徐 華 張 茹 劉連亮 張進(jìn)杰 楊文鴿 樓喬明
(寧波大學(xué)海洋學(xué)院,寧波 315211)
裂殖壺菌(Schizochytriumsp.),又名裂壺藻,其屬于真菌門(mén)(Eumycota)、網(wǎng)粘菌綱(Labyrinthulomycetes)、破囊壺菌目(Thraustochytriales)、破囊壺菌科(Thraustochytriaceae)的一類類藻的海洋微生物[1]。裂殖壺菌的菌體脂質(zhì)含量豐富,且以甘油三酯為主,DHA占總脂肪酸含量的30%~40%,被認(rèn)為是一種理想的DHA新生資源。目前,從裂殖壺菌中提取制備高純度DHA已日益成為國(guó)內(nèi)外海洋生物技術(shù)的研究熱點(diǎn)[2-3]。
水酶法是近年來(lái)廣泛研究的一種油脂提取新技術(shù),是將生物酶制劑應(yīng)用于油脂分離的方法,通過(guò)酶制劑對(duì)油料底物的降解作用,提高油脂出油率;該方法具有選擇性降解、副產(chǎn)物少、出油率高、油質(zhì)好等優(yōu)點(diǎn)[4-5]。因此,本實(shí)驗(yàn)采用水酶法對(duì)裂殖壺菌油脂的提取工藝進(jìn)行研究和優(yōu)化,以期為裂殖壺菌油脂提取及后續(xù)工業(yè)化應(yīng)用提供參考。
裂殖壺菌(Schizochytriumlimacinum)干粉:廈門(mén)匯盛生物有限公司,經(jīng)Folch法測(cè)定,其油脂質(zhì)量分?jǐn)?shù)為44.63%。菠蘿蛋白酶(50萬(wàn)U/g)、木瓜蛋白酶(80萬(wàn)U/g)、酸性蛋白酶(80萬(wàn)U/g)、堿性蛋白酶(20萬(wàn)U/g)、中性蛋白酶(20萬(wàn)U/g)、纖維素酶(5萬(wàn)U/g):均為食品級(jí)試劑酶,江蘇銳陽(yáng)生物科技有限公司;37種脂肪酸甲酯混合標(biāo)準(zhǔn)品:美國(guó)Sigma公司;甲醇、氯仿、正己烷:均為分析純,天津市科密歐化學(xué)試劑公司。
6890N型氣相色譜儀、5973型質(zhì)譜儀:美國(guó)Agilent公司;Laborota 4000 efficient旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器:德國(guó)海道爾夫公司;THZ-82型水浴恒溫振蕩器:常州國(guó)華電器有限公司。
1.3.1 水酶法提取的工藝流程
裂殖壺菌干粉→加水→微波預(yù)處理→酶解→正己烷萃取→減壓濃縮→油脂
提取工藝要點(diǎn):取2 g裂殖壺菌干粉,按一定液料比加入蒸餾水,并微波5 min(微波頻率2 450 MHz,輸出功率450 W);待樣品冷卻至室溫,加入一定量的酶制劑,放于水浴恒溫振蕩器中60 r/min進(jìn)行酶解。酶解結(jié)束后,按裂殖壺菌干粉質(zhì)量,以2 mL/g的用量加入正己烷,振蕩萃取2 min,于5 000 r/min離心5 min,收集上層正己烷相,重復(fù)萃取2次,合并正己烷相;經(jīng)40 ℃減壓濃縮后,于105 ℃干燥至恒重,稱取油脂質(zhì)量,并計(jì)算裂殖壺菌油脂提取率。油脂提取率的計(jì)算公式為:
1.3.2 酶的選取和復(fù)合酶配比的確定
取2 g裂殖壺菌干粉,按2 mL/g的液料比加入蒸餾水,微波處理后,按1 000 U/g的添加量分別加入纖維素酶、菠蘿蛋白酶、木瓜蛋白酶、酸性蛋白酶、堿性蛋白酶和中性蛋白酶,并以不加酶制劑為對(duì)照,于50 ℃恒溫水浴酶解3 h,酶解結(jié)束后用正己烷萃取油脂,計(jì)算裂殖壺菌的油脂提取率;并以纖維素酶和中性蛋白酶組成復(fù)合酶,測(cè)定兩者間的配比對(duì)裂殖壺菌油脂提取率的影響。
1.3.3 單因素和正交優(yōu)化實(shí)驗(yàn)
在復(fù)合酶配比為2:8(纖維素酶:中性蛋白酶,U:U)的基礎(chǔ)上,以液料比、加酶量、酶解溫度和酶解時(shí)間為因素,以油脂提取率為指標(biāo)進(jìn)行單因素實(shí)驗(yàn);并綜合單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,采用極差法對(duì)上述4個(gè)因素進(jìn)行正交優(yōu)化實(shí)驗(yàn),正交因素水平表見(jiàn)表1。
表1 正交設(shè)計(jì)因素水平表
1.3.4 脂肪酸分析
甲酯化衍生取10 mg所提的裂殖壺菌油脂,加入1 mL的2 mol/L HCl-甲醇溶液,于60 ℃水浴中甲酯化15 min,冷卻后加入1 mL正己烷振蕩,靜置分層后,取上清液用無(wú)水硫酸鈉干燥,供GC-MS分析。
色譜條件HP-INNOWax石英毛細(xì)管柱(30 m×0.32 mm×0.25 μm),高純氦氣為載氣,采用恒壓模式,壓力為54 kPa,分流比為25:1。進(jìn)樣口溫度為230 ℃,檢測(cè)器溫度為250 ℃,柱溫以3 ℃/min由120 ℃升到210 ℃,并在210 ℃下保持10 min,整個(gè)分析過(guò)程為40 min。
質(zhì)譜條件GC-MS接口溫度280 ℃,EI離子源,電離能量70 eV,離子源溫度230 ℃,掃描周期2.84次/s,質(zhì)量掃描范圍m/z50~500 u。
每次實(shí)驗(yàn)平行測(cè)定3次,利用SPSS 18.0軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示;采用單因素方差分析法(ANOVE,Tukey檢驗(yàn))進(jìn)行顯著性檢驗(yàn),并通過(guò)Duncan’s法進(jìn)行單因素多重比較分析,P<0.05為差異顯著。
在液料比2 mL/g條件下,按1 000 U/g的加酶量分別添加纖維素酶(Cel)、菠蘿蛋白酶(Bro)、木瓜蛋白酶(Pap)、酸性蛋白酶(Aci)、堿性蛋白酶(Alc)和中性蛋白酶(Neu),并以不加酶制劑為對(duì)照(Con),置于50 ℃恒溫水浴振蕩酶解3 h,不同酶制劑對(duì)油脂提取的影響如圖1所示。
圖1 酶制劑對(duì)油脂提取率的影響
由圖1可知,添加纖維素酶或蛋白酶能顯著增加裂殖壺菌的油脂提取率(P<0.05),且不同酶制劑對(duì)油脂提取率具有顯著差異(P<0.05),其中中性蛋白酶的油脂提取率最高(44.96%),菠蘿蛋白酶(40.04%)、堿性蛋白酶(37.13%)、木瓜蛋白酶(36.84%)和酸性蛋白酶(35.61%)的提取率依次降低,而纖維素酶的油脂提取率最低,僅為20.61%。這是因?yàn)槔w維素酶和不同蛋白酶的酶解底物、作用位點(diǎn)和催化活力不同[6]。裂殖壺菌的細(xì)胞壁結(jié)構(gòu),以及細(xì)胞中存在的脂蛋白復(fù)合體,對(duì)油脂分子具有包埋作用,不利于油脂的提取。單獨(dú)水提熱處理很難破壞細(xì)胞壁和脂蛋白復(fù)合體對(duì)油脂分子的包埋作用,而纖維素酶和蛋白酶能分別有效降解裂殖壺菌的細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)和脂蛋白復(fù)合體,使包埋的油脂釋放出來(lái),提高油脂提取率[5]。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明添加纖維素酶和不同蛋白酶能分別有效降解破壞裂殖壺菌細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)和脂蛋白復(fù)合體,釋放油脂,從而顯著提高裂殖壺菌的油脂提取率。
酶制劑具有較強(qiáng)的底物專一性,這意味著采用單一酶制劑在酶解提取油脂的工藝應(yīng)用中具有一定的局限性;根據(jù)酶解底物基本性質(zhì),選擇合適的幾種酶制劑復(fù)合使用,能兼具多種生物酶的不同活性,并對(duì)酶解過(guò)程產(chǎn)生協(xié)同促進(jìn)作用,更有利于細(xì)胞中油脂的析出和聚集,進(jìn)而提高油脂提取率[7]。因此根據(jù)單一酶制劑的實(shí)驗(yàn)結(jié)果,并結(jié)合裂殖壺菌細(xì)胞壁構(gòu)成和胞內(nèi)脂蛋白復(fù)合物的底物性質(zhì),采用纖維素酶和中性蛋白酶進(jìn)行復(fù)合配比實(shí)驗(yàn),復(fù)合酶不同配比對(duì)油脂提取率的影響如圖2所示。
圖2 復(fù)合酶配比對(duì)油脂提取率的影響
由圖2可知,在復(fù)合酶的總酶活為1 000 U/g的前提下,纖維素酶和中性蛋白酶的不同配比,對(duì)裂殖壺菌油脂的提取率產(chǎn)生顯著影響(P<0.05)。首先,隨著中性蛋白酶含量的增加,裂殖壺菌的油脂提取率顯著增加(P<0.05);當(dāng)纖維素酶和中性蛋白酶的酶活力比值為2:8時(shí),油脂提取率達(dá)到最大值(50.16%),遠(yuǎn)高于單獨(dú)使用纖維素酶(20.61%)和中性蛋白酶(44.96%)。之后,隨著中性蛋白酶含量的繼續(xù)增加,油脂提取率略有降低。因此選取復(fù)合酶配比為2:8(纖維素酶:中性蛋白酶,U:U)進(jìn)行后續(xù)的單因素實(shí)驗(yàn)。
在復(fù)合酶配比2:8(纖維素酶:中性蛋白酶,U:U)的條件下,以液料比、加酶量、酶解溫度和酶解時(shí)間為實(shí)驗(yàn)因素,測(cè)定上述4種因素的不同水平對(duì)裂殖壺菌油脂提取率的影響,實(shí)驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)圖3。
圖3 不同因素對(duì)油脂提取率的影響
在復(fù)合酶配比2:8(纖維素酶:中性蛋白酶,U:U)、加酶量1 000 U/g、酶解溫度50 ℃和酶解時(shí)間3 h條件下,當(dāng)液料比為2 mL/g時(shí),裂殖壺菌油脂提取率為50.16%,同時(shí)隨著液料比的增大,裂殖壺菌油脂提取率顯著增加(P<0.05);當(dāng)液料比達(dá)到4 mL/g時(shí),油脂提取率達(dá)到最大值(62.43%);繼續(xù)增加液料比,裂殖壺菌油脂提取率顯著降低(P<0.05)。這是由于當(dāng)液料比較低時(shí),物料較為黏稠,不利于酶與底物的充分接觸,酶解反應(yīng)不能有效進(jìn)行,且較低的液料比不利于油脂分子的游離,致使油脂提取率較低;隨著液料比的適當(dāng)增加,增加酶與底物的有效接觸,并降低溶劑中油脂濃度,增加物料與溶劑間的濃度差,降低酶解體系的乳化效應(yīng),增加物料中油脂向溶劑擴(kuò)散的速度和游離速度,從而顯著增加油脂提取率[8-9]。當(dāng)液料比大于4 mL/g,繼續(xù)增加液料比,使酶解體系中的酶和底物濃度雙雙降低,影響酶解作用的發(fā)揮;且較高的液料比易增加后續(xù)工藝的難度和強(qiáng)度。因此裂殖壺菌油脂提取的最佳液料比為4 mL/g。
在復(fù)合酶配比2:8(纖維素酶:中性蛋白酶,U:U)、液料比2 mL/g、酶解溫度50 ℃和酶解時(shí)間3 h條件下,隨著加酶量的增加,裂殖壺菌油脂提取率顯著增加(P<0.05),當(dāng)加酶量為2 500 U/g,油脂提取率達(dá)到最大值(65.39%);繼續(xù)增加復(fù)合酶用量,油脂提取率不再增加,并有一定的降低趨勢(shì),但下降幅度不顯著(P>0.05)。這是因?yàn)檫m當(dāng)增加酶用量,能有效提高酶濃度,增加酶與底物的接觸幾率,促進(jìn)酶解反應(yīng)的進(jìn)行,進(jìn)而增加油脂提取率。但當(dāng)加酶量超過(guò)一定范圍時(shí),易使酶解體系發(fā)生深度水解,水解產(chǎn)物增強(qiáng)蛋白質(zhì)的乳化性,使油脂分子再度被蛋白質(zhì)包裹,產(chǎn)生乳化現(xiàn)象,增加油脂分離難度;同時(shí)加酶量過(guò)多使得酶分子間產(chǎn)生競(jìng)爭(zhēng)作用,降低酶的作用效率,致使油脂提取率降低[10]。因此裂殖壺菌油脂提取的最佳加酶量為2 500 U/g。
在復(fù)合酶配比2:8(纖維素酶:中性蛋白酶,U:U)、液料比2 mL/g、加酶量1 000 U/g和酶解時(shí)間3 h條件下,在一定酶解溫度范圍內(nèi),隨著酶解溫度的上升,裂殖壺菌油脂提取率先增加,并在55 ℃時(shí),油脂提取率達(dá)到最大值(50.83%);繼續(xù)提高酶解溫度,油脂提取率顯著降低(P<0.05)。適當(dāng)提高酶解溫度有利于提高纖維素酶和中性蛋白酶的酶解活性,纖維素酶的最適溫度為50 ℃,中性蛋白酶的最適溫度為55 ℃,故在55 ℃溫度條件下,由纖維素酶和中性蛋白酶組成的復(fù)合酶的酶解活性最強(qiáng);而繼續(xù)增加酶解溫度則會(huì)破壞纖維素酶和中性蛋白酶的活性中心,進(jìn)而降低裂殖壺菌的油脂提取率,且酶解溫度的增加還易造成油脂氧化,降低油脂品質(zhì)[11]。因此綜合考慮油脂提取率和后續(xù)油脂品質(zhì),裂殖壺菌油脂提取的最佳酶解溫度為55 ℃。
在復(fù)合酶配比2:8(纖維素酶:中性蛋白酶,U:U)、液料比2 mL/g、加酶量1 000 U/g和酶解溫度50 ℃條件下,當(dāng)酶解時(shí)間為1 h時(shí),裂殖壺菌油脂提取率僅為32.54%;隨著酶解時(shí)間的增加,油脂提取率顯著增加(P<0.05);當(dāng)酶解時(shí)間為4 h時(shí),油脂提取率達(dá)到最大值(54.23%)。之后,隨著酶解時(shí)間的增加,油脂提取率趨于平緩,繼續(xù)增加酶解時(shí)間對(duì)裂殖壺菌油脂提取率沒(méi)有顯著影響(P>0.05);同時(shí),進(jìn)一步延長(zhǎng)酶解時(shí)間,易使酶解體系中乳狀液趨于穩(wěn)定,造成破乳困難,降低油脂提取率[12];且裂殖壺菌富含DHA,酶解時(shí)間過(guò)長(zhǎng),易使油脂發(fā)生氧化,降低油脂品質(zhì)。因此裂殖壺菌油脂提取的最佳酶解溫度為4 h。
根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn),以纖維素酶和中性蛋白酶為復(fù)合酶(2:8,U:U),選取液料比、加酶量、酶解溫度和酶解時(shí)間為實(shí)驗(yàn)因素,以油脂提取率為指標(biāo),采用正交方法考察各因素對(duì)裂殖壺菌油脂提取率的影響,實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)和結(jié)果列于表2,其方差分析結(jié)果列于表3。
表2 正交優(yōu)化設(shè)計(jì)與結(jié)果
表3 正交實(shí)驗(yàn)方差分析
注:F0.05(2,2)=19.00;*表示P<0.05,差異顯著。
由表2可知,水酶法提取裂殖壺菌油脂的過(guò)程中,實(shí)驗(yàn)中各因素對(duì)油脂提取率的影響依次為:加酶量>液料比>酶解時(shí)間>酶解溫度,即加酶量對(duì)裂殖壺菌油脂提取的影響最大,液料比和酶解時(shí)間次之,酶解溫度最??;并對(duì)上述4個(gè)因素進(jìn)行方差分析可知,加酶量和液料比對(duì)裂殖壺菌油脂提取率有顯著影響(P<0.05),而酶解時(shí)間和酶解溫度對(duì)油脂提取率的影響不顯著(P>0.05),優(yōu)化后的油脂提取條件為A2B3C3D2,即液料比4 mL/g,加酶量2 500 U/g,酶解溫度55 ℃,酶解時(shí)間4 h;并在此優(yōu)化條件下進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),裂殖壺菌油脂提取率達(dá)到82.47%。
裂殖壺菌油脂經(jīng)酸酯化衍生處理,采用GC-MS技術(shù)對(duì)其脂肪酸組成進(jìn)行分析,其總離子流色譜圖見(jiàn)圖4;通過(guò)標(biāo)準(zhǔn)品對(duì)照和數(shù)據(jù)庫(kù)檢索等方法對(duì)其脂肪酸進(jìn)行定性,并按峰面積歸一法進(jìn)行定量,分析鑒定結(jié)果列于表4。
從表4可知,從裂殖壺菌油脂中共鑒定出18種脂肪酸,以C14:0(4.00%)、C16:0(54.37%)、C22:5n-6(3.94%)和C22:6n-3(DHA,32.65%)為主;其中飽和脂肪酸6種,占總脂肪酸含量的59.68%;不飽和脂肪酸12種,占總脂肪酸含量的40.32%。C22:6n-3是一種重要的n-3型多不飽和脂肪酸,能有效促進(jìn)嬰幼兒神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育,提高智力;調(diào)節(jié)血脂,預(yù)防心腦血管疾病;提高免疫力,增強(qiáng)抗炎、抗癌能力[13-15]。裂殖壺菌油脂富含C22:6n-3,表明其具有很高的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值,可作為C22:6n-3的重要生物來(lái)源;同時(shí)其脂肪酸組成簡(jiǎn)單,與C22:6n-3結(jié)構(gòu)類似但功能上有拮抗作用的C20:5n-3(EPA)含量極低,僅為0.52%,這便于C22:6n-3的分離純化和高純度C22:6n-3的制備;同時(shí)這一脂肪酸組成特征也將拓展裂殖壺菌油脂在食品和醫(yī)藥等領(lǐng)域的應(yīng)用范圍,尤其在嬰幼兒食品方面。
注:圖中序號(hào)與表4中序號(hào)一致。圖4 裂殖壺菌脂肪酸甲酯的總離子流色譜圖 表4 裂殖壺菌油脂的脂肪酸組成(n=3)
序號(hào)保留時(shí)間/min脂肪酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)/%13.91C1200.15±0.0226.66C1404.00±0.1737.02C141n-50.30±0.0348.50C1500.17±0.02510.90C16054.37±0.68611.20C161n-90.18±0.02713.41C1700.12±0.03815.44C1800.86±0.05915.77C181n-90.34±0.041015.94C181n-70.25±0.021116.82C182n-60.79±0.041218.38C183n-60.15±0.021319.09C183n-30.11±0.021422.84C204n-60.84±0.041523.96C204n-30.25±0.021624.48C205n-3(EPA)0.52±0.041730.20C225n-6(DPA)3.94±0.121833.42C226n-3(DHA)32.65±0.46
3.1 以纖維素酶和中性蛋白酶組成水解復(fù)合酶,兩者配比為2:8(纖維素酶:中性蛋白酶,U:U),并經(jīng)單因素和正交優(yōu)化實(shí)驗(yàn)得到水酶法提取裂殖壺菌油脂的最佳工藝條件:液料比4 mL/g,加酶量2 500 U/g,酶解溫度55 ℃,酶解時(shí)間4 h;在此優(yōu)化條件下,裂殖壺菌油脂提取率為82.47%。
3.2 裂殖壺菌油脂脂肪酸組成簡(jiǎn)單,以C14:0、C16:0、C22:5n-6和C22:6n-3為主,其中C22:6n-3質(zhì)量分?jǐn)?shù)高達(dá)32.65%,表明裂殖壺菌油脂具有很高的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值和脂質(zhì)開(kāi)發(fā)潛力,可以作為制備天然高純度C22:6n-3的重要生物來(lái)源。
[1]李清,臧曉南,張學(xué)成,等.裂殖壺菌OUC88及10個(gè)派生菌株18S rDNA基因克隆和分析[J].海洋科學(xué),2014,38(1):71-78 LI Q,ZANG X N,ZHANG X C,et al.Cloning and analysis of 18S rDNA gene fromSchizochytriumlimacinumOUC88 and 10 derived strains[J].Marine Sciences,2014,38(1):71-78
[2]YAGUCHI T,TANAKA S,YOKOCHI T,et al.Production of high yields of docodahexaenoic acid bySchizochytriumsp.strain SR21[J].Journal of the American Oil Chemists Society,1997,74(11):1431-1434
[3]阮成旭,梁雙振,燕妍,等.裂殖壺菌藻粕酶解產(chǎn)物的提取及抑菌作用研究[J].中國(guó)食品學(xué)報(bào),2015,15(12):128-133 RUAN C X,LIANG S Z,YAN Y,et al.Extraction of schizochytrium meal crude hydrolysates and its antibacterial activity[J].Journal of Chinese Institute of Food Science and Technology,2015,15(12):128-133
[4]王麗波,徐雅琴,楊昱,等.南瓜籽油的水酶法提取工藝及產(chǎn)品的理化性質(zhì)[J].農(nóng)業(yè)工程學(xué)報(bào),2011,27(10):383-387 WANG L B,XU Y Q,YANG Y,et al.Aqueous enzymatic extraction of pumpkin seed oil and its physical-chemical properties[J].Transactions of the Chinese Society of Agricultural Engineering,2011,27(10):383-387
[5]賀賜安,余旭亞,趙鵬,等.微藻油脂提取方法研究進(jìn)展[J].中國(guó)油脂,2012,37(8):16-20 HE C A,YU X Y,ZHAO P,et al.Review on oil extraction methods from microalgae[J].China Oils and Fats,2012,37(8):16-20
[6]ZHANG S B,LU Q Y,YANG H,et al.Aqueous enzymatic extraction of oil and protein hydrolysates from roasted peanut seeds[J].Journal of Oil and Fat Industries,2011,88(5):727-732
[7]周玥,郭華,向嬌.復(fù)合酶對(duì)水酶法提取油茶籽油的影響[J].食品科技,2016,41(2):211-215 ZHOU Y,GUO H,XIANG J.Effects of composite enzyme on extracting oil-camellia seed oil by aqueous enzymatic method[J].Food Science and Technology,2016,41(2):211-215
[8]陳瀟逸,王超,張帆,等.微波預(yù)處理水酶法提取楊梅核仁油的研究[J].中國(guó)糧油學(xué)報(bào),2013,28(11):37-40 CHEN X Y,WANG C,ZHANG F,et al.Research on microwave pretreatment followed by aqueous enzymatic extraction of nucleolus oil fromMyricarubra[J].Journal of the Chinese Cereals and Oils Association,2013,28(11):37-40
[9]徐彤硯,張茹,楊欣星,等.水酶法提取北太平洋魷魚(yú)肝臟油脂及其脂肪酸組成分析[J].食品工業(yè)科技,2016,37(9):213-217 XU T Y,ZHANG R,YANG X X,et al.Aqueous enzymatic extraction of liver oil fromOmmastrephesbartramiand its fatty acid composition analysis[J].Science and Technology of Food Industry,2016,37(9):213-217
[10]彭瑤瑤,王千千,王愛(ài)梅,等.水酶法提取牡丹籽油的研究[J].中國(guó)油脂,2014,39(6):12-17 PENG Y Y,WANG Q Q,WANG A M,et al.Aqueous enzymatic extraction ofPaeoniasuffruticosaseed oil[J].China Oils and Fats,2014,39(6):12-17
[11]王強(qiáng),王存,王睿,等.微波輔助水酶法提取番茄籽油工藝優(yōu)化及理化特性研究[J].中國(guó)糧油學(xué)報(bào),2015,30(10):43-48 WANG Q,WANG C,WANG R,et al.Microwave-assisted aqueous enzymatic extraction of oil from tomato seed and evaluation of its physicochemical properties[J].Journal of the Chinese Cereals and Oils Association,2015,30(10):43-48
[12]祖亭月,何美瑩,張連富.水酶法提取橡膠籽油的工藝研究[J].中國(guó)糧油學(xué)報(bào),2013,28(2):37-42 ZU T Y,HE M Y,ZHANG L F.Study on aqueous enzymatic extraction of oil from rubber seeds[J].Journal of the Chinese Cereals and Oils Association,2013,28(2):37-42
[13]LAURITZEN L,HANSEN H S,JORGENSEN M H,et al.The essentiality of long chain n-3 fatty acids in relation to development and function of the brain and retina[J].Progress in Lipid Research,2001,40(1-2):1-94
[14]NORDOY A,MARCHIOLI R,ARNESEN H,et al.n-3 polyunsaturated fatty acids and cardiovascular diseases[J].Lipids,2001,36(1):127-129
[15]DAS U N,FAMS M D.Long-chain polyunsaturated fatty acids in the growth and development of the brain and memory[J].Nutrition,2003,19:62-65.