影響地上部分的生長(zhǎng)發(fā)育,尤其是根尖合成的細(xì)胞分裂素(CTK)、赤霉素(CA)能有效提高地上部的抗衰老能力[1-2]。相對(duì)于地上部位,根系有較高的可塑性,可通過(guò)改變形態(tài)和結(jié)構(gòu)來(lái)適應(yīng)環(huán)境的變化[3-5]。眾多研究者也從植物生理學(xué)、蛋白質(zhì)組學(xué)等角度對(duì)逆境條件下水稻根系生長(zhǎng)發(fā)育特性開(kāi)展了研究,結(jié)果表明,養(yǎng)分缺乏引起葉片合成生長(zhǎng)素向根系極性運(yùn)輸發(fā)生變化,而淀粉、糖類在根系積累增加,引起根冠比增加,側(cè)根密度降低[6-9];水稻生育后期對(duì)地上部進(jìn)行適度遮蔭可刺激根系生長(zhǎng)、延緩衰老[10];蛋白質(zhì)組分析顯示,養(yǎng)分脅迫可誘導(dǎo)根系中參與細(xì)胞分裂、分化的蛋白質(zhì)表達(dá)上調(diào),參與木質(zhì)素合成的蛋白質(zhì)表達(dá)量增強(qiáng),呼吸代謝減弱,是養(yǎng)分脅迫下水稻根系發(fā)生衰老的內(nèi)在機(jī)理[11]。

        長(zhǎng)期以來(lái),養(yǎng)分管理作為栽培調(diào)控的重要手段,對(duì)水稻生長(zhǎng)發(fā)育的影響一直是栽培學(xué)研究的熱點(diǎn),其中對(duì)根系的研究近年來(lái)逐漸得到重視。目前,關(guān)于氮素脅迫對(duì)根系影響的研究更多的是側(cè)重于生理方面,分子水平研究相對(duì)較少。近年來(lái),蛋白質(zhì)組學(xué)、基因組學(xué)及轉(zhuǎn)錄組學(xué)技術(shù)在揭示生命活動(dòng)機(jī)理的研究中得到了快速發(fā)展,其中,轉(zhuǎn)錄組研究是通過(guò)測(cè)序技術(shù)揭示同一細(xì)胞在不同生長(zhǎng)時(shí)期及生長(zhǎng)環(huán)境下基因表達(dá)(RNA)情況的差異,并逐漸發(fā)展為應(yīng)用最為廣泛的技術(shù)[12]。研究表明,逆境條件下,植物可通過(guò)調(diào)控相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子表達(dá)提高植物對(duì)逆境的耐受力,通過(guò)轉(zhuǎn)錄因子表達(dá)差異分析,可獲得更全面的生物學(xué)信息[13-17],在揭示植物相關(guān)逆境適應(yīng)機(jī)理方面具有重要的意義。

        鑒于根系逆境環(huán)境響應(yīng)和轉(zhuǎn)錄因子研究的重要性,本研究擬對(duì)氮素脅迫下水稻根系的轉(zhuǎn)錄組表達(dá)變化進(jìn)行分析,以揭示氮素脅迫下水稻根系應(yīng)答的分子機(jī)理,為栽培調(diào)控提供理論參考。

        1 材料和方法

        1.1 材料培養(yǎng)

        以篩選出的不耐養(yǎng)分脅迫易早衰水稻品種威優(yōu)916為材料,三葉一心期移栽至水培桶(15 L),每桶3苗,采用霍格蘭全營(yíng)養(yǎng)液培養(yǎng),每3 d更換一次營(yíng)養(yǎng)液;至五葉一心期設(shè)置2個(gè)處理:①對(duì)照:繼續(xù)全營(yíng)養(yǎng)液培養(yǎng);②氮素脅迫:采用缺氮霍格蘭營(yíng)養(yǎng)液進(jìn)行養(yǎng)分脅迫。每個(gè)處理設(shè)置5個(gè)重復(fù)。處理7 d后,取水稻根系,液氮速凍后保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.2 試驗(yàn)方法

        1.2.1 RNA提取及處理 取每個(gè)處理根尖部混合樣品1 g左右,參考TaKaRa全RNA提取試劑操作說(shuō)明進(jìn)行根系RNA提取。

        1.2.2 文庫(kù)的構(gòu)建及測(cè)序 水稻根系cDNA文庫(kù)構(gòu)建及測(cè)序均委托深圳華大公司完成。

        1.2.3 轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)組裝及基因功能注釋 對(duì)水稻根系的轉(zhuǎn)錄組測(cè)序及對(duì)獲得的數(shù)據(jù)庫(kù)Unigene的全面分析和注釋,均委托深圳華大公司完成。具體的數(shù)據(jù)分析流程如圖1所示。

        圖1 轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)庫(kù)分析Fig.1 Data analysis of digital transcriptome

        2 結(jié)果與分析

        2.1 根系轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)組裝

        對(duì)照根系(CKR)及氮素脅迫下處理根系(SR)轉(zhuǎn)錄組經(jīng)測(cè)序,分別得到58 113 122,58 972 912條Raw reads,去除含adaptor的reads、N的比例(過(guò)濾后不確定的堿基比例)大于5%的reads及低質(zhì)量reads,分別得到52 816 936,53 170 968條Clean reads,Q20的百分率(過(guò)濾后質(zhì)量不低于20的堿基的比例)分別達(dá)到97.69%和97.57%,均大于90%,質(zhì)量合格,符合后續(xù)分析要求(表1)。GC 含量(過(guò)濾后堿基G和C數(shù)占總堿基數(shù)的比例)是基因組堿基序列的重要特征之一,好的測(cè)序質(zhì)量GC含量接近正態(tài)分布,本研究中,不同處理下水稻根系的 GC 含量平均值為49.61%和49.88%,顯示本次測(cè)序質(zhì)量較好。

        表1 測(cè)序產(chǎn)量統(tǒng)計(jì)Tab.1 Output statistics of sequencing

        對(duì)獲得的不同處理下威優(yōu)916根系reads片段采用over-lap的方法進(jìn)行拼接(表2),分別獲得了106 103,107 488個(gè)Contig片段,序列長(zhǎng)度分別達(dá)到了46 993 431,47 068 436 nt,平均長(zhǎng)度及N50分別為443 nt、950和438 nt、938。其中,長(zhǎng)度在200~500 nt的Contig片段分別為82 262,83 934條,比例達(dá)到了78%,長(zhǎng)度在600~1 200 nt的Contig片段所占比例為13%,長(zhǎng)度大于1 200 nt的Contig片段所占比例為9%(圖2)。

        在獲得了Contig數(shù)據(jù)的基礎(chǔ)上,進(jìn)一步進(jìn)行拼接,分別獲得了74 239,75 006個(gè)Unigene片段(表2),其中,屬于同源基因分別有19 539,19 522個(gè),屬于單獨(dú)基因的分別有54 700,55 484個(gè);序列長(zhǎng)度達(dá)到61 524 187,62 720 962 nt。

        表2 組裝質(zhì)量統(tǒng)計(jì)Tab.2 Statistics of assembly quality

        圖2 根系轉(zhuǎn)錄組的Contig數(shù)據(jù)長(zhǎng)度分布Fig.2 Conting data length distribution for digital transcriptome of rice root

        2.2 Unigene功能注釋及GO分類

        數(shù)據(jù)分析顯示,氮素脅迫誘導(dǎo)了威優(yōu)916根系中4 072個(gè)Unigene的表達(dá)量發(fā)生了變化,其中,上調(diào)表達(dá)的有1 933個(gè),下調(diào)表達(dá)的有2 139個(gè)(圖3)。以log2 Ratio(SR/CKR)>2作為基因表達(dá)顯著差異判斷標(biāo)準(zhǔn);共獲得了2 270個(gè)在轉(zhuǎn)錄水平上差異顯著的Unigene(表3),其中,上調(diào)表達(dá)的有1 176個(gè),以變化為4>log2 Ratio(SR/CKR)>2的Unigene為主,占81%,下調(diào)表達(dá)的有1 094個(gè),4>log2 Ratio(SR/CKR)>2的Unigene占53.8%,變化在12>log2 Ratio(SR/CKR)>4的占36.1%,log2 Ratio(SR/CKR)>12的占10.5%。

        通過(guò)數(shù)據(jù)比對(duì)工具BlastX將Unigene序列比對(duì)到蛋白數(shù)據(jù)庫(kù)NR、Swiss-Prot、KEGG及COG(evalue<0.000 01),并通過(guò)數(shù)據(jù)比對(duì)工具Blast將Unigene比對(duì)到核酸數(shù)據(jù)庫(kù)Nt(evalue<0.000 01),從而獲得跟給定Unigene具有最高序列相似性的蛋白,得到該Unigene的蛋白功能注釋信息。

        圖3 不同處理下水稻根系基因差異表達(dá)Fig.3 Differentially expressed genes inrice root under different treatment

        變化倍數(shù)對(duì)數(shù)值(SR/CKR)log2Ratio上調(diào)Up-regu-lation下調(diào)Down-regu-lation合計(jì)Total2~495358915424~8351822178~12152213365>1236110146合計(jì)Total117610942270

        根系差異表達(dá)基因根據(jù)GO功能分類,可分為分子功能(Molecular function)、細(xì)胞組分(Cellular component)及生物學(xué)過(guò)程(Biological process)三大類,涉及48條功能分支(圖4),其中,樣本基因數(shù)量在1 000條以上參與生物學(xué)過(guò)程的主要聚集于細(xì)胞過(guò)程(Cellular process)和代謝過(guò)程(Metabolic process);參與細(xì)胞組分的主要聚集于細(xì)胞(Cell)、細(xì)胞組分(Cell part)、隔膜(Membrane)及細(xì)胞器(Organelle);參與分子功能的差異表達(dá)基因主要為結(jié)合(Binding)和催化活性(Catalytic activity)相關(guān)代謝途徑。

        2.3 根系差異表達(dá)Unigene的KEGG代謝通路分析

        為進(jìn)一步分析差異表達(dá)基因的生物學(xué)行為,結(jié)合KEGG數(shù)據(jù)庫(kù),對(duì)氮素脅迫下水稻根系差別異表達(dá)基因的Pathway注釋進(jìn)行分析。結(jié)果顯示,根系差異表達(dá)Unigenes參與的主要生化代謝途徑有118條(表4)。其中,涉及差異表達(dá)基因(GEGs)最多的代謝通路是核糖體(ko03010),共有404條Unigene;其次是RNA轉(zhuǎn)運(yùn)(ko03013,392條Unigene)、mRNA監(jiān)視系統(tǒng)(ko03015,322條Unigene)及次生代謝生物合成(ko01110,299條Unigene),這意味著在根系mRNA監(jiān)視體統(tǒng)下,氮素脅迫誘導(dǎo)根系中RNA合成大量新生的蛋白質(zhì),形成各種酶類,促使新的RNA合成,從而合成更多的新生蛋白質(zhì),線粒體及核糖體也同時(shí)形成[18],根系表現(xiàn)出受養(yǎng)分脅迫刺激而發(fā)生了伸長(zhǎng)生長(zhǎng)[11];而次生代謝途徑相關(guān)基因的差異表達(dá),是植株響應(yīng)環(huán)境養(yǎng)分脅迫,提高自身生存適應(yīng)性,協(xié)調(diào)植株與環(huán)境關(guān)系的重要體現(xiàn)[19]。

        2.4 根系分化伸長(zhǎng)相關(guān)基因的表達(dá)

        養(yǎng)分脅迫誘導(dǎo)水稻根系發(fā)生了伸長(zhǎng)生長(zhǎng),是一系列基因表達(dá)發(fā)生了變化,從而引起代謝變化的結(jié)果,其中生長(zhǎng)素的變化對(duì)水稻根系的生長(zhǎng)發(fā)育具有重要的作用。本研究中,檢測(cè)到根系中負(fù)責(zé)生長(zhǎng)素極性運(yùn)輸?shù)纳L(zhǎng)素外流蛋白基因OsPIN家族基因的表達(dá)量發(fā)生了變化,基因OsPIN2、OsPIN1b及OsPIN1c的表達(dá)量均顯示出受氮素脅迫誘導(dǎo)上調(diào), 根系自身合成IAA途徑之一是乙醛脫氫酶通過(guò)催化吲哚-3-乙醛生成吲哚乙酸,氮素脅迫下,水稻根系的乙醛脫氫酶基因CYP71A1表達(dá)量發(fā)生了下調(diào),這些與IAA生成相關(guān)基因的變化表明,氮素脅迫誘導(dǎo)根系IAA積累更多來(lái)自極性運(yùn)輸,自身IAA合成能力下降;植物源內(nèi)切β葡聚糖酶(EGase)與植物細(xì)胞伸長(zhǎng)發(fā)育密切相關(guān),基因EGase在氮素脅迫的水稻根系中表達(dá)量高于全營(yíng)養(yǎng)處理,是全營(yíng)養(yǎng)處理根系的2倍,EGase基因的表達(dá)量(Rawfragment)高達(dá)2 278,從而誘導(dǎo)根系細(xì)胞發(fā)生伸長(zhǎng),根系表現(xiàn)出快速生長(zhǎng);木質(zhì)素是根系的重要組成成分,伴隨大量新生根系的分化伸長(zhǎng),根系中參與木質(zhì)素合成的肉桂酰輔酶A還原酶(CCR1)表達(dá)量在氮素脅迫下發(fā)生了上調(diào)變化,從而滿足新生根系生長(zhǎng)發(fā)育的需求(圖5)。

        Biological regulation.生物調(diào)節(jié);Cellular component organization or biogenesis.細(xì)胞組分組織或生物形成; Cellular process.細(xì)胞過(guò)程; Developmental process.發(fā)育過(guò)程; Establishment of localization.定位建成; Growth.生長(zhǎng); Immune system process.免疫系統(tǒng)過(guò)程; Localization.定位; Locomotion.運(yùn)動(dòng)力;Metabolic process.代謝過(guò)程;Multi-organism process.多-有機(jī)體過(guò)程;Multicellular organismal process.多細(xì)胞有機(jī)體過(guò)程;Negative regulation of biological process.被動(dòng)的生物學(xué)調(diào)控過(guò)程;Positive regulation of biological process.主動(dòng)的生物學(xué)調(diào)控過(guò)程;Regulation of biological process.生物學(xué)調(diào)控過(guò)程;Reproduction.復(fù)制;Reproductive process.復(fù)制過(guò)程;Response to stimulus.刺激反應(yīng);Rhythmic process.節(jié)律性過(guò)程;Signaling.信號(hào);Single-organism process.單生物過(guò)程;Cell.細(xì)胞;Cell junction.細(xì)胞連接;Cell part.細(xì)胞組分;Extracellular matrix.細(xì)胞外基質(zhì);Extracellular region.胞外區(qū); Extracellular region part.胞外區(qū)部分;Macromolecular complex.高分子復(fù)合物;Membrane.隔膜;Membrane part.隔膜部分;Membrane-enclosed lumen.膜蛋白;Nucleoid.擬核;Organelle.細(xì)胞器;Organelle part.細(xì)胞器部分;Symplast.共質(zhì)體;Antioxidant activity.抗氧化劑活性;Binding.結(jié)合;Catalytic activity.催化活性;Channel regulator activity.通道調(diào)節(jié)活性;Electron carrier activity.電子載體;Enzyme regulator activity.酶調(diào)節(jié)活性;Molecular transducer activity.分子傳導(dǎo)活性;Nucleic acid binding transcription factor activity.核酸結(jié)合的轉(zhuǎn)錄因子活性;Nutrient reservoir activity.營(yíng)養(yǎng)庫(kù)活性;Protein binding transcription factor activity.蛋白結(jié)合的轉(zhuǎn)錄因子活性;Receptor activity.受體活性;Structural molecule activity.結(jié)構(gòu)分子活性;Transporter activity.轉(zhuǎn)運(yùn)活性。

        圖4 根系轉(zhuǎn)錄組48種GO功能分類Fig.4 48 types of gene ontology classification of the rice root transcriptome

        表4(續(xù))

        圖5 水稻根系生長(zhǎng)相關(guān)基因表達(dá)Fig.5 The growth genes expression level of rice root

        3 討論與結(jié)論

        已有的研究顯示,逆境條件(養(yǎng)分脅迫、水分脅迫)可以誘導(dǎo)水稻根系在短期內(nèi)發(fā)生伸長(zhǎng)生長(zhǎng),根冠比顯著增加。生長(zhǎng)素影響植物細(xì)胞的伸長(zhǎng)和分裂,對(duì)植物的發(fā)育和形態(tài)建成具有重要的作用。研究顯示,逆境脅迫促進(jìn)生長(zhǎng)素在根系的積累,是導(dǎo)致水稻根系伸長(zhǎng)生長(zhǎng)的內(nèi)在機(jī)理之一,水稻根系的生長(zhǎng)素一部分來(lái)自根系自身生物合成,另一部分是由地上部極性運(yùn)輸?shù)礁礫20],這一極性運(yùn)輸過(guò)程是由根系的外流運(yùn)輸?shù)鞍譖IN的不對(duì)稱分布引起的[21]。在本研究中,檢測(cè)到了外流運(yùn)輸?shù)鞍譖IN家族中的OsPIN2、OsPIN1b及OsPIN1c基因表達(dá)量均顯示出受氮素脅迫誘導(dǎo)發(fā)生上調(diào)變化,另檢測(cè)到與根系生長(zhǎng)素直接合成相關(guān)的CYP71A1基因表達(dá)發(fā)生了下調(diào)變化,這些基因的變化表明,氮素脅迫引起根系自身IAA合成能力減弱,但I(xiàn)AA由地上部向根系極性運(yùn)輸增強(qiáng),是根系IAA積累并引起根系快速伸長(zhǎng)的重要因素,這一結(jié)果與Liu等[20]在玉米上采用同位素研究的結(jié)果一致。孫虎威等[6]研究結(jié)果顯示,低氮脅迫誘導(dǎo)水稻的根冠比增加,相關(guān)基因表達(dá)檢測(cè)結(jié)果表明,根系外流運(yùn)輸?shù)鞍譖IN家族中除OsPIN1c的表達(dá)量上調(diào)外,OsPIN1a-b、OsPIN5a-b及OsPIN9基因表達(dá)發(fā)生下調(diào),同時(shí)根系中的生長(zhǎng)素濃度降低。這些研究結(jié)果顯示,外流運(yùn)輸?shù)鞍譖IN家族中相關(guān)基因表達(dá)量的變化與IAA積累密切相關(guān),相關(guān)基因的相反變化引起了外流運(yùn)輸?shù)鞍譖IN的不對(duì)稱分布,引起生長(zhǎng)素的極性運(yùn)輸,從而引起根系發(fā)生伸長(zhǎng)生長(zhǎng)。

        生長(zhǎng)素作用機(jī)理基因活化學(xué)說(shuō)表明,IAA的生長(zhǎng)效應(yīng)是在轉(zhuǎn)錄和翻譯水平上促進(jìn)核酸和蛋白質(zhì)的合成而影響生長(zhǎng)的,當(dāng)IAA與激素受體蛋白結(jié)合后,可激活細(xì)胞內(nèi)第二信使,基因開(kāi)始轉(zhuǎn)錄和翻譯,合成新的mRNA和蛋白質(zhì)[22]。在本研究中,根系發(fā)生差異表達(dá)基因涉及最多的代謝通路是核糖體,其次是RNA轉(zhuǎn)運(yùn)、mRNA監(jiān)視系統(tǒng)及次生代謝生物合成,這意味著氮素脅迫下,IAA通過(guò)活化相關(guān)基因,合成大量新的mRNA和新生的蛋白質(zhì),形成各種酶類,促使新的RNA合成,從而合成更多的新生蛋白質(zhì),根系大量發(fā)生,根冠比增加,這些基因的變化也印證了生長(zhǎng)素作用機(jī)理基因活化學(xué)說(shuō)。

        植物源內(nèi)切β葡聚糖酶(EGase)在植物的生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程中具有廣泛的作用,從豌豆正在伸長(zhǎng)的黃化苗上胚軸、擬南芥的花序柄伸長(zhǎng)區(qū)及煙草植株和根系的伸長(zhǎng)區(qū)分離到編碼EGase的相關(guān)基因,在植物的延伸區(qū)域高量表達(dá),且與細(xì)胞伸長(zhǎng)的快慢相對(duì)應(yīng),但在已經(jīng)停止伸展的區(qū)域則不表達(dá)或低表達(dá),表明EGase在參與植物細(xì)胞伸長(zhǎng)發(fā)育中發(fā)揮了重要作用[23-25],而且可能直接參與了組織中的纖維素生物合成[26]。本研究中,EGase在氮素脅迫下表達(dá)量明顯上調(diào),表達(dá)量是正常氮素供應(yīng)情況的2倍,這一變化結(jié)果表明,氮素脅迫誘導(dǎo)EGase在水稻根系發(fā)生高表達(dá),從而引起根系細(xì)胞的伸長(zhǎng)發(fā)育,這也是養(yǎng)分脅迫誘導(dǎo)根系快速生長(zhǎng)的內(nèi)在機(jī)理之一。

        木質(zhì)素是形成植物骨架的主要成分,對(duì)于植物的抗倒、抗逆和抗病起到舉足輕重的作用[27],而肉桂酰輔酶A還原酶(CCR)是參與木質(zhì)素特異合成途徑的關(guān)鍵酶[28],其中基因CCR1表達(dá)部位集中在木質(zhì)化程度高的部位,直接參與木質(zhì)素合成[29]。本研究中,檢測(cè)到參與木質(zhì)素合成的基因CCR1在水稻根系中因養(yǎng)分脅迫誘導(dǎo)而發(fā)生表達(dá)量上調(diào),參與根系細(xì)胞分化伸長(zhǎng)的木質(zhì)化過(guò)程,增強(qiáng)根系細(xì)胞的韌性和強(qiáng)度。

        為深入系統(tǒng)地了解短期氮素脅迫對(duì)水稻根系生長(zhǎng)發(fā)育的影響,本研究以氮素脅迫下水稻根系為材料,對(duì)水稻根系轉(zhuǎn)錄組表達(dá)差異進(jìn)行分析,經(jīng)Illumina Hiseq2000平臺(tái)測(cè)序,分別獲得了52 816 936,53 170 968條Clean reads,Q20的百分率分別達(dá)到97.69%和97.57%(>90%),質(zhì)量合格,滿足后續(xù)分析要求。數(shù)據(jù)分析結(jié)果表明,根據(jù)GO功能分類,根系發(fā)生差異表達(dá)的基因可分為生物學(xué)過(guò)程、細(xì)胞組分及分子功能三大類48個(gè)分支,經(jīng)Pathway功能注釋,這些差異表達(dá)基因可歸類到118條生化代謝及信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑。根系中參與生長(zhǎng)素積累、細(xì)胞分化伸長(zhǎng)、木質(zhì)素合成及新生蛋白質(zhì)合成的相關(guān)基因發(fā)生差異表達(dá),是引起根系伸長(zhǎng)的重要因素之一。為進(jìn)一步驗(yàn)證分析根系轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)結(jié)果,筆者將對(duì)獲得的與能量代謝 、氨基酸代謝、氮代謝及信號(hào)傳導(dǎo)等相關(guān)的基因表達(dá)情況進(jìn)行定量PCR分析,以揭示并分析氮素脅迫誘導(dǎo)對(duì)水稻根系生長(zhǎng)發(fā)育影響的分子機(jī)理,為生產(chǎn)栽培提供理論依據(jù)。

        [1] 王彥榮,華澤田,陳溫福,等.粳稻根系與葉片早衰的關(guān)系及其對(duì)籽粒灌漿的影響[J].作物學(xué)報(bào),2003,29(6):892-898.

        [2] Liang Y S,Gao Z Q,Zhang X D,et al.Phenotypic correlation among root and shoot traits in an elite Chinese hybrid rice combination and its three derived populations[J].Acta Agronomica Sinica,2011,37(10):1711-1723

        [3] 徐春梅,陳麗萍,王丹英,等.低氧脅迫對(duì)水稻幼苗根系功能和氮代謝相關(guān)酶活性的影響[J].中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2016,49(8):1625-1634.

        [4] 肖清鐵,王經(jīng)源,鄭新宇,等.水稻根系響應(yīng)鎘脅迫的蛋白質(zhì)差異表達(dá)[J].生態(tài)學(xué)報(bào),2015,35(24):8276-8283.

        [5] Lynch J.Root architecture and plant productivity[J].Plant Physiology,1995,109(1):7-13.

        [6] 孫虎威,王文亮,劉尚俊,等.低氮脅迫下水稻根系的發(fā)生及生長(zhǎng)素的響應(yīng)[J].土壤學(xué)報(bào),2014,51(5):1096-1103.

        [7] Cai J,Chen L,Qu H Y,et al.Alteration of nutrient allocation and transporter genes expression in rice under N,P,K,and Mg deficiencies[J].Acta Physiologiae Plantarum,2012,34(3):939-946.

        [8] 庫(kù)文珍,彭克勤,蕭浪濤,等.低鉀脅迫對(duì)不同基因型水稻苗期根系生長(zhǎng)和內(nèi)源激素含量的影響[J].亞熱帶植物科學(xué),2008,37(1):21-24.

        [9] 黃 榮,孫虎威,劉尚俊,等.低磷脅迫下水稻根系的發(fā)生及生長(zhǎng)素的響應(yīng)[J].中國(guó)水稻科學(xué),2012,26(5):563-568.

        [10] 王 麗,鄧 飛,鄭 軍,等.水稻根系生長(zhǎng)對(duì)弱光脅迫的響應(yīng)[J].浙江大學(xué)學(xué)報(bào):農(nóng)業(yè)與生命科學(xué)版,2012,38(6):700-708.

        [11] 邵彩虹,李 瑤,錢銀飛,等.養(yǎng)分脅迫對(duì)威優(yōu)916生育后期根系衰老影響的蛋白質(zhì)組學(xué)分析[J].華北農(nóng)學(xué)報(bào),2013,28(2):12-19.

        [12] Shu S,Chen B,Zhou M,et al.De novo sequencing and transcriptome analysis ofWolfiporiacocosto reveal genes related to biosynthesis of triterpenoids[J].PLoS One,2013,8(8):e71350.

        [13] Cominelli E,Galbiati M,Vavasseur A,et al.A guard-cell-specific MYB transcription factor regulates stomatal movements and plant drought tolerance[J].Current Biology,2005,15(13):1196-1200.

        [14] Kim S,Kang J Y,Cho D I,et al.ABF2,an ABRE-binding bZIP factor,is an essential component of glucose signaling and its overexpression affects multiple stress tolerance[J].The Plant Journal:for Cell and Molecular Biology,2004,40(1):75-87.

        [15] Zhou Y,Yang P,Cui F,et al.Transcriptome analysis of salt stress responsiveness in the seedlings of dongxiang wild rice (Oryzarufipogongriff.) [J].PLoS One,2016,11(1):e0146242.

        [16] 馬廷臣,陳榮軍,余蓉蓉,等.全基因組分析PEG脅迫下水稻根系轉(zhuǎn)錄因子表達(dá)變化[J].作物學(xué)報(bào),2009,35(6):1030-1037.

        [17] Sandhu N,Raman K A,Torres R O,et al.Rice root architectural plasticity traits and genetic regions for adaptability to variable cultivation and stress conditions[J].Plant Physiology,2016,171(4):2562-2576.

        [18] 譚保才,梁厚果.激動(dòng)素對(duì)綠豆子葉多聚核糖體形成的促進(jìn)作用及其與RNA合成的關(guān)系[J].植物學(xué)報(bào),1992,34(10):764-770.

        [19] 閻秀峰,王 洋,李一蒙.植物次生代謝及其與環(huán)境的關(guān)系[J].生態(tài)學(xué)報(bào),2007,27(6):2554-2562.

        [20] Liu J,An X,Cheng L,et al.Auxin transport in maize roots in response to localized nitrate supply[J].Annals of Botany,2010,106(6):1019-1026.

        [21] Dharmasiri S,Swarup R,Mockaitis K,et al.AXR4 is required for localization of the auxin influx facilitator AUX1[J].Science,2006,312(5777):1218-1220.

        [22] 王 忠.植物生理學(xué)[M].北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)出版社,1999:273-274.

        [23] Shani Z,Dekel M,Tsabary G,et al.Cloning and characterization of elongation specific endo-1,4-beta-glucanase (cel1) fromArabidopsisthaliana[J].Plant Molecular Biology,1997,34(6):837-842.

        [24] Wu S C,Blumer J M,Darvill A G,et al.Characterization of an endo-beta-1,4-glucanase gene induced by auxin in elongating pea epicotyls[J].Plant Physiology,1996,110(1):163-170.

        [25] Shani Z,Dekel M,Roiz L,et al.Expression of endo-1,4-beta-glucanase (cel1) inArabidopsisthalianais associated with plant growth,xylem development and cell wall thickening[J].Plant Cell Reports,2006,25(10):1067-1074.

        [26] Matthysse A G,Thomas D L,White A R.Mechanism of cellulose synthesis inAgrobacteriumtumefaciens[J].Journal of Bacteriology,1995,177(4):1076-1081.

        [27] Guo D,Chen F,Inoue K,et al.Downregulation of caffeic acid 3-O-methyltransferase and caffeoyl CoA 3-O-methyltransferase in transgenic alfalfa.impacts on lignin structure and implications for the biosynthesis of G and S lignin[J].The Plant Cell,2001,13(1):73-88.

        [28] Lacombe E,Hawkins S,Van Doorsselaere J,et al.Cinnamoyl CoA reductase,the first committed enzyme of the lignin branch biosynthetic pathway:cloning,expression and phylogenetic relationships[J].The Plant Journal :for Cell and Molecular Biology,1997,11(3):429-441.

        [29] 樊飛飛,李杰勤,詹秋文,等.植物肉桂酰輔酶A還原酶基因克隆研究進(jìn)展[J].中國(guó)生物工程雜志,2015,35(12):96-102.

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