張桂芳+劉靜+劉春+張黎
摘要:以白鶴芋的花序?yàn)橥庵搀w,研究不同外源激素濃度、外植體的不同發(fā)育時(shí)期、花序取材部位及不同光周期培養(yǎng)條件對(duì)花序體細(xì)胞胚誘導(dǎo)的影響,擬篩選出體胚誘導(dǎo)的最佳培養(yǎng)基配方及培養(yǎng)條件。結(jié)果表明,最優(yōu)白鶴芋花序體胚誘導(dǎo)方案如下:以白鶴芋盛花期花序?yàn)橥庵搀w,用0.1%氯化汞溶液滅菌10 min,接種于MS+5.0 mg/L 6-BA+0.5 mg/L TDZ+0.1 mg/L NAA培養(yǎng)基中,黑暗培養(yǎng)15 d后轉(zhuǎn)到光—暗周期為12 h—12 h的條件下培養(yǎng)。
關(guān)鍵詞:白鶴芋;花序;體細(xì)胞胚;體胚誘導(dǎo)
中圖分類(lèi)號(hào): Q945.51文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A文章編號(hào):1002-1302(2017)23-0038-03
收稿日期:2016-07-06
基金項(xiàng)目:寧夏科技支撐計(jì)劃項(xiàng)目子課題(編號(hào):GIP201648)。
作者簡(jiǎn)介:張桂芳(1988—),女,山西大同人,碩士研究生,主要從事觀賞植物研究。E-mail:544406790@qq.com。
通信作者:張黎,教授,主要從事觀賞園藝研究。E-mail:zhang_li9988@163.com。白鶴芋(Spathiphylium)別稱(chēng)苞葉芋、白掌、和平芋,為天南星科白鶴芋屬多年生草本花卉。白鶴芋廣泛應(yīng)用于盆栽觀賞,被視為“清白之花”,有純潔、安泰、一帆風(fēng)順之意[1],是理想的花葉兼賞花卉,深受廣大消費(fèi)者的喜愛(ài),其市場(chǎng)需求量逐年增加,白鶴芋主要通過(guò)組織快繁技術(shù)來(lái)滿(mǎn)足其市場(chǎng)需求。體細(xì)胞胚胎繁殖技術(shù)是組織培養(yǎng)中一種高效的快繁技術(shù),對(duì)于白鶴芋的組織培養(yǎng),多集中在其器官發(fā)生,關(guān)于其體胚誘導(dǎo)的研究較少,最早的是周麗儂等于1995年對(duì)花序體胚再生途徑的研究[2]。本試驗(yàn)以白鶴芋花序?yàn)橥庵搀w,研究花序取材時(shí)期、取材部位及激素濃度等對(duì)體胚誘導(dǎo)的影響,以期為白鶴芋的體胚誘導(dǎo)提供依據(jù)。
1材料與方法1.1試驗(yàn)材料
以白鶴芋品種美酒的花序?yàn)橥庵搀w材料,取自寧夏銀川市寧夏園藝產(chǎn)業(yè)園。
1.2試驗(yàn)方法
1.2.1不同發(fā)育時(shí)期白鶴芋花序滅菌處理試驗(yàn)設(shè)不同白鶴芋花序發(fā)育時(shí)期的處理,分別為花苞期(即初花期,佛焰苞被完全包裹)(圖1-A)、盛花期(佛焰苞完全開(kāi)放)(圖1-B)、末花期(佛焰苞及花序轉(zhuǎn)為綠色)(圖1-C)。將外植體用自來(lái)水沖洗30~60 min后,用75%乙醇處理30 s,然后用無(wú)菌水沖洗2~3遍,再然后用0.1% HgCl2溶液分別處理8、10、12 min,最后用無(wú)菌水沖洗2~3遍。將處理后的花序接種于不添加激素的MS培養(yǎng)基中,每個(gè)處理設(shè)20個(gè)外植體,試驗(yàn)重復(fù)3次。接種20 d后,統(tǒng)計(jì)污染率,30 d后統(tǒng)計(jì)褐變率、無(wú)菌體獲得率。
1.2.2白鶴芋花序體細(xì)胞胚胎誘導(dǎo)試驗(yàn)白鶴芋體細(xì)胞胚胎的誘導(dǎo)培養(yǎng)基選擇6-芐氨基腺嘌呤(6-BA)、噻苯隆(TDZ)和萘乙酸(NAA)3種激素,設(shè)3個(gè)水平(表1)進(jìn)行正交試驗(yàn),共9個(gè)處理(表2),每個(gè)處理20瓶,試驗(yàn)重復(fù)3次。以MS為基本培養(yǎng)基,附加30 g/L蔗糖,6 g/L瓊脂,pH值58。將滅菌后成活的花序橫切為1.0~1.5 mm的薄片,接種于培養(yǎng)基中進(jìn)行培養(yǎng),每瓶接種5個(gè)。培養(yǎng)50 d后,統(tǒng)計(jì)體胚誘導(dǎo)率及體胚的生長(zhǎng)情況。
1.2.4光周期對(duì)花序體胚的誘導(dǎo)試驗(yàn)在不同光周期條件下進(jìn)行體胚誘導(dǎo)試驗(yàn),設(shè)3種方式:T1處理,黑暗條件下培養(yǎng)15 d后,轉(zhuǎn)到光—暗周期為12 h—12 h的條件下培養(yǎng);T2處理,始終在光—暗周期為12 h—12 h的條件下培養(yǎng);T3處理,全暗條件下培養(yǎng)。在確定最佳體胚誘導(dǎo)培養(yǎng)基后,將花序接種到最佳體胚誘導(dǎo)培養(yǎng)基中培養(yǎng),培養(yǎng)20、30、40、50、60 d后觀察并統(tǒng)計(jì)褐變率、誘導(dǎo)率。每個(gè)處理20瓶,重復(fù)3次。
1.2.5數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)及處理相關(guān)公式如下:
污染率=(污染的花序數(shù)/接種的花序外植體總數(shù))×100%;
褐變率=(發(fā)生褐變的花序數(shù)/接種的花序外植體總數(shù))×100%;
無(wú)菌花序獲得率=[(接種的花序總數(shù)-污染的花序數(shù)-死亡的花序數(shù))/接種的花序外植體總數(shù)]×100%;
體胚誘導(dǎo)率=(生成初級(jí)體胚花序數(shù)/接種的花序外植體總數(shù))×100%。
采用DPS軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行處理,采用Duncans新復(fù)極差法進(jìn)行多重比較。
2結(jié)果與分析
2.1滅菌處理對(duì)不同發(fā)育時(shí)期白鶴芋花序污染率的影響
用0.1% HgCl2溶液對(duì)白鶴芋花苞期、盛花期、末花期花序進(jìn)行不同時(shí)間的滅菌試驗(yàn)。如表3所示,當(dāng)花苞期的滅菌時(shí)間為8 min時(shí),無(wú)菌花序獲得率最高,為50.34%。盛花期花序在滅菌時(shí)間為10 min的處理下,污染率為26.67%,無(wú)菌花序獲得率達(dá)64.44%,即最適宜的滅菌時(shí)間為10 min。末花期最適宜的滅菌時(shí)間為12 min,其無(wú)菌花序獲得率達(dá)4778%。各個(gè)花期的褐變率都隨著滅菌時(shí)間的增加而提高,且在相同的滅菌時(shí)間下,褐變率排序?yàn)榛ò?盛花期>末花期。綜合比較褐變率和無(wú)菌花序獲得率可知,盛花期在最適宜的滅菌時(shí)間下,無(wú)菌花序獲得率最高,花苞期次之。
2.2不同激素濃度對(duì)初級(jí)體細(xì)胞胚直接誘導(dǎo)的影響
在初級(jí)體胚誘導(dǎo)培養(yǎng)過(guò)程中,9個(gè)處理的培養(yǎng)基都能誘導(dǎo)初級(jí)體胚的產(chǎn)生,但不同培養(yǎng)基中的初級(jí)體胚誘導(dǎo)率差異較大。處理1、處理2、處理3培養(yǎng)基中的花序在培養(yǎng)40 d后大部分都出現(xiàn)褐化及死亡的情況,只有極少部分花序能產(chǎn)生微小的黃綠色顆粒狀突起。隨著6-BA濃度的增加,處理 4至處理9在培養(yǎng)10 d后白色的花序均逐漸轉(zhuǎn)為綠色,并膨大。培養(yǎng)50 d后花序膨大至原來(lái)的2倍,處理4、處理5、處理6表面產(chǎn)生少量的黃綠色體胚,處理8花序表面形成大量緊密的簇狀體細(xì)胞胚。在解剖鏡下觀察,可清晰地看到黃綠色的球形胚(圖2-B)、梨形胚(圖2-C)、子葉形胚(圖2-D)和成熟體胚(圖2-E),在同一個(gè)花序上能觀察到不同發(fā)育時(shí)期的體胚(圖2-A)。endprint
9個(gè)處理間差異都極顯著,由K值和誘導(dǎo)率可知,處理8為白鶴芋花序初級(jí)體細(xì)胞胚誘導(dǎo)的最佳培養(yǎng)基,激素組合為5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L TDZ+0.1 mg/L NAA。由極差R可知,6-BA 對(duì)白鶴芋花序初級(jí)體胚誘導(dǎo)的影響最大,遠(yuǎn)大于TDZ、NAA,3種激素對(duì)初級(jí)體胚誘導(dǎo)效應(yīng)大小依次為 6-BA>TDZ>NAA(表4)。
2.3白鶴芋花序不同發(fā)育時(shí)期、不同取材部位對(duì)初級(jí)體細(xì)胞胚誘導(dǎo)的影響
由表5可以看出,花序體胚誘導(dǎo)率與發(fā)育時(shí)期、取材部位具有一定的相關(guān)性,體胚誘導(dǎo)率排序?yàn)槭⒒ㄆ?初花期>末花期,且盛花期體胚的誘導(dǎo)率明顯高于其他時(shí)期。同時(shí)期同花序的不同形態(tài)位置對(duì)體胚誘導(dǎo)有顯著影響,表現(xiàn)為花序下端>花序上端>花序中端。其中盛花期花序形態(tài)學(xué)下端的誘導(dǎo)率最高,達(dá)71.67%,且與其他處理差異極顯著。綜合體胚
2.4光周期變化對(duì)體細(xì)胞胚誘導(dǎo)的影響
由表6可知,3個(gè)處理均能誘導(dǎo)出體細(xì)胞胚,但各處理間差異顯著。T1、T2處理較T3處理誘導(dǎo)率高, 生成體細(xì)胞胚數(shù)
量多。但在T3處理培養(yǎng)條件下,褐變率較T1、T2處理低。花序體細(xì)胞胚的誘導(dǎo)在黑暗培養(yǎng)條件下較光照條件下晚,60 d時(shí),花序在光—暗條件下的胚誘導(dǎo)率比在全黑暗培養(yǎng)下的體胚誘導(dǎo)率提高了20%以上。在體胚發(fā)育過(guò)程中觀察發(fā)現(xiàn),培養(yǎng)至20 d時(shí)部分花序上生成顆粒狀突起,隨著培養(yǎng)時(shí)間增加,顆粒狀突起逐漸膨大。當(dāng)培養(yǎng)到60 d時(shí),T2處理體胚呈淡綠色略顯褐色,T3處理體胚呈黃白色,T1處理體胚呈黃綠色,隨著培養(yǎng)時(shí)間的增加,T1處理體胚顏色逐漸變綠,且最為健康。因此可以得出,T1處理是體胚誘導(dǎo)最佳的光周期變化。
3結(jié)論與討論
3.1結(jié)論
對(duì)于不同發(fā)育時(shí)期的白鶴芋花序,用0.1%氯化汞溶液進(jìn)行滅菌處理可知,花苞期最佳滅菌時(shí)間為8 min,盛花期最佳滅菌時(shí)間為10 min,末花期最佳滅菌時(shí)間為12 min。在最佳滅菌時(shí)間下,無(wú)菌花序獲得率由高到低依次為盛花期>花苞期>末花期。
白鶴芋花序體胚誘導(dǎo)的各激素效應(yīng)大小依次為6-BA>TDZ>NAA,其中6-BA的影響最顯著。9個(gè)處理的培養(yǎng)基中,體胚誘導(dǎo)率差異較大,花序初級(jí)體細(xì)胞胚誘導(dǎo)最優(yōu)激素組合為 5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L TDZ+0.1 mg/L NAA。
盛花期的花序?yàn)樽罴洋w胚誘導(dǎo)外植體,而且以盛花期的形態(tài)學(xué)下端的體胚誘導(dǎo)率最高。黑暗下培養(yǎng)15 d后轉(zhuǎn)到光—暗周期為12 h—12 h條件下培養(yǎng)為白鶴芋花序初級(jí)體胚誘導(dǎo)的最佳培養(yǎng)條件。
3.2討論
同一植物的不同發(fā)育時(shí)期及不同部位對(duì)外植體的滅菌效果具有一定的影響。高亦珂在試驗(yàn)中指出,百合鱗莖、鱗片滅菌效果排序依次為內(nèi)部>中部>外部[3]。百合內(nèi)部和中部鱗片被包裹,受到外界環(huán)境的污染小,因此滅菌效果較好。本研究在對(duì)白鶴芋不同發(fā)育時(shí)期花序進(jìn)行滅菌處理試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),白鶴芋花序的花苞期、盛花期的滅菌效果比末花期滅菌效果好。這是因?yàn)榛ò诘幕ㄐ蜉S被苞片包裹,盛花期的花序苞片展開(kāi)時(shí)間不長(zhǎng),受外界環(huán)境影響程度小,而末花期的花序軸完全暴露,受外界環(huán)境影響大,易受損傷和受到細(xì)菌的侵染,滅菌難,污染率高。
在白鶴芋體細(xì)胞胚誘導(dǎo)培養(yǎng)中,MS培養(yǎng)基只保證白鶴芋花序的生存,只有生長(zhǎng)素及細(xì)胞分裂素濃度適宜的配比,才能誘導(dǎo)產(chǎn)生形態(tài)正常、數(shù)量多的體細(xì)胞胚。體胚的誘導(dǎo)通常需要較高濃度的細(xì)胞分裂素和較低濃度的生長(zhǎng)素或不需要生長(zhǎng)素[4-5]。周麗儂等研究認(rèn)為,含有高濃度6-BA的培養(yǎng)基有利于白鶴芋花序體細(xì)胞胚的直接誘導(dǎo)[2]。曹靜等通過(guò)研究得出,白鶴芋幼嫩花序培養(yǎng)在MS+4~5 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA的培養(yǎng)基中,由花序表面直接發(fā)生體細(xì)胞胚胎[6]。鄺哲師等研究發(fā)現(xiàn),高濃度的6-BA有利于提高香蕉花序體胚直接發(fā)生頻率[7]。呂秀立等研究表明,誘導(dǎo)歐洲七葉樹(shù)體細(xì)胞胚產(chǎn)生的最佳培養(yǎng)是8 mg/L 6-BA+1 mg/L NAA+2 mg/L 2,4-D+0.2 mg/L KT[8]。白鶴芋花序直接體胚誘導(dǎo)率與發(fā)育時(shí)期、取材部位具有一定的相關(guān)性。穆紅梅等以中國(guó)石蒜花苞期、盛花期、落花期的花序軸為外植體進(jìn)行組織培養(yǎng)研究表明,花序在不同發(fā)育時(shí)期對(duì)中國(guó)石蒜不定芽產(chǎn)生有顯著影響,盛花期產(chǎn)生的花序軸不定芽數(shù)量最多[9]。王麗等在對(duì)香雪蘭花序直接體細(xì)胞胚胎發(fā)生的試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),誘導(dǎo)產(chǎn)生的體細(xì)胞胚都出現(xiàn)在花序軸切段的原形態(tài)學(xué)下端。上述研究結(jié)果與本試驗(yàn)一致[10]。光周期的不同對(duì)胚狀體形成有顯著影響,在每天光照14~16 h與黑暗8 h~10 h交替條件下體胚直接誘導(dǎo)效果最佳[11]。鄺哲師等研究發(fā)現(xiàn),黑暗培養(yǎng)對(duì)香蕉體胚直接發(fā)生有促進(jìn)作用,黑暗條件抑制了外植體本身酚類(lèi)物質(zhì)的氧化,減少了醌類(lèi)物質(zhì)形成產(chǎn)生的毒害[7]。
范國(guó)強(qiáng)等研究表明,懸鈴木外植體在黑暗條件下培養(yǎng)3 d后,再放置在光照時(shí)間為16 h/d的條件下培養(yǎng),不僅可以促進(jìn)懸鈴木體細(xì)胞胚胎的發(fā)生,而且提高了體胚誘導(dǎo)率[12],與本試驗(yàn)結(jié)果一致。
參考文獻(xiàn):
[1]于麗萍. 花葉俱美的室內(nèi)植物——白掌[J]. 綠化與生活,2002(2):28.
[2]周麗儂,曹靜,鄺哲師,等. 園藝植物體胚發(fā)生及植株再生技術(shù)研究[J]. 熱帶作物學(xué)報(bào),1998,19(2):15-19.
[3]高亦珂. 幾種百合組織培養(yǎng)及體細(xì)胞胚發(fā)生技術(shù)的研究[D]. 北京:北京林業(yè)大學(xué),2009.
[4]Centeno M L,Rodrigue R,Berros B,et al. Endogenous hormonal content and somatic embryogenic capacity of Corylus avellana L. cotyledons[J]. Plant Cell Reports.1997,17(2):139-144.
[5]楊映銀,桂耀林,郭仲探. 裸子植物體細(xì)胞胚胎發(fā)生和人工種子的研究[J]. 種子,1995(3):25-30
[6]曹靜,周麗儂,鄺哲師,等. 白鶴芋花序體細(xì)胞胚胎發(fā)生及植株再生研究[J]. 農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào),1995,3(3):81-85.
[7]鄺哲師,周麗儂,馬雪筠,等. 香蕉和荔枝體胚發(fā)生兩種不同途徑的研究(簡(jiǎn)報(bào))[J]. 農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào),1998,6(3):210.
[8]呂秀立,施季森. 歐洲七葉樹(shù)體細(xì)胞胚胎發(fā)生研究[J]. 分子植物育種,2003,1(5):649-654.
[9]穆紅梅,夏冰,汪仁,等. 以花序軸為外植體的中國(guó)石蒜的組織培養(yǎng)研究[C]//中國(guó)觀賞園藝研究進(jìn)展,2014:280-284.
[10]王麗,鮑曉明,黃百渠,等. 香雪蘭外植體形態(tài)學(xué)極性決定的體細(xì)胞胚胎發(fā)生[J]. 植物學(xué)報(bào),1998,40(2):138-143.
[11]Martin K P,Madassery J. Direct and indirect somatic embryogenesis on cotyledon explants of Quassia amara L.,an antileukaemic drug plant[J]. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant,2005,41(1):54-57.
[12]范國(guó)強(qiáng),黎明,賀窯青,等. 懸鈴木體細(xì)胞胚胎發(fā)生及植株再生[J]. 林業(yè)科學(xué),2004,40(3):71-74.江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué)2017年第45卷第23期郭建軍,曾靜,袁林,等. 多角體包裹型豬α干擾素在昆蟲(chóng)細(xì)胞中的表達(dá)[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2017,45(23):41-44.endprint